Doğu Friz Irkı Koyunlarda Farklı Tohumlama Dozlarının Gebelik Başarısı Üzerine Etkisi

Abstract

Saha şartlarında sperma almak ve tohumlama yapmak her zaman aynı koşullarda ve temiz şartlarda yapılamamaktadır. Bu çalışmada saha şartlarında üç farklı dozda taze sperma ile intraservikal yolla suni tohumlama uygulaması sonucunda gebelik oranlarının araştırılması amaçlandı. Araştırmada Doğu Friz ırkı 60 adet koyun 3 gruba ayrıldı (n=20) ve 3 adet koç kullanıldı. Koyunlarda kızgınlıkların senkronize edilmesi amacıyla 20 mg flugeston asestat emdirilmiş süngerler 3 gruba da 12 gün süreyle yerleştirildi. Süngerlerin çıkarılacağı gün ovulasyonları senkronize etmek için tüm koyunlara 500 IU PMSG enjeksiyonu yapıldı ve 24 saat içerisinde tüm koyunların östrus gösterdiği tespit edildi. Aynı çiftlikteki aynı ırk 3 koçtan alınan spermalarla östrustaki koyunlar intraservikal yolla tohumlandı. Tohumlama dozları 1.grup için 100x106 spermatozoa/ml, 2.grup için 200x106 spermatozoa/ml, 3.grup için 400x106 spermatozoa/ml olarak belirlendi. Tohumlamaların ardından toplamda 28 adet (%47) koyunda fertilizasyon olmadığı ve tekrar kızgınlık gösterdiği, diğer 32 adet (%53) koyunun gebe kaldığı tespit edildi. Gerçekleştirilen istatistiksel analiz sonucunda 3.Grup (400x106) gebelik oranı 1. Gruba (100x106) göre anlamlı olarak daha başarılı bulunmuştur (P<0.05). Sonuç olarak tohumlama dozları kıyaslandığında saha koşullarında 400x106 spermatozoa/ml dozda sulandırılmış taze sperma ile tohumlamanın yüksek gebelik oranlarının elde edilmesinde etkili olduğu belirlendi.

Keywords

• Doğu Friz
• Koyun
• Sperma
• Senkronizasyon
• PMSG
• Progestagen

The Effect of Different Insemination Doses on Pregnancy Success in East Frisian Sheep

Abstract

Semen collection and insemination under field conditions may not always be done in similar and clean conditions. In this study, it was aimed to investigate the pregnancy rates as a result of intracervical artificial insemination at three different doses of fresh semen under field conditions. In the research, 60 East Frisian sheep were divided into 3 groups(n=20) and 3 rams were used. In order to synchronize the estrus in sheep, sponges impregnated with 20 mg flugestone acetate were placed in the all groups for 12 days. All sheep were injected with 500 IU PMSG to synchronize ovulation on the day the sponges were to be removed, and it was determined that all sheep showed oestrus within 24 hours. Sheep were inseminated intracervically with semen from 3 rams of the same breed in the same farm. Insemination doses were determined as 100x106 spt/ml for the first group, 200x106 spt/ml for the second group and 400x106 spt/ml for the third group. After insemination, it was determined that 28 (43%) sheep did not have fertilization and showed heat again, and the other 32 (53%) sheep became pregnant. According to the statistical analysis results, the 3rd group (400x106) was found to be significantly more successful than the 1st group (100x106) (P<0.05). As a result, when the insemination doses were compared, it was determined that insemination with 400x106 spermatozoa/ml diluted fresh semen was more effective in obtaining the high pregnancy rates.

Keywords

• East Frieze
• Sheep
• Sperma
• Synchronization
• PMSG
• Progestagen
• Doğu Friz
• Koyun
• Senkronizasyon
• Progestajen

