Sağlıklı ve Subklinik Mastitisli İneklerde Kan Serumu ALP, ALT ve Glukoz Düzeyleri Üzerine Çalışma

Year 2009, Volume: 4 Issue: 3, 163 - 168, 08.03.2010

Murat Yüksel Fatih Kandemir , Hüseyin Deveci Necmi Özdemir

Abstract

Bu çalıĢmada, subklinik mastitisli ineklerin serum alkalen fosfataz (ALP), alanin aminotransferaz (ALT) ve glukoz düzeyleri ölçülerek, subklinik mastitis ile bu parametrelerin aktivitesi arasındaki iliĢki araĢtırıldı. ÇalıĢmada çeĢitli yaĢ ve ırklardan 10’u sağlıklı (kontrol), 10’u da subklinik mastitisli toplam 20 inek materyal olarak kullanıldı. Hayvanlarda mastitis teĢhisi California Mastitis Test (CMT) ve mikrobiyolojik muayene ile yapıldı. Serum ALP, ALT ve glukoz düzeyi spektrofotometrik yöntemle saptandı. Subklinik mastitisli ineklerde serum ALT aktiviteleri ortalama 12.22 IU/L, kontrollerde 9.12 IU/L olarak bulundu (p<0.05). ALP aktiviteleri subklinik mastitisli hayvanlarda 28.28 IU/L ve kontrollerde 71.04 IU/L (P<0.01), glukoz seviyeleri ise sağlıklı grupta 62.62 mg/dl, subklinik mastitisli grupta 63.96 mg/dl (p>0.05) olarak tespit edildi. Subklinik mastitisli ineklerde ALT aktivitesinin arttığı, ALP enzim aktivitesinin azaldığı glukoz seviyesinin ise değiĢmediği belirlendi. Sonuç olarak, kandaki ALP ve ALT aktivitelerinin, sütçü sığırların mastitise karĢı dirençlerinin belirlenmesinde ve subklinik mastitisin teĢhisine ilave bir metot olarak kullanılabileceği kanısına varıldı.

