Sıçan Dalağında Makrofaj Alt Gruplarının Farklı Morfolojik Teknikler Kullanılarak İncelenmesi

Year 2017, , 135 - 142, 16.12.2017

Deniz Billur

https://doi.org/10.1501/Tipfak_0000000978

Abstract

Amaç: Dalak sahip olduğu özel morfololoji sayesinde, yașlı hasarlı eritrositlerin yanı sıra patojenlerin
kandan temizlenmesinde önemli rol üstlenir. Dalak makrofajları üzerinde yapılan çalıșmalarda dalağın
farklı bölgelerinde yerleșen makrofaj alt grupları tanımlanmıștır. Bu çalıșmada sıçan dalağında
bulunan makrofaj alt gruplarının intravenöz yolla verilen çini mürekkebine ve eritrositlere karșı fagositoz
yeteneklerinin, lizozomal enzim aktivitelerinin ve ıșık mikroskobu düzeyinde yapısal özelliklerinin
değerlendirilmesi amaçlandı.
Gereç ve Yöntem: Çalıșmada 18 adet Wistar Albino tipi erișkin erkek sıçan kullanıldı. Hayvanlar üç
eșit gruba ayrıldı. Birinci gruba herhangi bir ișlem yapılmadı. İkinci ve üçüncü gruptaki hayvanlara
kuyruk veninden 1 ml/100 g olacak șekilde çini mürekkebi verildi. Enjeksiyondan 30 dakika sonra
ikinci gruptaki sıçanlar, 24 saat sonra üçüncü gruptakilerle birlikte birinci gruptaki sıçanlar sakrifiye
edilerek dalakları çıkarıldı. Ișık ve elektron mikroskobu için rutin tespit ve takip prosedürü uygulanarak
elde edilen parafin ve araldit kesitlere çeșitli boyama teknikleri uygulandı. Lizozomal enzim aktivitelerinin
belirlenmesi için enzim histokimya yöntemi kullanıldı.
Bulgular: Sıçan dalağında marjinal bölgede yerleșen makrofajların karbon partiküllerine karșı zayıf
fagositoz yeteneği gösterdiği, lizozomal enzim aktivitelerinin zayıf olduğu, morfolojik yönden kırmızı
pulpada yerleșen makrofajlardan farklı oldukları belirlendi.
Sonuç: Sıçan dalağının esas fagositoz yapan hücrelerinin kırmızı pulpa makrofajları olduğu sonucuna
varıldı. 

Keywords

Dalak, Marjinal Bölge, Makrofaj

References

• . Mebius RE, Kraal G. Structure and function of the spleen. Nat Rev Immunol. 2005;5:606-616. 2. Schmidt EE1, MacDonald IC, Groom AC. Comparative aspects of splenic microcirculatory pathways in mammals: the region bordering the white pulp. Scanning Microsc. 1993;7:613-628. 3. Kraal G. Cells in the marginal zone of the spleen. Int Rev Cytol. 1992;132:31-74. 4. van Ewijk W, Nieuwenhuis P. Compartments, domains and migration pathways of lymphoid cells in the splenic pulp. Experientia. 1985 15;41:199-208. 5. Humphrey JH, Grennan D. Different macrophage populations distinguished by means of fluorescent polysaccharides. Recognition and properties of marginalzone macrophages. Eur J Immunol. 1981;11:221-228. 6. Prophet EB, Mills B, Arrington JB, Sobin LH, eds. Laboratory methods in histotechnology ( Armed Forces Institute of Pathology). 1st ed. Washington, D.C. : American Registry of Pathology; 1992:235-240. 7. den Haan JM, Kraal G. Innate immune functions of macrophage subpopulations in the spleen. J Innate Immun. 2012; 4:437-445. Ankara Üniversitesi Tıp Fakültesi Mecmuası 2017, 70 (3) 142 Sıçan Dalağında Makrofaj Alt Gruplarının Farklı Morfolojik Teknikler Kullanılarak İncelenmesi 8. Borges da Silva H, Fonseca R, Pereira RM, et al. Splenic Macrophage Subsets and Their Function during Blood-Borne Infections. Front Immunol. 2015 22;6:480. 9. Elomaa O, Kangas M, Sahlberg C , et al. Cloning of a novel bacteria-binding receptor structurally related to scavenger receptors and expressed in a subset of macrophages. Cell. 1995 24;80:603-609. 10. Chao D, MacPherson GG. Analysis of thymus-independent type 2 antigen uptake by marginal zone macrophages in thin slices of viable lymphoid tissue in vitro. Eur J Immunol. 1990;20:1451-1455. 11. Lee G. R , Bithell T.C, Foerster J et al., eds. Wintrobe's Clinical Hematology. 9th ed. Philadelphia: Lea & Febiger; 1992:311-322, 354. 12. Geijtenbeek TB1, Groot PC, Nolte MA, et al. Marginal zone macrophages express a murine homologue of DC-SIGN that captures blood-borne antigens in vivo. Blood. 2002 15;100:2908-2916. 13. Kraal G, Janse M. Marginal metallophilic cells of the mouse spleen identified by a monoclonal antibody. Immunology. 1986;58:665-669. 14. Van Rooijen N, Kors N, vd Ende M, Dijkstra CD. Depletion and repopulation of macrophages in spleen and liver of rat after intravenous treatment with liposome-encapsulated dichloromethylene diphosphonate.. Cell Tissue Res. 1990;260:215-222. 15. Matsuno K, Fujii H, Kotani M. Splenic marginal-zone macrophages and marginal metallophils in rats and mice. Cell Tissue Res. 1986;246:263-269. 16. You Y, Myers RC, Freeberg L,et al. Marginal zone B cells regulate antigen capture by marginal zone macrophages. J Immunol. 2011 15;186:2172-2181. 17. Veerman AJ, van Ewijk W. White pulp compartments in the spleen of rats and mice. A light and electron microscopic study of lymphoid and non-lymphoid celltypes in T- and B-areas. Cell Tissue Res. 1975;156:417-441. 18. Phan TG, Green JA, Gray EE, et al. Immune complex relay by subcapsular sinus macrophages and noncognate B cells drives antibody affinity maturation. Nat Immunol. 2009;10:786-793. 19. Junt T, Moseman EA, Iannacone M, et al. Subcapsular sinus macrophages in lymph nodes clear lymph-borne viruses and present them to antiviral B cells. Nature. 2007 1;450:110-114. 20. Backer R, Schwandt T, Greuter M, et al. Effective collaboration between marginal metallophilic macrophages and CD8+ dendritic cells in the generation of cytotoxic T cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 2010 5;107:216-221. 21. Miyake Y, Asano K, Kaise H, et al. Critical role of macrophages in the marginal zone in the suppression of immune responses to apoptotic cell-associated antigens. J Clin Invest. 2007;117:2268-2278. 22. McGaha TL, Chen Y, Ravishankar B, et al. Marginal zone macrophages suppress innate and adaptive immunity to apoptotic cells in the spleen. Blood. 2011 19;117:5403-5412. 23. King C, Tangye SG, Mackay CR. T follicular helper (TFH) cells in normal and dysregulated immune responses. Annu Rev Immunol. 2008;26:741-766. 24. Bratton DL, Henson PM. Apoptotic cell recognition: will the real phosphatidylserine receptor(s) please stand up? Curr Biol. 2008 22; 8:R76-79.