In vitro Şartlarda Değişik Bitki Büyüme Düzenleyicilerinin Çileklerde Kallus ve Sürgün Gelişimi Üzerine Etkileri

Abstract

Bu çalışmada, Osmanlı, Festival ve Albion çilek çeşitlerinde, değişik bitki büyüme düzenleyicilerinin direkt ve indirekt rejenerasyon üzerine etkileri araştırılmıştır. Bu amaçla yürütülen çalışmada, kallus kültürü için; (a) değişik NAA konsantrasyonlarının (0, 2 ve 4 mg.L-¹), (b) değişik IBA konsantrasyonlarının (0, 2 ve 4 mg.L-¹) etkileri denenmiştir. Direkt organogenesis için ise (a) değişik BAP (0 ve 2 mg.L-¹) (b) değişik TDZ konsantrasyonları (0 ve 2 mg.L-¹) kullanılmıştır. Kallus kültüründe, NAA içeren ortamlar, IBA içeren ortama göre kallus gelişimi bakımından daha başarılı bulunmuştur. NAA konsantrasyonunun artmasına bağlı olarak kallus oluşma oranı ve kallus kuru madde oranı artış göstermiştir. Direkt organogenesis için ise TDZ kullanımı, sürgün sayısı ve sürgün kalitesi bakımından en iyi sonucu vermiştir.

Keywords

• Çilek
• kallus kültürü
• direkt organogenesis

Researching of Different Growth Regulators on Callus and Shoot Development of Different Strawberry Cultivars in vitro Conditions

Abstract

Effects of different plant growth regulators on direct and indirect regeneration at ‘Ottoman’, ‘Festival’ and ‘Albion’ strawberry cultivars were investigated in this research. For callus culture, different concentrations of (a) NAA (0, 2 and 4 mg.L-¹), and of (b) IBA (0, 2 and 4 mg.L-¹) were used. For the direct organogenesis, different concentrations of (a) BAP (0 and 2 mg.L-¹), and of (b) TDZ (0 and 2 mg.L-¹) were tested. In the callus culture, NAA was found to be the most effective for callus development than that of the IBA. Callus formation rate and callus dry matter content showed and increase depending on elevated NAA concentrations. For the direct organogenesis, the use of TDZ gave the best result in terms of shoot numbers and quality.

Keywords

• Strawberry
• callus culture
• direct organogenesis

References

1. Adak, N., Pekmezci, M., Gübbük, H., 2001. Değişik çilek çeşitlerinin meristem kültürü ile çoğaltılması üzerinde araştırmalar. Akdeniz Üniv. Ziraat Fak. Dergisi, 14(1):119-126.
2. Babaoğlu, M., Yorgancılar, M., Akbudak, M.A., 2001. Doku Kültürü: Temel Laboratuvar Teknikleri, Bitki Biyoteknolojisi, Doku Kültürü ve Uygulamaları Bölüm 1, Selçuk Üniversitesi Basımevi, 1-35.
3. Debnath, S.C., 2006. Zeatin overcomes thidiazuron induced inhibition of shoot elongation and promotes rooting in strawberry culture in vitro. Journal of Horticultural Science and Biotechnology, 81(3):349-354.
4. Flores, R., Peters, J.A., Fortes, G.R. de L., Oliveria M. de F., 2003. Effect of 2,4-D, picloram and bap concentrations on callus induction and regeneration of strawberry plants, cv. Vila Nova. Revista Cientifica Rural, 8(2):92-100.
5. Khan, M., Ahmad, R., 1994. Micropropagation of horticultural crops. Pakistan Journal of Agricultural Research, 15(1):202-205.
6. Murashige, T., 1974. Plant propagation through tissue culture. Annu. Rev. Plant Physiol., 25:135-166.
7. Murti, R.H., Debnath, S.C., Yeoung, Y.R., 2012. Effect of high concentration of thidiazuron (TDZ) combined with 1H-indole-3-butanoic acid (IBA) on Albion strawberry (Fragaria x ananassa) cultivar plantlets induction.
8. African J. of Biotechnology, 11(81):1469614702.

9. Sökmen, A., Gürel, E., 2001. Sekonder Metabolit Üretimi. Bitki Biyoteknolojisi I-Doku Kültürü ve Uygulamaları Bölüm 7, Selçuk Üniversitesi, 211-261.
10. Sutan, A.N., Popescu, A., Isac, V., 2010. In vitro culture medium and explant type effect on callogenesis and shoot regeneration in two genotypes of ornamental strawberry. Romanian Biotechnol. Letters. 15(2):12-18.
11. Vasil, I.K., Vasil, V., 1986. Regeneration in cereal and other grass species. In: Cell Culture and Somatic Cell Genetics of Plants, 3:121-150.
12. Zhu, H., Pan, D., Lin, Y., Zhang, Z., Wen, Q., 2007. In vitro efficient regeneration system of strawberry. Acta Botanica Boreali Occidentalia Sinica, 27(5):919-925.