Patlıcanda şeker, bal ve büyüme düzenleyicilerin anter kültüründe embriyoid oluşumuna etkisi

Yıl 2017, Cilt: 6 Özel Sayı, 275 - 280, 01.06.2017

Naif Geboloğlu Sevtap Doksöz Boncukçu Perihan Durna Mustafa Bayram

Öz

Anter kültüründe besin ortamı bileşenlerinden şeker ve büyüme düzenleyiciler önemli role sahiptir. Genelde besin ortamlarında karbonhidrat kaynağı olarak sakkaroz kullanılmaktadır. Anter kültürü ile ilgili birçok çalışmada sakkarozun %2-4 dozları önerilirken, az sayıda çalışmada şekerin %9-15 arasındaki dozları önerilmektedir. Anter kültürü çalışmalarında karbonhidrat kaynağı olarak şeker yerine bal kullanılması ile ilgili çok az araştırma yapılmıştır. Patlıcanda anter kültüründe şeker yerine bal kullanılmasının etkisinin araştırıldığı bu çalışmada, farklı sakkaroz ve bal dozları (30, 60, 90, 120 ve 150 mg/l) karşılaştırılmıştır. Büyüme düzenleyici olarak 2, 4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D) ve Kinetinin (Kin) 1, 3 ve 5 mg/l dozları kullanılmıştır. Androgenik performansı yüksek Yamula lokal popülasyonu ile androgenik performansı düşük Anamur F1 genotipleri donör bitki olarak kullanılmıştır. En yüksek ortalama embriyoid oluşumu bal uygulamasında %18.35, şeker uygulamasında %20.95 olmuştur. Yamula daha yüksek androgenik cevap vermiştir. En yüksek embriyoid oluşumu 1,0 mg/l Kinetin + 3,0 mg/l 2,4 D uygulamasından elde edilmiştir. Besin ortamında karbonhidrat kaynağı olarak sakkaroz yerine bal kullanılmasının patlıcanda anter kültüründe embriyoid oluşumu üzerine olumlu etki ederken, besin ortamlarında bal kullanılması ile ilgili daha çok çalışma yapılması gerekliliği ortaya çıkmıştır.