References

1. 1. Kalkan, C., Horoz, H.K., Pubertas ve Seksüel Sikluslar. In: Alaçam, E. (Ed.), Evcil Hayvan¬ larda Doğum ve İnfertilite (5. Baskı). Ankara, Medisan, pp. 23-40, 2005.
2. 2. Pineda, M.H., Reproductive Patterns of Sheep and Goat. In: McDonald, L.E., Pineda, M.H. (Ed.), Veterinary Endocrinology and Reproduction (4th ed.). Philadelphia, London, Lea&Febiger, pp. 428-445, 1989.
3. 3. Karaca, F. "Üreme Mevsiminde vajinal sünger ve kulak İmplantı uygulamalarıyla senkronize edilen kıl keçilerinde farklı zamanlarda yapılan servikal tohumlamaların gebelik oranlarına etkisi." Atatürk Üniversitesi Veteriner Bilimleri Dergisi 12.1 (2017): 63-70.
4. 4. Ataman MB., 2002. Koyun ve keçilerde reprodüksiyon ve suni tohumlama. In “Evcil Hayvanlarda Dölerme ve Sun’i Tohumlama”, Ed., K Çoyan, 137-154, Selçuk Üniversitesi Veteriner Fakültesi Yayın Ünitesi, Konya.
5. 5. Alaçam, E., Üremenin Kontrolü. In: Alaçam, E. (Ed.), Evcil Hayvanlarda Doğum ve İnfertilite (5.Baskı). Ankara, Medisan, pp. 71-80, 2005.
6. 6. Hafez, E.S.E., Hafez, B., Reproductive Cycles. In: Hafez, E.S.E., Hafez, B. (Ed.), Reproduction in Farm Animals (7th ed.). Oxford, WileyBlackwell, pp. 55-67, 2000.
7. 7. Fukui, Y., Ishikawa, D., Ishida, N., Okada, M., Itagaki, R., Ogiso, T., Comparison of fertility of estrous synchronized ewes with four different intravaginal devices during the breeding season. Journal of Reproduction and Development 45(5), 337-343, 1999
8. 8. Husein, M.Q., Kridli, R.T., Effect of progesterone prior to GnRH-PGF2a treatment on induction of oestrus and pregnancy in anoestrous Awassi ewes. Reproduction in Domestic Animals 38, 228-232, 2003.

9. 9. Zeleke, M., Greyling, J.P.C., Schwalbach, L.M.J., Muller, T., Erasmus, J.A., Effect of progestagen and PMSG on oestrous synchronization and fefrtility in Dorper ewes during the transition period. Small Ruminant Research 56, 47-53, 2005.
10. 10. Brunet, A.G., Sebastian, A.L., Picazo, R.A., Cabellos, B., Goddard, Z., Reproductive response and LH secretion in ewes treated with melatonin implants and induced to ovulate with the ram effect. Animal Reproduction Science 39(1), 23-34, 1995.
11. 11. Daşkın, Ali. "Östrusları sinkronize edilen Akkaraman koyunlarında PMSG enjeksiyonlarının dölverimine etkisi." Ankara Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi 48.02 (2001): 165-167.
12. 12. Hafez ESE., Semen evaluation. In: Hafez ESE (ed) Reproduction in Farm Animals, Lea & Febiger, Philadelphia, USA, pp: 405-423, 1993.
13. 13. Alçay S, Ustuner B, Aktar A, Mulkpinar E, Duman M, Akkasoglu M, Cetinkaya M. Goat semen cryopreservation with rainbow trout seminal plasma supplemented lecithin-based extanders. Andrologia, 52(4), 2019.
14. 14. Langford, G. A., Marcus, G. J., Hackett, A. J., Ainsworth, L., Peters, H. F., & Wolynetz, M. S. A comparison of fresh and frozen semen in the insemination of confined sheep. Canadian Journal of Animal Science, 59(4), 685-691, 1979.
15. 15. Alçay, S., Hücre içine girebilen bazı kriyoprotektanlarla dondurulan koç spermasının in vitro embriyonik gelişim üzerine etkisi (Doctoral dissertation, Bursa Uludag University (Turkey)), 2015.
16. 16. Salamon, S. & Maxwell, W. M. C., Storage of ram semen. Animal Reproduction Science, 62(1-3), 77-111, 2000.
17. 17. Fernández, A. D., Bonilla, R. C., Bonilla, R. R., Villegas, N. & Ibañez, W. Efecto de la refrigeración del semen de carnero a 4-5°C sobre el transporte espermático. Producción Ovina SUL. 14, 55-63, 2001.
18. 18. Donovan, A., Hanrahan, J. P., Lally, T., Boland, M. P., Lonergan, G. P. & O’Neil, D. J., AI for sheep using frozen- thawed semen. ARMIS 4047 Project report, under the Research Stimulus Fund; OPARDF measure 5b, 1-43, 2001. ISBN 1 84170 152.
19. 19. Ehling, C., Wirth, P., Schindler, L., Hadeler, K-C., Döpke, H-H., Lemme, E., Herrmann, D. & Niemann, H. Laparoscopical intrauterine insemination with different doses of fresh, conserved, and frozenthawed semen for the production of ovine zygotes. Theriogenology, 60(4), 777-787, 2003.
20. 20. Naim, P., M. Cueto, and A. Gibbons. "Timed artificial insemination with ram chilled semen." Archivos de Zootecnia 58.223, 435-440, 2009
21. 21. Cueto, M. & Gibbons, A., Conservación seminal e inseminación artificial en ovinos. Actualización en Producción Ovina, 61-77, 2010.
22. 22. Erohin, A.S., Sovremennye metody sinhronizaccii joestrusau ovec [Modern methods of oestrus synchronization in sheep]. Ovcy, kozy, sherstjanoe delo, 4, 4-8, 2011.
23. 23. Wildeus, S. Current concepts in synchronization of estrus: Sheep and goats. J. Anim. Sci, 77(1), 47-53., 2000.