Mix Infection in the Cultured Black Sea Trout (Salmo trutta labrax)

Year 2019, Volume: 16 Issue: 2, 103 - 108, 08.08.2019

Çiğdem Ürkü

https://doi.org/10.32707/ercivet.595641

Abstract

This study was carried out for the investigation of
the mortalities observed in Black Sea trout (Salmo trutta labrax) reared in a fish farm in Marmara Region, detection
of pathological changes in tissues caused by agents and also for determination
of proper treatment against isolated pathogens. For this purpose, six moribund Black Sea trout (400-500 g) were
examined by using bacteriological, parasitological and histopathological
methods. Externally, affected fish
showed darkening of skin, deep
skin lesions with exposure of muscle around the caudal fin as well as adipose and caudal fin erosions
also the lesions down into the skeletal muscles around the caudal fin;
internally pale liver, hyperemia around the gastrointestinal tract. Both
external and internal parasites were not found on the affected fish samples. Bacterial
inoculations were made from the visceral organs such as liver, spleen and
kidney. Depending on the morphologic, physiologic and biochemical properties,
bacterial isolates recovered from the fish samples were identified as Pseudomonas fluorescens and Staphylococcus sp. It was also
determined that these isolates are the most sensitive to flumequine. Histopathologically,
hemorrhages between the pyloric ceca; sloughing of the epitelial cells of
mucosa to the lumen; degeneration of the parenchyma epithelial cells of the
kidney tubules, periglomerular oedema and depletion of the haemopoietic tissue;
degeneration of the liver parenchyma cells; depletion of red pulp and
melanomacrophages center in the spleen and also necrosis in the gill filaments
were observed. In this study, Pseudomonas
fluorescens and Staphylococcus
sp. were isolated and identified from cultured Black Sea trout for the first
time as a disease agents as well as detailed pathological changes caused by
these pathogenic bacteria in tissues.

Keywords

Flumequine, histopathology, Black Sea trout, Pseudomonas fluorescens, Staphylococcus sp.

Kültürü Yapılan Karadeniz Alabalıklarında (Salmo trutta labrax) Karma Enfeksiyon

Abstract

Bu
çalışma, Marmara Bölgesi’ ndeki bir işletmede kültürü yapılan Karadeniz
alabalıklarında (Salmo trutta labrax)
görülen ölümlerin nedenini belirlemek, etkenin dokularda meydana getirdiği
patolojik değişikliklerin tespiti yanı sıra etkene karşı uygun olan tedaviyi
belirlemek amacı ile yürütülmüştür. Bu amaçla altı adet hasta Karadeniz
alabalığı (400-500 g) bakteriyolojik, parazitolojik ve histopatolojik metotlar
kullanılarak incelenmiştir. Hasta alabalıklarda iç bakıda sırt bölgesinde
renkte koyulaşma, adipoz yüzgeç ve kuyruk yüzgeçlerinde erime yanı sıra kaudal
yüzgeç etrafında kaslara kadar inen derin deri lezyonları; dış bakıda ise
splenomegali, karaciğerde solgunluk, sindirim kanalı etrafındaki damarlarda
hiperemi gibi klinik bulgular tespit edilmiştir. İncelenen hasta balıklarda
herhangi bir parazitin varlığına rastlanılmamıştır. Hasta balıkların karaciğer,
böbrek ve dalak gibi iç organlarından Tryptic Soy Agar (TSA) besiyerine yapılan
ekimlerin inkübasyonu sonucunda besiyerinde üreyen bakterilerin morfolojik,
fizyolojik ve biyokimyasal özellikleri incelendiğinde izole edilen bakteriler Pseudomonas fluorescens ve Staphylococcus sp. olarak identifiye
edilmiş ayrıca izole edilen bu bakterilerin en çok flumekuine karşı duyarlı
olduğu tespit edilmiştir. Histopatolojik olarak, pilorik sekalar arasında
hemoraji, bağırsak lümenini örten epitel hücrelerinde nekroz ve lümene dökülme,
böbrek tübülerinin parankim epitelyum hücrelerinde dejenerasyon, periglomerular
ödem, hemapoietik dokuda boşalma, karaciğerin parankim hücrelerinde dejenerasyon
ve nekroz, dalak dokusunda kırmızı pulpada boşalma ve melanomakrofaj odakları
yanı sıra solungaç filamentlerinde nekroz gözlenmiştir. Bu
çalışma ile kültür çalışmaları yapılan hasta Karadeniz alabalıklarında ilk kez
hastalık etkeni olarak Pseudomonas
fluorescens ve Staphylococcus sp.
izole ve identifiye edilmiş ayrıca bu patojen bakterilerin dokularda meydana
getirdiği patolojik değişiklikler detaylı bir şekilde verilmiştir.  