Anahtar Kelimeler

Kinetin, 2, 4-D, sakkaroz, bal, embriyogenesis, haploidi

Kaynakça

• Ajibola, A., Chamunorwa, J.P., Erlwanger, K.H., 2012. Nutraceutical values of natural honey and its contribution to human health and wealth. Nutrition & metabolism, 9(1):1.
• Al-Mamary, M., Al-Meeri, A., Al-Habori, M., 2002. Antioxidant activities and total phenolics of different types of honey. Nutrition research, 22(9): 1041-1047.
• Anonim, 2002. TS 3036, Bal. Türk Standartları Enstitüsü, Ankara.
• Bajaj, Y.P.S., 1990. In vitro production of haploids and their use in cell genetics and plant breeding. In: Biotechnology in Agriculture and Forestry, vol. 12, Haploids in Crop Improvement I, 372–380.
• Başay, S., Ellialtıoğlu, Ş.Ş., 2013. Effect of genotypical factors on the effectiveness of anther culture in eggplant (Solanum melongena L.). Turkish Journal of Biology, 37(4):499-505.
• Bogdanov, S., Jurendic, T., Sieber, R., Gallmann, P., 2008. Honey for nutrition and health: a review. Journal of the American College of Nutrition, 27(6):677-689.
• Cemeroğlu, B., 2007. Gıda Analizleri. Gıda Teknolojisi Derneği Yayınlan No; 34, Ankara.
• Ciulu, M., Solinas, S., Floris, I., Panzanelli, A., Pilo, M.I., Piu, P.C., Sanna, G., 2011. RP-HPLC determination of water-soluble vitamins in honey. Talanta, 83(3):924-929.
• Cooper, R.A., Molan, P.C., Harding, K.G., 2002. The sensitivity to honey of Gram‐positive cocci of clinical significance isolated from wounds. Journal of Applied microbiology, 93(5):857-863.
• Dolcet-Sanjuan, R., Claveria, E., Huerta, A., 1997. Androgenesis in Capsicum annuum L.—effects of carbohydrate and carbon dioxide enrichment. Journal of the American Society for Horticultural Science, 122(4):468-475.
• Dumas de Vaulx, R., Chambonnet, D., 1982. Culture in vitro d’anthe`res d’aubergine (Solanum melongena L.): stimulation de la production de plantes au moyen de traitements a` 358C associe´s a` de faibles teneurs en substances de croissance. Agronomie 2:983–988.
• Germana, M., 2011. Gametic embryogenesis and haploid technology as valuable support to plant breeding. Plant Cell Rep 30:839–857.
• Hema, B.P., Murthy, H.N., 2007. The effect of sugars on niger embryogenesis and plant regeneration in anther culture. Biologia Plantarum,51(4):773-776.
• Jain, N., Babbar, S.B., 2003. Effect of carbon source on the shoot proliferation potential of epicotyl explants of Syzygium cuminii. Biologia plantarum, 47(1):133-136.
• Khatun, F., Meah, M.B., Nasiruddin, K.M., 2006. Regeneration of eggplant through anther culture. Pak J Biol Sci, 9:48-53.
• Koch, K.E., 1996. Carbohydrate-modulated gene expression in plants. Annual review of plant biology, 47(1):509-540.
• Kováčik, J., Grúz, J., Biba, O., Hedbavny, J., 2016. Content of metals and metabolites in honey originated from the vicinity of industrial town Košice (Eastern Slovakia). Environmental Science and Pollution Research, 23(5):4531-4540.
• Kumar, H.A., Murthy, H.N., 2004. Effect of sugars and amino acids on androgenesis of Cucumis sativus. Plant cell, tissue and organ culture, 78(3), 201-208.
• Kumar, S., Singh, M., Prabhavathi, K., Mathews, A., Kumar, S., Singh, M., Mathews, A., 2003. In vitro induction of haploid in eggplant (Solanum melongena L.). Capsicum and Eggplant Newsletter, 22:147-150.
• Molan, P.C., 1992. The antibacterial activity of honey: 1. The nature of the antibacterial activity. Bee world, 73(1):5-28. Raina, S.K., Iyer, R.D. 1973. Differentiation of diploid plants from pollen callus in anther cultures of Solanum melongena L. Z Pflanzenzucht 70:275–280.
• Raina, S.K., Iyer, R.D., 1982. Honey-induced pollen embryogenesis in anther cultures of Datura metel. Experientia, 38(3):358-359.
• Rizza, F., Mennella, G., Collonnier, C., Shiachakr, D., Kashyap, V., Rajam, M.V., Prestera, M., Rotino, G.L., 2002.
• Androgenic dihaploids from somatic hybrids between Solanum melongena and S. aethiopicum group Gilo as a source of resistance to Fusarium oxysporum f. sp. melongenae. Plant Cell Rep 20:1022–1032.
• Rotino, G.L., 1996. Haploidy in eggplant. In: Jain SM, Sopory SK, Veilleux RE (eds) In vitro haploid production in higher plants. Kluwer, Dordrecht, 115–141.
• Rotino, G.L., 2016. Anther Culture in Eggplant (Solanum melongena L.). In Vitro Embryogenesis in Higher Plants, 453-466.
• Rotino, G.L., Sihachakr, D., Rizza, F., Vale, G., Tacconi, M.G., Alberti, P., Mennella, G., Sabatini, E., Toppino, L., D’Alessandro, A., Acciarri, N., 2005. Current status in production and utilization of dihaploids from somatic hybrids between eggplant (Solanum melongena L.) and its wild relatives. Acta Physiol Plant 27:723–733.
• Salas, P., Prohens, J., Seguí-Simarro, J.M., 2011. Evaluation of androgenic competence through anther culture in common eggplant and related species. Euphytica, 182(2): 261-274.
• Sanguineti, M.C., Tuberosa, R., Conti, S., 1990. Field evaluation of androgenetic lines of eggplant. Acta Hort 280:177–182.
• Singleton, V. L., Rossi, J. L., 1965. Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents. Amer. J. Enol. Vitic., 16:144–158.
• Tipirdamaz, R., Ellialtioglu, S., 1998. The effects of cold treatments and activated charcoal on ABA contents of anthers and in vitro androgenesis in eggplant (Solanum melongena L.). In 1st Balkan Botanical Congress, Thessaloniki (Greece), 19-22 Sep 1997. Kluwer Academic Publishers.
• Yadollahi, A., Abdollahi, M.R., Moieni, A., Danaee, M., 2011. Effects of carbon source, polyethylene glycol and abscisic acid on secondary embryo induction and maturation in rapeseed (Brassica napus L.) microspore-derived embryos. Acta Physiologiae Plantarum, 33(5):1905-1912.
• Yaseen, M., Ahmad, T., Sablok, G., Standardi, A., Hafiz, I.A., 2013. Review: role of carbon sources for in vitro plant growth and development. Molecular biology reports, 40(4):2837-2849.
• Zhiming, D.L., 1991. In vitro anther culture and haploid breeding of Solanum melongena. Biotechnology, 5, 007.
• Zhongheng, Z.H.Z., 2002. An analytic study of the sucrose concentrations, the exogenous hormones and the low temperaturepretreatment influencing the initiation of cell division in wheat pollen culture. Natural Science Journal of Harbin Normal University, 3, 021.