Bir İdris Anacı ‘Pontaleb’in Doku Kültürü İle Çoğaltılma Olanaklarının Araştırılması

Yıl 2018, Cilt: 55 Sayı: 1, 83 - 88, 30.03.2018

Ali Asghar Zainel Serra Hepaksoy

https://doi.org/10.20289/zfdergi.390987

Cited By: 2

Öz

Bu çalışmada, kiraz için önemli bir anaç olan idris
popülasyonu içinden Fransa’da seçilen ‘Pontaleb’ tohum anacının doku kültüründe
vejetatif olarak çoğaltılabilme olanağı araştırılmıştır. Sürgün uçları
alındıktan sonra yüzey sterilizasyonu yapılarak dikim yapıldı. Murashige Skoog (MS) temel besin ortamı
kullanılmış, bitki büyüme düzenleyicisi olarak 1-2 mg/l BAP, 0,1 mg/l IBA/NAA
ile 0,1 veya 0,5 mg/l GA₃ eklenmiştir. Çalışmada denenen ortamlar
içinde sürgün gelişimi ve çoğalması dikkate alındığında 2 mg/l BAP + 0,1 mg/l
NAA + 0,5 mg/l GA₃ içeren MS ortamı diğerlerine göre daha başarılı
bulunmakla birlikte çalışmada tatminkar sonuçlar elde edilememiştir.

Anahtar Kelimeler

Anaç, kiraz, pontaleb, Prunus mahalep L., in vitro, çoğaltma

Investigation of the Possibilities of Propagation a Mahaleb Rootstock 'Pontaleb' by Tissue Culture

Öz

In this study, the
possibility of vegetative propagation by tissue culture of ‘Pontaleb’ seedling
rootstock selected from the mahaleb population in France which is an important
rootstock for cherries was investigated. Shoot tip explants was taken and then
surface sterilized and planted. Murashige Skoog (MS) medium supplemented with 1
and 2 mg/l BAP, 0,1 mg/l IBA or NAA and GA₃ were used. For
proliferation and multiplication, MS medium containing 2 mg/l BAP + 0,1 mg/l NAA + 0,5 mg/l GA₃
was found to be more succesful  than the others but satisfactory results were not
obtained in the study.

