Farklı Sükroz Konsantrasyonlarını İçeren Kültür Ortamında Pogostemon erectus (Dalzell) Kuntze’un İn Vitro Sürgün Rejenerasyon Performansı

Year 2019, Volume: 2 Issue: 1, 1 - 12, 15.06.2019

Muhammet Doğan

Abstract

Bitki doku kültürü ortamlarının temel
bileşenlerinden biri karbon kaynağıdır. Birçok karbon kaynağı olmasına rağmen
sükroz en çok tercih edilenidir. Bu çalışmada, farklı sükroz konsantrasyonları
eklenmiş Murashige ve Skoog (1962) (MS) besin ortamlarında Pogostemon erectus (Dalzell) Kuntze’un sürgün ucu eksplantlarından in vitro klonal üretimi araştırılmıştır.
Kültür ortamlarında sürgünlerin çıkışları farklı sükroz uygulaması ile
değişmiştir. Kontrol grubu ve 5 mg/L sükroz içeren kültür ortamlarında
sürgünler geç oluşmuştur. Sürgün rejenerasyon yüzdeleri % 27.77-100 arasında
belirlenmiştir. Artan sükroz seviyesine göre sürgün rejenerasyon değerleri
artış göstermiştir. Eksplant başına sürgün sayıları 4.67-17.38 adet arasında
değişmiştir. Maksimum sürgün sayısı (17.38 adet) 30 g/L sükroz ile desteklenmiş
kültür ortamında elde edilmiştir. Sükroz etkisi ile sürgün uzunlukları
1,56-3,45 cm arasında belirlenmiştir. En yüksek sürgün uzunluğu (3.45 cm) 40
g/L sükroz ilave edilmiş kültürlerde kaydedilmiştir. Minimum sürgün sayısı ve
sürgün uzunlukları kontrol grubu eksplantlarında tespit edilmiştir. Büyüyen sürgünler
üzerinde kök oluşumları elde edildiği için ayrıca köklendirme çalışması
gerçekleştirilmemiştir. Bitkiler ex vitro
şartlara başarıyla alıştırılmıştır. 