Keywords

Subklinik mastitis, ALT, ALP, Glukoz, İnek

References

• Altuntaş A., Fidancı UR., 1993. Evcil hayvanlarda biyokimyasal normal değerleri. Ankara Üniv. Vet. Fak. Derg., 40,2: 173-186.
• Atroshi F., Parantainen J., Sankari S., Jarvinen M., Lindberg LA., Saloniemi H. 1996. Changes in inflammation-related blood constituents of mastitic cows. Vet. Res., 27,2: 125-132.
• Batavani RA., Mortaz E., Falahian K., Dawoodi MA., 2003. Study on frequency, etiology and some enzymatic activities of subclinical ovine mastitis in Urmia, Iran. Small Rumin. Res., 50,1-2: 45-50.
• Batu A., 1978. Sığır mastitisi. Pendik Vet. Mikrob. Derg., 10,2: 63-91. Batu A., 1991. Hayvanlarda Meme Hastalıkları ve Mastitis 1. Baskı., Kuşak Ofset., İstanbul.
• Bessey OA., Lowry OH., Brock MJ., 1946. A method for the rapid determination of alkaline phosphatase with five cubic milimeters of serum. J. Biol. Chem., 164: 321.
• Bishop JR., Bodine AB., Janzen JJ., 1980. Sensitivities to antibiotics and seasonal occurence of mastitis patogens. J. Dairy Sci., 63,7: 1134-1137.
• Bozhkova G., Tsvetkov A., 1976. Biochemical and cytological changes in the milk and blood of cows with subclinical mastitis. Vet. Med. Nauki., 13,10: 74-79.
• Çetin H., Gürgöze SY., Keskin O., Atlı MO., Korkmaz Ö., 2005. Investigation of antioxidant biochemical parameters in ewes with gangrenous mastitis. Turk J. Vet. Anim. Sci., 29: 303-308. and some
• Deveci H., Apaydın AM., Kalkan C., Öcal H., 1994. Hastalıkları 1. Baskı., Fırat Üniversitesi Basımevi., Elazığ, Meme
• Harmon RJ., 1994. Physiology of mastitis and factors affecting somatic cell counts. J. Dairy Sci., 77, 7: 2103-2112.
• Heyneman R., Burvenıch C., 1992. Kinetics and characteristics of bovine neutrophil phosphatase during acute escherichia coli mastitis. J. Dairy Sci., 75; 1826- 1834.
• Hinckley LS., Benson RH., Post JE., DeCloux JC., profiles for mastitis treatment. JAVMA, 187,7: 709-711. susceptibility
• Hultman E., 1959. Rapid specific method for determination of aldosaccharides in body fluids. Nature, 183,4654:108-109. Jain NC., 1979. Common mammary pathogens and factors in infection and mastitis. J. Dairy Sci., 62,1: 128-134.
• Karagül H., Altıntaş A., Fidancı UR., Sel T., 1999. Temel Biyokimya Uygulamaları 1. Baskı., Medisan Yayın Serisi., Ankara.
• Keefe GP., 1997. Streptococcus agalactie mastitis. Can. Vet. J., 38: 429-437.
• Keefe GP., Dohoo IR., Spangler E., 1997. Herd prevalence and incidence of streptococcus agalactie in the dairy industry of Prince Edward Island. J. Dairy Sci., 80,3: 464-470.
• Kitchen BJ., Middleton G., Durward IG., Andrews RJ., Salmon MC., 1980. Mastitis diagnostic tests to estimate mammary gland epithelial cell damage. J. Dairy Sci., 63: 978-983.
• McDonald JS., 1979. Bovine mastitis: Introductory remarks. J. Dairy Sci., 62,1: 117-118.
• Mert N., Tayar M., Ogan M., Müftüoğlu A., Yavuz M., 1992. Süt ineklerinde subklinik mastitisin biyokimyasal araştırmalar. Uludağ Üniv. Vet. Fak. Derg., 11,2: 13-18. getirdiği üzerine değişimler
• Morse D., DeLorenzo MA., Natzke RP., Bray DR., 1978. Factors affecting days of discarded milk due to clinical mastitis and subsequent cost of discarced milk. J. Dairy Sci., 70,11: 2411-2418.
• Nak D., 1999. Subklinik mastitislerin teşhis yöntemleri üzerine çalışmalar. Uludağ Üniv. Vet. Fak. Derg., 18,3: 15-27.
• Natze RP., 1981. Elements of mastitis control. J. Dairy Sci., 64,6: 1431-1442.
• Oliver SP., Gillespie BE., Headrick SJ., Moorehead H., Lunn P., Dowlen HH., Johnson DL., Lamar KC., Chester ST., Moseley WM., 2004. Efficacy of extended ceftiofur ıntramammary therapy for treatment of subclinical mastitis in lactating dairy cows. J. Dairy Sci., 87: 2393-2400.
• Pednekar UVT., Swarup D., Srivastava BB., 1992. Evaluation of some indirect tests for detecting of sub-clinical mastitis. Indian J. Anim. Sci., 62,12: 1126-1130.
• Philtop WN., 1984. Economics of mastitis control. Vet. Clin. North Am: Large Anim. Pract., 6,2: 233-245.
• Philtop WN., Nickerson SC., 1991. Mastitis: Counter Attack. First Edition, Babsob Bros Co, Illinois.
• Reitman S., Frankel S., 1957. A colorimetric method for the determination of serum glutamic oxalacetic and glutamic pyruvic transaminases. Am. J. Clin. Pathol., 28: 56.
• Rişvanlı A., Turköz Y., Kalkan C., Çetin H., 1999. Klinik mastitisli ineklerde kan serumunda bazı biyokimyasal değerlerin araştırılması. Fırat Üniv. Sağ. Bil. Derg., 13,2: 131-134.
• Sevinç M., Başoğlu A., Semacan A., Şen İ., Boydak M., 2002. Sütçü sığırlarda klinik mastitisin karaciğer yağlanması ile ilişkisi. Hayv. Araş. Derg., 12,2: 26-30.
• Soldatov AP., Ostroukhova VI., Dubinskaya NI., 1992. Selection of dairy cattle for resistance to mastitis. Sel'skokh Biol., 6: 18-25.
• Soldatov AP., Dubinskaya NI., Ostroukhova VI., 2002. Change in the activity of enzymes during mastitis in cows. Ross Akad Sel’skokh Nauk., 7: 39-41.
• Soldatov AP., Ostroukhova VI., 2002. The activity of the enzymes and content of hormones in the blood of healthy and mastitis-infected cows. Russ. Agric. Sci., 1: 47-50.
• Şenünver A., Kirşan İ., 1995. Evcil Hayvanlarda Mastitis. 1. Baskı, İstanbul Üniv. Vet. Fak. Masaüstü Yay., İstanbul.
• Wada Y., Fukai R., Yamada M., Onda K., Ono K., Ikeda T., Kanemaki N., Matuura K., Tamura H., Tanaka S., 2002. Analysis of mastitic cows on the basis of isolated microorganisms, clinical findings and clinico-pathological changes. J. Jap. Vet. Med. Ass., 54,7: 521-525. levels,