EFFECTS OF DIFFERENT MEDIA ON SHOOT TIP CULTURE OF CARNATION (Dianthus caryophyllus L.)

Year 2007, Volume: 24 Issue: 2, 1 - 8, 01.06.2007

Emine Çetin Soner Kazaz Nilgün Göktürk Baydar

Abstract

This research was carried out in Tissue Culture Laboratory of the Department of Horticulture,
Faculty of Agriculture, and University of Suleyman Demirel in Isparta. In this study it was aimed to
determine the effects of different culture media on in vitro regeneration capacity of shoot tips of Vittorio (a
standard carnation variety). It was found that ratio of plant formation from shoot tips varied depending on the
media. The highest mean shoot number per explant (5.97) were obtained from shoots cultured on medium
added Kinetin (2.00 mgl-1) and NAA (0.02 mgl-1) (3), and then transferred NAA (0.02 mgl-1) and BAP (2.00
mgl-1) (4). The highest mean shoot length (3.65 cm) was obtained from shoots cultured on medium added
BAP (2.00 mgl-1) and NAA (0.02 mgl-1) (4), and then transferred NAA (0.02 mgl-1) Kinetin (2.00 mgl-1) (3).
Other criteria examined in this research was rooting percentage. In this respect the highest rooting percentage
was obtained from shoots cultured on medium added NAA (0.02 mgl-1) and Kinetin (2.00 mgl-1) (3), and then
transferred IBA (2.00 mgl-1) and BAP (0.01 mgl-1) (K1).

Keywords

-

FARKLI BESİN ORTAMLARININ KARANFİL (Dianthus caryophyllus L.) SÜRGÜN UCU KÜLTÜRÜ ÜZERİNE ETKİLERİ

Abstract

Bu araştırma Süleyman Demirel Üniversitesi Ziraat Fakültesi Bahçe Bitkileri Bölümü Doku Kültürü
Laboratuarında yürütülmüştür. Bu araştırmada, farklı besin ortamlarının Vittorio karanfil (Dianthus
caryophyllus L.) çeşidinin sürgün ucu kültürünün, in vitro rejenerasyon yetenekleri üzerine etkilerinin
belirlenmesi amaçlanmıştır. Çalışmada, sürgün ucu eksplantlarından tam bitkiye dönüşüm oranının, besin
ortamı kompozisyonlarına göre büyük ölçüde değiştiği belirlenmiştir. Eksplant başına en yüksek ortalama
sürgün sayısı (5.97), ilk dikim ortamı 2.00 mg/l Kinetin ile 0.02 mg/l NAA’dan oluşan (3) ortamdan, 0.02
mg/l NAA ve 2.00 mg/l BAP katkılı (4) ortama transfer edilen sürgünlerden elde edilmiştir. En yüksek
ortalama sürgün uzunluğu (3.65) ise, ilk dikim ortamı olarak 2.00 mg/l BAP ve 0.02 mg/l NAA katkılı (4)
ortamdan, 0.02 mg/l NAA ile 2.00 mg/l Kinetin içeren (3) ortama transfer edilen sürgünlerden elde edilmiştir.
Araştırmada incelenen bir diğer kriter ise sürgünlerin köklenme yüzdesidir. Bu yönüyle en yüksek köklenme
yüzdesi, 0.02 mg/l NAA ile 2.00 mg/l Kinetin içeren (3) ortamdan, 2.00 mg/l IBA ve 0.01 mg/l BAP katkılı
(K1) besin ortamına transfer edilen sürgünlerden elde edilmiştir.