Anahtar Kelimeler

Rootstock, cherry, pontaleb, Prunus mahalep L., in vitro, propagation

Kaynakça

• Anonim, 1985. Ülkemizdeki Bazı Önemli Orman Tali Ürünlerinin Teşhis ve Tanıtımı Klavuzu. T.C. Tarım Orman ve Köyişleri Bak. Orman Gen. Müd. Yay., Yay. no:659, Seri no:18. Ankara.
• Bošnjak, A.M., S. Kereša, I.H. Jerčić and M. Barić, 2012. The effect of cytokinin type and explant orientation on axillary shoot proliferation and in vitro rooting of Gisela 5 cherry rootstock, Journal of Food, Agriculture and Environment, 10 (3&4 ): 616-620.
• Büyükdemirci, H. 2008. The effects of medium ingredients on shoot propagation and rooting of cherry rootstocks in vitro. Acta Horticulturae, 795: 419-422.
• Damiano, C. and M.A. Palombi, 2000. La micropropagazione 20 anni dopo: innovazioni tecniche e ottimizzazione dei protocolli delle colture in vitro. Rivista di Frutticoltura, 62: 48-55.
• Davis, D.S., 1972. Flora of Turkey and the East Aegean Islands. Volume 4:19.
• Debnath, S.C., 2004. Clonal propagation of dwarf raspberry (Rubus pubescens Raf.) through in vitro axillary shoot pro¬liferation. Plant Growth Regulation, 43: 179–186.
• Demiral, S. ve S. Ülger, 2008. Gisela 5 kiraz anacının doku kültürü ile çoğaltılması üzerine bir araştırma. Akdeniz Üniversitesi Ziraat Fakültesi Dergisi, 21 (1): 117–121.
• Druart, P., 1996. Performance of the GM rootstocks in high density sweet cherry orchads. Acta Horticulturae, 410: 217-266.
• Gerçekçioğlu, R. ve Ç. Çekiç, 1999. Mahalep (Prunus mahalep L.) çekirdeklarının çimlenmesi üzerine bazı uygulamaların etkileri. Turkish Journal of Agriculture and Forestry, 23 (1): 145-150.
• Günal, F., 2006. Gisela 5 (P. cerasus x P. canescens) ve Maxma 14 (P. mahalep x P. avium) anaçlarından in vitro da sürgün elde edilmesi üzerine değişik BAP ve 2, 4- D düzeylerinin etkilerinin belirlenmesi. Süleyman Demirel Üniversitesi, Fen Bilimleri Enstitüsü, Yüksek Lisans Tezi, 56 S.
• Hepaksoy, S., 2004. Maxma 14 Kiraz Anacının İnvitro Üretimi, Anadolu Dergisi 14 (2): 67-80.
• Hrotkó, K. and G. Simon, 1996. Effect of rootstock on the growth and productivity of cherry trees. Acta Hortic. 410, 519-526.
• Iezzoni, A., H. Schmidt and A. Albertini, 1991. Cherries (Prunus). Acta Horticulturae, 290, III, 111–173.
• Katzer, G., 2001. Mahlep, http://www.-ang.kfunigraz.ac.at/katzer/eng/prun.mahhtm/ (Erişim Nisan 2016).
• Lugli, S., S. Mussachi, M. Grandi, G. Bassi, S. Franchini and M. Zago, 2011. The sweet cherry production in nortern Italy: innovative rootstock and emerging high-density plantings. Proceedings of the 3rd Conference “Innovations in Fruit Growing”, Belgrade, pp. 75-92.
• Mahdavian, M., N. Bouzari and H. Abdollahi, 2011. Effects of media and plant growth regulators on micropropagation of a dwarfing cherry rootstock (PHL-A). Romania, Biharean Biologist 5 (2): 86-90. Article No: 111112.
• Muna, A.S., A.K. Ahmad, K. Mahmoud and Abdul-Kade, M. Khoder and K. Abdul-Rahman, 1999. In vitro propagation of a semi-dwarfing cherry rootstock. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 59: 203–208.
• Murashige,T. and F. Skoog, 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tabacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15: 473-497.
• Muriithi, L.M., T.S. Rangan and B.H. Waite, 1982. In vitro propagation of fig through shoot tip culture. HortScience, 17, 1, 86–87.
• Nordstrom, A.C. and L. Eliasson, 1986. Uptake and translocation of C14-labled benzylaminopurine in apple shoots grown in vitro in relation to shoot development. Physiol Plantarium 68 (3): 431–435.
• Perry, R.L., 1987. Cherry rootstocks. In: Rootstocks for Fruit Crops, R.C. Rom and R.F. Carlson (eds.), pp. 217-264. John Wiley & Sons, Inc., New York.
• Ranjit, M. and D.E. Kester, 1988. Micropropagation of cherry rootstocks. II. Invigoration and enhanced rooting of 46-1 mazzard by co-culture with colt. J. Amer. Soc. Hort. Sci., 113, 1, 150 – 154.
• Skirvin, R.M. and M.C. Chu, 1979. In vitro propagation of “Forever Yours” rose. HortScience, 15 (4): 608-610.
• Šiško, M., 2011. In vitro propagation of Gisela 5 (Prunus cerasus × P. canescens). Agricultura 8: 31-¬34.
• Trefois, R., 1985. Dwarfing rootstocks for Sweet Cherries. Acta Hortitculturae, 169: 147-155.
• Zilkah, S., E. Faingersh and A. Rotbaum, 1992. In vitro Propagation of three MxM (Prunus avium x P. mahaleb) cherry rootstocks. Acta Horticulturae, 314:201-208.