Malathion ve Onosma nigricaule (Boraginaceae)’nin Fare Böbrek Dokusunda Leptin Üzerine Etkilerinin İmmunohistokimyasal Olarak İncelenmesi

Öz

Amaç Bu çalışmada, tarımda bir insektisit olarak kullanılan malathion’un neden olduğu oksidasyon parametreleri üzerine Onosma nigricaule (Boraginaceae)’den elde edilen bitkisel özütün böbrek dokusunda leptin üzerine etkisinin immunohistokimyasal olarak araştırılması amaçlandı. Materyal ve Metod Çalışmamızda, her grupta 8 adet olmak üzere toplam 48 adet erkek fare kullanıldı. Gruplar; kontrol (grup 1), malathion’un taşıt maddesi olan mısır yağı (grup 2), bitki özütünün taşıt maddesi olan serum fizyolojik (grup 3), malathion (grup 4), Onosma nigricaule (grup 5), ve Onosma nigricaule + malathion grubu (grup 6) olmak üzere toplam 6 grup olarak belirlendi. Böbreklerden alınan kesitlere leptin immunoreaktivitesini belirlemek için Streptavidin-Biotin-Peroksidaz Kompleks tekniği uygulandı. Hazırlanan kesitlere histolojik incelemeler için hematoksilen-eosin ve Crossman’ın üçlü boyama yöntemi kullanıldı. Bulgular Kontrol grubu ile taşıt kontrol grupları olan serum fizyolojik grubu ve mısır yağı grupları ile Onosma nigricaule, malathion ve Onosma nigricaule + malathion gruplarının böbrek dokularında herhangi bir lezyon tespit edilmedi. Diğer yandan, kontrol, mısır yağı, serum ve malathion grubundaki farelerin tubulus proksimalis ve tubulus distalis epitel hücrelerinde güçlü leptin immunoreaktivite görülmesine karşın Onosma nigricaule ve Onosma nigricaule + malathion grubu farelerde ise zayıf leptin immunoreaktivitesi tespit edildi. Sonuç Fareler ile yaptığımız çalışmada, yurdumuzda insektisit olarak yaygın kullanılan malathion’un fare böbreğinde leptin aktivitelerini etkilediği görülmüştür.

Anahtar Kelimeler

• Böbrek, leptin, malathion, Onosma nigricaule

References

1. Prins JB, O Rahilly S. Regulation of adipose cell number in man. Clin Sci. 1997; 92: 3-11. 12. Wilding J, Widdowson Neurobiology. Br Med Bull. 1997; 53: 286-306.
2. Murakami T, Yamashita T, Lida M ve ark. A short P, Williams G. from transduction. Biochem Biophys Res Commun. 1997; 231: 26-29. performs signal
3. Sharma K, Considine RV, Michael B ve ark. Plasma leptin is partly cleared by the kidney and is elevated in hemodialysis patients. Kidney Int. 1997, 51: 1980-1985. Özgen U, Miloğlu FD, Bulut G. Quantitative determination of shikonin derivatives with UV-Vis spectrophotometric methods in roots of Onosma nigricaule. Rev. Anal. Chem. 2011; 30: 59-63,.
4. Kumar N, Gutpa KA, Prakash D ve ark . Hypoglycemic activity of Onosma hispidum (Ratanjot). International Journal of Diabetes in Developing Countrie. 2010; 30: 213-216,.
5. Rinner B, Kretschmer N, Knausz H ve ark. A petrol ether extract of the roots of Onosma paniculatum induces cell death in a caspase dependent manner. Journal of Ethnoparmacology. 2010; 129: 182-188,.
6. Erdağ D. Malatiyon verilen farelerde oksidasyon parametreleri (liliaceae), lathyrus karsianus (fabaceae) ve onosma nigricaule (boraginaceae)’den elde edilen ekstraktların etkileri. Kafkas Üniversitesi, Sağlık Bilimleri Enstitüsi, Doktora Tezi, 2012.
7. Tru LD: Principles of immunohistochemistry. Editör: immunohistopathology. Newyork Press, 1990; 1- 31, USA. of Diagnostic
8. Crossmonn G. A modification of Mallory's connective tissue stain with a discussion of the principles involved. Anat Rec, 1937; 69: 33-38. Zık B. Uriner Sistem. In, Özer A (Ed): Veteriner Özel Histoloji. II. Baskı. Nobel Yayın, 2010; 197- 218.

9. Kalender S, Kalender Y, Ogutcu A ve ark. Endosulfan-induced cardiotoxicity and free radical metabolism in rats: The protective effect of vitamin E. Toxicology. 2004; 3: 227-235.
10. Sulak O, Altuntaş I, Karahan N ve ark. Nephrotoxicity in rats induced by organophosphate insecticide methidathion and ameliorating effects of vitamins E and C. Pestic. Biochem. Phys. 2005; 83: 21-28.
11. Freeman BA, Crapo JD. Biology of disease: free radicals and tissue injury. Lab. Invest. 1982; 47: 412-426.
12. Glusczak L, Miron DDS, Moraes BS ve ark. Acute effects of glyphosate herbicide on metabolic and enzymatic parameters of silver catfish Biochemistry and Physiology, Part C. 2007; 146: 519–524. Comparative
13. Keramati V, Jamili S, Ramin M. Effect of Diazinon on Catalase Antioxidant Enzyme Activity in Liver Tissue of Rutilus rutilus. Journal of Fisheries and Aquatic Science. 2010; 5:368-367.
14. Serradeil-Le Gal C, Raufaste D, Brossard G ve ark. Characterization and localization of leptin receptors in the rat kidney. FEBS Lett. 1997; 404:185–191.
15. Hama H, Saito A, Takeda T ve ark. Evidence ındicating that renal tubular metabolism of leptin ıs mediated by megalin but not by the leptin receptors. Endocrinology. 2004; 145:3935–3940.
16. Rosenbaum M, Libel RL, Hırsch J. Obesity. N Engl J Med. 1997; 337:396-407.
17. Ruige JB, Dekker JM, Blum WF. Leptin and variables of body adiposity, energy balance and insülin resistance in a population based study. Diabetes Care. 1999; 22:1097-1104,.
18. Farooqi S, Rau H, Whitehead J. Ob gene mutations and obesity. Proc Nutr Soc. 1998, 57: 471–475.
19. Montague CT, Farooqi IS, Whitehead JP. Congenital leptin deficiency is associated with severe early-onset obesity in humans. Nature. 1997, 387: 903–908.
20. O’Rahilly S. Life without leptin. Nature. 1998, 392: 330–331.
21. Polito A, Fabbri A, Luzzi A: Bazal metabolic rate in anorexia nervoza : relation to Body compozsition and leptin concentrations. Am J Clin Nutr. 2000, 71:1495-1502.