Araştırma Makalesi Tüketime Sunulan Alabalıklarda Aeromonas hydrophila Varlığı ve Antibakteriyel Duyarlılıklarının Saptanması

Abstract

Abstract Presence of Aeromonas hydrophila in Trout Served for Human Consumption and Determination of Antibacterial Susceptibility of the Isolates Aim: Aeromonas spp., which are members of aquatic environments, are found in drinking water, seafoods and various animal food products. These strains show zoonotic characteristics and can cause infection in humans. In recent years Aeromonas hydrophila was reported as an important foodborne pathogen. The aim of this study was to investigate the presence of A. hydrophila in fish intended for human consumption and antibiotic susceptibility of these strains. Method: In the present study, one hundred marketed Rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) from Kayseri, Erzurum and Samsun were evaluated for the presence of A. hydrophila with conventional microbiological methods. Antibacterial susceptibilities of A. hydrophila isolates were determined by Kirby-Bauer disc diffusion method. The Unweighted Pair Group Method with Arithmetic Averages (UPGMA) was performed for antibiotyping of isolates. Results: A total of 28 (28%) A. hydrophila were isolated from fish meat samples. According to the antibiogram results, it was found that 17 (60.7%), 15 (53.5%), 13 (46.4%), 12 (42.8%) 9 (32.1%), 8 (34.7%), 3 (10.7%) of all isolates were found resistant to nalidixic acid, oxytetracycline, flumequin, amoxicillin, oxolinic acid, erythromycin, neomycin respectively whereas all of the isolates were determined susceptible to florphenicol. As a result of antibiotyping, it was determined that isolates were dispersed in 17 different groups. Conclusions: It has been considered that the presence of A. hydrophila in raw fish intended for human consumption may pose a potential hazard to public health.

Keywords

• Aeromonas hydrophila; antibacterial susceptibility; fish meat; public health; antibiotyping

Araştırma Makalesi Tüketime Sunulan Alabalıklarda Aeromonas hydrophila Varlığı ve Antibakteriyel Duyarlılıklarının Saptanması

Abstract

Türkçe Özet: Amaç: Sucul çevrenin bir üyesi olan Aeromonas\'lar içme sularında, deniz ürünlerinde ve çeşitli hayvansal gıdalarda bulunmakta, zoonotik özellik göstermekte ve insanlarda enfeksiyonlara yol açabilmektedir. Bu çalışmada tüketime sunulan balıklarda özellikle son yıllarda önemli bir gıda patojeni olarak tanımlanan Aeromonas hydrophila varlığının araştırılması ve antibakteriyel duyarlılık durumlarının incelenmesi amaçlanmıştır. Yöntem: Çalışmada Kayseri, Erzurum ve Samsun\'da satışa sunulan 100 adet Gökkuşağı alabalığı (Oncorhynchus mykiss) A. hydrophila varlığı yönünden konvansiyonel mikrobiyolojik metodlar ile incelenmiştir. A. hydrophila izolatlarının antibakteriyel duyarlılık profilleri Kirby-Bauer disk difüzyon yöntemi ile araştırılmıştır. İzolatlara Unweighted Pair Group Method with Arithmetic Averages (UPGMA) metodu kullanılarak antibiyotiplendirme yapılmıştır. Bulgular: İncelenen balıketi örneklerinin 28\'inden (%28.0) A. hydrophila izole edilmiştir. İzole edilen etkenlerin antibiyogram sonuçları değerlendirildiğinde; izolatların 17\'sinin (%60.7) nalidiksik aside, 15\'inin (%53.5) oksitetrasikline, 13\'ünün (%46.4) flumekuine, 12\'sinin (%42.8) amoksisiline, 9\'unun (%32.1) oksolinik aside, 8\'inin (%34.7) eritromisine, 3\'ünün (%10.7) neomisine dirençli olduğu ve izolatların tamamının florfenikole karşı duyarlı olduğu saptanmıştır. Antibiyotiplendirme sonucuna göre ise izolatların 17 farklı gruba dağıldıkları belirlenmiştir. Sonuç: Tüketime sunulan çiğ balıkların, A. hydrophila taşıyıcılıkları bakımından halk sağlığı için potansiyel bir tehlike oluşturabileceği düşünülmüştür.

Keywords

• Aeromonas hydrophila; antibakteriyel duyarlılık; balıketi; halk sağlığı; antibiyotiplendirme

References

1. Carnahan AM, Joseph SW. Family I. Aromonadaceae. In: Brenner DJ,Krieg NR, Staley JT Eds: Bergey's Manual of Systematic Bacteriology, 2“d Ed., vol.2., New York: Springer, 2005;556-78.
2. Janda JM, Abbott SL. The genus Aeromonas: taxonomy, pathogenicity and infection. Clin Microbial Rev 2010;23 (1):35-73.
3. Abbott S, Cheung WK, Janda JM. The genus Aeromonas: Biochemical characteristics, atipical reactions and phenotypic identification schemes. J Clin Microbiol 2003;41(6): 2348-57.
4. Sreedharan K, Philip R, Singh IS. Virulence potential and antibiotic susceptibility pattern of motile Aeromonads associated with freshwater ornamental Şsh culture systems: a possible threat to public health. Braz J Microbiol 2012;43 (2):754-65.
5. Daskalov H. The importance of Aeromonas hydraphila in food safety. Food Control 2006;17(6):474-83.
6. Burke V, Robinson J, Gracey M, Peterson D, Meyer N, Haley V. Isolation of Aeromanas spp. from an unchlorinated domestic water supply. Appl Environ Microbial 1984;48(2): 367-70.
7. Yucel N, Erdem B, Kaya D. Some virulence properties and characterization of motile Aeromonas species from milk and white cheese. Int J Dairy Techno] 2005;58(2):106-10.
8. Krovacek K, Dumontet S, Eriksson E, Baloda SB. Isolation, and virulence proŞles, of Aeromonas hydrophila implicated in an outbreak of food poisoning in Sweden. Microbiol Immunol 1995;39(9):655-61.