Keywords

Karanfil, Sürgün Ucu, In vitro

References

• Anonim, 1999. Shemi Quality Carnation Collection 1999, Israel.
• Bürün, B. ve Türkoğlu, G., 1996a. Meristem Ve Sürgün Ucu Kültürleri (II). Meristem Ve Sürgün Ucu Kültürü Uygulamaları. Yüzüncü Yıl Üniv. Ziraat Fak. Dergisi. 6(3):169-187.
• Bürün, B. ve Türkoğlu, G., 1996b. Meristem Ve Sürgün Ucu Kültürleri (I). Meristem Ve Sürgün Ucu Kültürlerine Etki Eden Faktörler. Yüzüncü Yıl Üniv. Ziraat Fak. Dergisi. 6(3):103-11.
• Crouch, N.R. ve J. Van Staden, 1993. In Vitro Culture Of Dianthus Zeyheri Subsp. Natalensis, A South African Carnation. Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 35(1):81-85.
• Gönülşen, N., 1981. Bitki Doku Kültürü Çalışmaları. Ege Bölge Zirai Araştırma Enst.Yayın No. 27, İzmir.
• Gürsan, K., 1988. Karanfil Yetiştirme Tekniği. Tarımsal Araştırmaları Geliştirme Vakfı, Yayın No: 17, 80s, Yalova.
• Hartmann, H.T., Kester, D.E., 1975. Plant Propagation Principles And Praticies. Prentice Hall. Inc. Engle Wood Ciffs. N.J.USA.
• Heloir, M.C., Foumioux, J.C., Oziol,L., ve Bessis, R., 1997. An Improved Procedure For The Propagation In Vitro Of Grapevine (Vitis Vinifera Cv. Pinot Noir) Using Axillary Bud Microcuttings. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 49(3):223-225.
• Hempel, M. ve Gabryszewska, 1983. Studies On In Vitro Multiplication of Carnation IV. The Influence of Some Cytokinins on Shoot Proliferation. Rosliny Ozdobne.
• Ioannov, M., 1990. Production Of Carnation Plants By Shoot-Tip Culture In Vitro. Technical Bulletin Cyprus Agricultural Research Institute. No:117, 8 pp.
• Jacquement, R., Gagelli, D., 1974. Recuperation of Mediterraanen Carnation Stocks Through Meristem Tip Culture. Hort. Abst.7813.
• Jelaska, S. ve R. Sutina, 1977. Maintained Culture Of Multiple Plantlets From Carnation Shoot Tips. Acta Hort.78: 333-340.
• Kallak, H., I. Hilpus ve K. Virumae, 1996. Influence Of Genotype And Growth Regulators On Morphogenetic Processes İn Carnation Shoot Apex Cultures. Scientia Horticulturae 65 (2-3): 181-189.
• Korkut, A., 1998. Çiçek Yetiştiriciliği. Hasat Yayıncılık Ltd. Şti. 222s. İstanbul.
• Ku, H.M. ve H.S. Tsay, 1994. Effects Of Medium Composition On The Vitrification Of Carnation Plantlets Cultured In Vitro. Journal of Agricultural Research of Chine. 43(1): 51-62.
• Messeguer, J., M.C. Arconada ve E. Mele, 1993. Adventitious Shoot Regeneration In Carnation (Dianthus Caryophyllus L.). Scientia Horticulturae. 54(2): 153- 163.
• Miller, A. ve Kaul, J. Hutchinson ve D. Richards, 1991. Adventitious Shoot Regeneration In Carnation (Dianthus caryophyllus L.) from Axillary Bud Explants. Annals of Botany, 67, 35-42.
• Mujib, A. ve A.K. Pal, 1994. Growth Regulators İnfluencing In Vitro Growth And Development Of Carnation (Dianthus caryophyllus L.). Crop Research Hisar. 8(3): 642-644.
• Mujib, A. ve A.K. Pal, 1995. Inter-Varietal Variation In Response To In Vitro Cloning Of Carnation. Crop Research Hisar. 10(2): 190-194.
• Murashige, T. ve F. Skoog, 1962. A Revised Medium For Rapid Growth And Bioassays With Tobacco Tissue Culture. Phys. Plant, 15, 473-497.
• Nakano, M., Y. Hoshino ve M. Mii, 1994. Adventitious Shoot Regeneration from Cultured Petal Explants of Carnation. Plant Cell Tissue and Organ Culture, 36, 15-9.
• Nontaswatsri, C., S. Fukai, T. Touma ve M. Goi, 2002. Comparison of Adventitious Shoot Formation from Node and Leaf Explants of caryophyllus L.) Cultivars. Journal of Horticultural Science&Biotechnology, 77 (5), 520-525. (Dianthus
• Norton, M.A., ve Skirvin, R.M., 2001. Micropropagation of “Norton” Wine Grap. Hort Technology 11(2):206-208.
• Önal, M.K., 2003. Lena ve Scania Karanfil (Dianthus Caryophyllus) Çeşitlerinde Meristem Kültürü Yöntemiyle Bazı Virüslerden Arındırma Üzerine Bir Araştırma. Türkiye IV. Ulusal Bahçe Bitkileri Kongresi, s: 512-513, Antalya.
• Pennazio, S., 1975. Effects Of Adenine And Kinetin On Development Of Carnation Meristem Tips Cultured In Vitro. J. of Horticultural Science, 50, 161-164.
• Şenturan, N., 1998. Sprey Karanfilin (Dianthus caryophyllus L.) Doku Kültürü İle Çoğaltılması. Yüksek Lisans Tezi. Ankara Üniv., Fen Bilimleri Enst.
• Thorpe, T.A., 1981. Plant Tissue Culture Methods And Academic Pres. INC. III. Fifth Avans New York, 1003, USA. Agriculture.
• Van Alvorst, A.C., T. Bruinsma, H.J.J. Koehorst, ve J.J.M. Dons, 1992. Regeneration of Carnation (Dianthus caryophyllus) Using Leaf Explants. Acta Hort. 307. Waithaka, K., 1992. Micropropagation
• Techniques And The Production Of
• Pathogen-Free Plants. Biotechnology 183-188.
• Watad, A.A., A. Ahroni, A. Zuker, H. Shejtman, A. Nissim ve A. Vainstein, 1996. Adventitious Shoot Formation From Carnation Stem Segments: A Comparison Of Scientia-Horticulturae 65(4): 313-320. Procedures.
• Weryszko, E. ve M. Hempel, 1979. Studies On In Vitro Multiplication Of Carnations II. The Histological Analysis Of Multiplantlets Formation. Acta Hort. 91: 323-331.