Lentinus edodes, Lactarius delicious ve Ganoderma lucidum’un antibiyofilm ve antimikrobiyal etkinlikleri
Öz
Çalışmanın amacı: Bu çalışma kapsamında tıbbi önemi olan üç makrofungus türünün [(Lentinus edodes (Berk.) Sing. (Shiitake), Lactarius deliciosus Fr. ve Ganoderma lucidum (Curtis) P. Karst.)] metanolik (%60) ve etanolik (%95) özütlerinin Pseudomonas aeruginosa ve Salmonella Typhimurium’daki antibakteriyal ve biyofilm oluşumunu engelleme (antibiyofilm) potansiyelleri araştırılmıştır.
Materyal ve Yöntem: Antimikrobiyal aktivitelerin değerlendirilmesinde standart agar kuyu difüzyon, minimum inhibisyon konsantrasyon (MİK) ve minimum bakterisidal konsantrasyon (MBK) testleri kullanılmıştır. Makrofungus özütlerinin biyofilm oluşumu üzerine (antibiyofilm) olan etkilerinin değerlendirmesinde kristal viyole bağlanma yöntemi esas alınmıştır.
Temel sonuçlar: Makrofungus örneklerinin yalnızca metanolik özütlerinde antimikrobiyal etkinlik saptanmıştır. Antibiyofilm aktivite değerlendirmesindeyse en yüksek aktivite G. lucidum’da görülmüştür.
Araştırma vurguları: Elde edilen bulgular, doğal antimikrobiyal ajanların araştırılmasında sıklıkla tercih edilen tıbbi makrofungus türlerinin, biyofilmlerle mücadele araştırmalarında da yüksek potansiyel içermelerinden ötürü tercih edilebileceklerini kanıtlar mahiyettedir.
Anahtar Kelimeler
References
- Alves, M. J., Ferreira, I. C., Lourenço, I., Costa, E., Martins, A., & Pintado, M. (2014). Wild mushroom extracts as inhibitors of bacterial biofilm formation. Pathogens, 3(3), 667-679.
- Bin, L., Wei, L., Xiaohong, C., Mei, J., & Mingsheng, D. (2012). In vitro antibiofilm activity of the melanin from Auricularia auricula, an edible jelly mushroom. Annals of microbiology, 62(4), 1523-1530.
- Boucher, H. W., Talbot, G. H., Bradley, J. S., Edwards, J. E., Gilbert, D., Rice, L. B., ... & Bartlett, J. (2009). Bad bugs, no drugs: no ESKAPE! An update from the Infectious Diseases Society of America. Clinical Infectious Diseases, 48(1), 1-12.
- Buommino, E., Scognamiglio, M., Donnarumma, G., Fiorentino, A., & D’Abrosca, B. (2014). Recent advances in natural product-based anti-biofilm approaches to control infections. Mini reviews in medicinal chemistry, 14(14), 1169-1182.
- Carson, L., Chau, P. K., Earle, M. J., Gilea, M. A., Gilmore, B. F., Gorman, S. P., ... & Seddon, K. R. (2009). Antibiofilm activities of 1-alkyl-3-methylimidazolium chloride ionic liquids. Green Chemistry, 11(4), 492-497.
- Clardy, J., & Walsh, C. (2004). Lessons from natural molecules. Nature, 432(7019), 829.
- Clatworthy, A. E., Pierson, E., & Hung, D. T. (2007). Targeting virulence: a new paradigm for antimicrobial therapy. Nature chemical biology, 3(9), 541-548. CLSI. (2003). Methods for Dilution Antimicrobial Susceptibility Tests for Bacteria That Grow Aerobically; Approved Standard Seventh Edition, CLSI Document M7-A7, Pennsylvania: USA.
- Cos, P., Vlietinck, A. J., Berghe, D. V., & Maes, L. (2006). Anti-infective potential of natural products: how to develop a stronger in vitro ‘proof-of-concept’. Journal of ethnopharmacology, 106(3), 290-302.
- de Carvalho, M. P., Gulotta, G., do Amaral, M. W., Lünsdorf, H., Sasse, F., & Abraham, W. R. (2016). Coprinuslactone protects the edible mushroom Coprinus comatus against biofilm infections by blocking both quorum‐sensing and MurA. Environmental microbiology, 18(11), 4254-4264.
- de la Fuente-Núñez, C., Reffuveille, F., Fernández, L., & Hancock, R. E. (2013). Bacterial biofilm development as a multicellular adaptation: antibiotic resistance and new therapeutic strategies. Current opinion in microbiology, 16(5), 580-589.