Keywords

Doku kültürü, Karbon kaynağı, Sükroz

References

• Abdullah, G.R., Al-Khateeb, A.A., & Layous, L.N. (2013). Response of the strawberry Cv. elsanta micro propagation in vitro to different carbon sources and concentrations. Jordan Journal of Agricultural Sciences, 173(804): 1-22.
• Ahmad, T., Abbasi, N.A., Hafiz, I.A., & Ali, A. (2007). Comparison of sucrose and sorbitol as main carbon energy sources in microprogation of peach rootstock GF-677. Pakistan Journal of Botany, 39(4): 1264–1275.
• Dogan, M. (2017). Multiple shoot regeneration from shoot tip and nodal explants of Rotala rotundifolia (Buch-Ham. ex Roxb) Koehne. Anatolian Journal of Botany, 1(1,2): 4-8.
• Dogan, M. (2019a). Multiple shoot regeneration via ındirect organogenesis from shoot tip and nodal meristem explants of Ceratophyllum demersum L. Journal of Animal and Plant Sciences, 29: 568-577.
• Dogan, M., & Emsen B. (2018). Anti-cytotoxic-genotoxic influences of in vitro propagated Bacopa monnieri L. Pennell in cultured human lymphocytes. Eurasian Journal of Biological and Chemical Sciences, 1(2): 48-53.
• Doğan, M. (2017). In vitro koşullarda çoğaltılan bazı su bitkilerinin fitoremediasyon potansiyellerinin araştırılması. Karamanoğlu Mehmetbey Üniversitesi, Fen Bilimleri Enstitüsü, Doktora Tezi, Karaman.
• Doğan, M. (2019b). In vitro rapid propagation of an aquatic plant Pogostemon erectus (Dalzell) Kuntze. Anatolian Journal of Botany, 3(1): 1-6.
• Faria, R.T.D., Rodrigues, F.N., Oliveira, L.D.V., & Müller, C. (2004). In vitro Dendrobium nobile plant growth and rooting in different sucrose concentrations. Horticultura Brasileira, 22(4): 780-783.
• Gabryszewska, E.A. (2015). Effect of different sucrose and nitrogen salt levels in the medium and temperature on in vitro propagation of Helleborus niger L. Acta Agrobotanica, 68(2): 161-171.
• Ghorbani, T., Kahrizi, D., Saeidi, M., & Arji, I. (2017). Effect of sucrose concentrations on Stevia rebaudiana Bertoni tissue culture and gene expression. Cell Mol Biol (Noisy le Grand), 63(8): 32-36.
• Haque, S.M., & Ghosh, B. (2019). A submerged culture system for rapid micropropagation of the commercially important aquarium plant,‘Amazon sword’(Echinodorus ‘Indian Red’). In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 55(1): 81-87.
• Hdider, C., & Desjardines, Y. (1994). Effect of sucrose on photosynthesis and phosphoenolpyruvate carboxylase activity of in vitro cultured strawberryplantlets. Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 36: 27-33.
• Ikenganyia, E.E., Anikwe, M.A.N., Omeje, T.E., & Adinde, J.O. (2017). Plant tissue culture regeneration and aseptic techniques. Asian Journal of Biotechnology and Bioresource Technology, 1(3): 1-6.
• Isah, T. (2019). De novo in vitro shoot morphogenesis from shoot tip-induced callus cultures of Gymnema sylvestre (Retz.) R. Br. ex Sm. Biological research, 52(1): 3.
• Koch, K. (1996). Carbohydrate-modulated gene expression in plants. Annual Review of Plant Biology, 47: 509-540.
• Ling, W.T., Liew, F.C., Lim, W.Y., Subramaniam, S., & Chew, B. L. (2018). Shoot induction from axillary shoot tip explants of fig (Ficus carica) cv. Japanese BTM 6. Tropical Life Sciences Research, 29(2): 165.
• Loyola-Vargas V.M., & Avilez-Montalvo R.N. (2018). Plant Tissue Culture: A Battle Horse in the Genome Editing Using CRISPR/Cas9. In: Loyola-Vargas V., Ochoa-Alejo N. (eds) Plant Cell Culture Protocols. Methods in Molecular Biology, vol 1815. Humana Press, New York, NY
• Murashige, T., & Skoog, F. (1962). A Revised Medium for Rapid Growth and Bioassays With Tobacco Tissue Cultures. Plant Physiology, 15: 473-497.
• Naik, P.M., Godbole, M., Nagella, P., & Murthy, H.N. (2017). Influence of different media, medium strength and carbon sources on adventitious shoot cultures and production of bacoside A in Bacopa monnieri (L.). Ceylon Journal of Science, 46(4): 97-104.
• Neelakandan, A.K., & Wang, K. (2012). Recent progress in the understanding of tissue culture-induced genome level changes in plants and potential applications. Plant cell reports, 31(4): 597-620.
• Phillips, G.C., & Garda, M. (2019). Plant tissue culture media and practices: an overview. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 55(3): 242-257.
• Rasheed, K.A., & Yaseen, S.A. (2013). In vitro shoot multiplication of Asparagus densiflorus as affected by media, sucrose and ph. International Journal of Pure and Applied Sciences and Technology, 17: 28-35.
• Serret, M.D., Trillas, M.I., Matas, J., Araus, J.L. (1997). The effect of different closure types, light, and sucrose concentrations on carbon isotope compositionand growth of Gardenia jasminoides plantlets during micropropagationand subsequent acclimation ex vitro. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 47: 217-230.
• Snedecor, G.W., & Cochran, W.G. (1997). Statistical Methods. The Iowa State University Press, Iowa. USA.
• Srivastava, P., Tiwari, K.N., & Srivastava, G. (2017). Effect of different carbon sources on in vitro regeneration of Brahmi Bacopa monnieri (L.) An important memory vitalizer. Journal of Medicinal Plants Research, 5(3): 202-208.
• Vinterhalter, D.V., & Vinterhalter, B.S. (1999). Hormone-like effects of sucrose in plant in vitro cultures. Phyton, 39(3): 57-60.
• Yaseen, M., Ahmad, T., Sablok, G., Standardi, A., & Hafiz, I.A. (2013). Role of carbon sources for in vitro plant growth and development. Molecular biology reports, 40(4): 2837-2849.