Keywords

Flumekuin, histopatoloji, Karadeniz alabalığı, Pseudomonas fluorescens, Staphylococcus sp.

References

• 1. Ahne W, Popp W, Hoffmann R. Pseudomonas fluorescens as a pathogen of tench (Tinca tinca). B Eur Assoc Fish Pat 1982; 4: 56-7.
• 2. Akaylı T, Timur G. Yavru alabalıklarda (Oncorhynchus mykiss) pseudomonad septisemisi üzerinde bir çalışma. İÜ Vet Fak Derg 2004; 30(1): 121-31.
• 3. Akaylı T, Çiğdem Ü, Başaran B. Kültür balıklarında Staphylococcus cohnii subsp. cohnii enfeksiyonu. Turk J Aqu Sci 2011; 26(2): 1-12.
• 4. Akaylı T, Çiğdem Ü, Çanak Ö, Sönmez E, Erk MH. Micrococcus luteus’un bazı Gram pozitif balık patojenlerine karşı etkisinin araştırılması. Kocatepe Vet Derg, 2016; 9(2): 74-9.
• 5. Aksungur M, Yılmaz C, Tabak İ, Aksungur N, Mısır, DS. Karadeniz alabalığı (Salmo trutta labrax, Pallas, 1811)’nın kültür şartlarına adaptasyonu. FÜ Fen ve Müh Bil Derg 2005; 17(2): 349-59.
• 6. Allen DA, Austin B, Colwell, RR. Numerical taxonomy of bacterial isolates associated with a freshwater fishery. J Gen Microbiol 1983; 129: 2043-62.
• 7. Austin B, Austin DA. Bacterial Fish Pathogens Disease in Farmed and Wild Fish, Fifth Edition. London: Springer, 2012; pp. 349-51.
• 8. Austin B, Al-Zahrani AMJ. The effect of antimicrobial compounds on the gastrointestinal microflora of rainbow trout Salmo gairdneri richardson. J Fish Biol 1988; 33:1-14.
• 9. Aydın S, Gültepe N, Çiltaş A. Çanakkale ilindeki bir gökkuşağı alabalığı (Oncorhynchus mykiss Walbaum) işletmesinde Pseudomonas sp. enfeksiyonu. AÜ Ziraat Fak Derg 2010; 36(1): 39-43.
• 10. Barry AL, Thornsberry C. Susceptibility tests: diffusion test procedures, Lennette EH, Balows A, Hausler WJ, Shadamy HJ, eds. Manual of Clinical Microbiology. Fourth Edition. Washington: American Society of Microbiology, 1985; pp. 978-87.
• 11. Buller NB. Bacteria from fish and other aquatic animals: A practical dentification manual. UK: CABI Publishing, 2004; pp. 149-54.
• 12. Bullock GL Characteristics and pathogenicity of a capsulated Pseudomonas isolated from gold fish. App Microbiol 1965; 13: 89-92.
• 13. Bullock AM. Laboratory Methods in Fish Pathology. Roberts RJ ed. London: Bailliere Tindall, 1978; pp. 235-67.
• 14. Csaba G , Prigli M, Bekesi L, Kovacs E, Gayer E, Bajmocy F. Septicaemia in silver carp (Hypophthalmichthys molitrix,) and bighead (Aristichthys nobilis) caused by Pseudomonas fluorescens. In: Fish, Pathogens and Environment in European Polyculture (Olah J, Molnar K, Jeney S , eds.) Mueller F (Fisheries Research Institute, Szarvas), 1981; pp. 111-23.
• 15. Culling CFA. Handbook of histopatological tecniques (Including museum tecnique). Second education, Butterworth and Co. (Publisher) Ltd, 1963; pp. 25-97.
• 16. Darak O, Barde RD. Pseudomonas fluorescens associated with bacterial disease in Catla catla in Marathwada region of Maharashtra. Inter J Adv Biotech Res 2015: 6(2), 189-95.
• 17. Erbaş Hİ, Başçınar N, Sonay FH, Civelek RO. Farklı büyüklükteki Karadeniz alabalığı (Salmo trutta labrax Pallas, 1811) damızlıklarının büyüme performansına yemleme sıklığının etkisi. BİBAD 2013; 6: 67-71.
• 18. Kılıç A, Şeker E, Özcan M, İspir Ü. Bacterial flora of rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss) in farms in Elazığ region. Sc Eng J FU 2007; 19(2): 129-32.
• 19. Markovic M, Radojicic M, Cosic S, Levnaic D. Massive death of silver carp (Hypophthalmichthys molitrix Val.) and bid head (Aristichthys nobilis Rich.) caused by Pseudomonas fluorescens bacteria. Vet Glasnik 1996; 50: 761-5.
• 20. Metin S, Kubilay A, Onuk EE, Didinen BI, Yildirim P. First isolation of Staphylococcus warneri from cultured rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) broodstock in Turkey. Bull Euro Assoc Fish Pathol 2014; 34: 165-74.
• 21. Meyer FP, Collar JD. Description and treatment of Pseudomonas infection in white catfish. Appl Microbiol 1964; 12: 201-3.
• 22. Miyazaki T, Kubota S, Miyashita T. A histopathological study of Pseudomonas fluorescens infection in tilapia. Fish Path 1984: 19(3), 161-6.
• 23. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Performance standards for antimicrobial susceptibiliety testing. Approved standard. NCCLS document M100-S5. 1993; pp. 104-7.
• 24. Roberts RJ. Fish Pathology. Fourth edition. UK: Wiley-Blackwell, 2012; pp. 367-368.
• 25. Sakai M, Atsuta S, Kobayashi M. Pseudomonas fluorescens isolated from the diseased rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. K Arc Experiment Med 1989; 62: 157-62.
• 26. Savas H, Altinok I, Cakmak E, Firidin S. Isolation of Renibacterium salmoninarum from cultured Black sea salmon (Salmo trutta labrax): first report in Turkey. B Eur Assoc Fish Pat 2006; 26(6): 238-44.
• 27. Serezli R, Güzel Ş, Kocabaş M. Fecundity and egg size of three salmonid species (Oncorhyncus mykiss, Salmo labrax, Salvelinus fontinalis) cultured at the same farm condition in North-Eastern, Turkey. J Anim Vet Adv 2010; 9: 576-80.
• 28. Timur, G, Timur M. Balık Hastalıkları, İstanbul Üniversitesi Su Ürünleri Fakültesi, İstanbul, 2003; pp. 350-421.
• 29. Timur, G, Akayli T. First study of Stapylococcosis in farmed rainbow trout fry in Turkey, International Symposium of Fsheries and Zoology, 23-26 October 2003; pp. 67-79.
• 30. Turgay E, Steinum SK, Candan A. Kültürü yapılan gökkuşağı alabalıklarında (Oncorhynchus mykiss) Staphylococcus hominis subsp. hominis enfeksiyonu. T J Aqu Scie 2015; 30(1): 11-22.
• 31. Türe M, Haliloğlu Hİ, Altuntaş, C, Boran, H, Kutlu, İ. Comparison of Experimental Susceptibility of Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss), Turbot (Psetta maxima), Black Sea Trout (Salmo trutta labrax) and Sea Bass (Dicentrarchus labrax) to Lactococcus garvieae. J Fish Aquat Sc 2014; 14(2): 507-13.
• 32. Türkiye İstatistik Kurumu (TUİK), 2018, http://www.tuik.gov.tr/PreHaberBultenleri.do?id=10863 Erişim tarihi: 21.01.2018.