9. Yucel N, Citak S. The occurrence, hemolytic activity and antibiotic susceptibility of motile Aeromonas spp. Isolated from meat and milk samples in Turkey. J Food Saf 2003 ;23 (3): 189-200.
10. Hosnuter M, Demircan N, Ünalacak M, Kargı E, Aktunç E, Babucçu 0. Modern tıbbın yeniden keşfettiği bir alternatif tedavi metodu: Hirudoterapi. T ürkAile Hek Derg 2003;7(4): 177-79.
11. Levine SM, Frangos SG, Hanna B, Colen K, Levine JP Aeramonas septicemia after medicinal leech use following replantation of severed digits. Am J Crit Care 2010;19(5): 469-71.
12. Giltner CL, Bobenchik AM, Uslan DZ, Deville JG, Humphries RM. Ciprofloxacin-resistant Aeromonas hydraphila cellulitis following leech therapy. J Clin Microbial 2013;51(4):1324-6.
13. Tanrikul T, Çağıran H, Tokşen E. Motil Aeromonas Enfeksiyonu. Bornova Vet Kont ve Arşt Enst Müd Derg 1996;20(34):118-20.
14. Karataş-Düğenci S, Candan A. Isolation of Aeromonas strains isolated from intestinal flora of Atlantic salmon (Salmo salar L. 1758). Turk J Vet Anim Sci 2003;(5)27: 1071-75 .
15. Hatha M, Vivekanandhan AA, J oice GJ, Christol. Antibiotic resistance pattern of motile Aeromanads from farm raised fresh water Şsh. Int J Food Microbial 2005;98(2): 131-4.
16. Joseph SW, Carnahan A. The isolation, identification and systematics of motile Aeramanas species. Ann Rev Fish Dis 1994;4:315-43.
17. Castro-Escarpulli G, Figueras MJ, Aguilera-Arreola G, Soler L, Fernandez-Rendon E, Aparicio GO, Guaıro J, Chacön MR. Characterisation of Aeromonas spp. Isolated from frozen Şsh intended for human consumption in Mexico. Int JFood Microbial 2003;84(1):41-9.
18. Bauer AW, Kirby WM, Sherris JC, Turck M. Antibiotic susceptibility testing by a standardized single disc method. Am J Clin Pathol 1966;45(4):493-96.
19. CLSI (Clinical and Laboratory Standards Institute). Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing. 17th lnformational Supplement. Approved Standard, MS100-S17, Wayne, Pennsylvania, USA. 2007.
20. Grundmann H, Hori S, Tanner G. Determining conŞdence intervals when measuring genetic diversity and the discriminatory abilities of typing methods for microorga- nisms. J Clin Micrabial 2001;39(11):4190-92.
21. Hunter PR, Gaston MA. Numerical index of the discriminatory ability of typing systems: an application of Simpson's index of diversity. J Clin Microbial 1988;26(11): 2465-66.
22. Kirov SM. The public health signiŞcance of Aeromonas spp. in foods. IntJFaod Microbial 1993;20(4):179-98.
23. Yalçın AN. Aeromonas Türleri ve Plesiomonas Türleri. Wilke-Topçu A, Söyletir G, Doğanay M. Ed: Enfeksiyon Hastalıkları ve Mikrobiyolojisi, Etkenlere Göre Enfeksi- yonlar 2, 3. Baskı, lstanbul, Nobel Tıp Kitabevleri, 2008: 2212-14.
24. Erdem B, Kariptaş E, Kaya T. Siderophore, hemolytic, protease, and pyrazinamidase activities and antibiotic resistance in motile Aeromanas isolated from Şsh. TurkJ Biol 2010;34(4):453-62.
25. İşleyici Ö, Sancak YC, Hallaç B. Van'da tüketime sunulan balıklarda hareketli Aeramanas türlerinin varlığı ve yaygınlığı. YYÜ Vet Fak Derg 2007; 1 8(1):79-85.
26. Boynukara B, Gürtürk K, İlhan Z, Gülhan T, Öğün E, Ekin İH. Van gölünde yaşayan Chalcalburnus tarichii balıkla- rından izole edilen Aeromonas'ların görülme sıklığı. Van Tıp Derg l998;5(4):239—42.
27. Vivekanandhan G, Savithamani K, Hatha AAM, Laks- manaperumalsamy P. Antibiotic resistance of Aeromonas hydraphila isolated from marketed Şsh and prawn of South India. Int JFaad Microbial 2002;76(l-2)2165-68.
28. Son R, Rusul G, SahilahAM, Zainuri A, RahaAR, Salmah I. Antibiotic resistance and plasmid proŞle of Aeromonas hydraphila isolates from cultured Şsh, Telapia (Telapia mossambz'ca). LettAppl Microbiol l997;24(6):479-82.
29. Penders J, Stobberingh EE. Antibiotic resistance of motile Aeromanads in indoor catŞsh and eel farms in the southern part of The Netherlands. Int J Antimicrob Agents 2008;31 (3):261-5.
30. Köksal F. Moleküler biyolojik tiplendirme yöntemlerinin hastane infeksiyonlarında kullanımı. Hastane İnfeksiyon- ları Dergisi 1999;3(4):189-95.
31. Yağcı A. Restriction Fragment Length Polymorphism ve Polimeraz Zincir Reaksiyon Bazlı Tipleme Yöntemleri. Durmaz R. Ed: Uygulamalı Moleküler Mikrobiyoloji, 2. Baskı, Ankara, Nobel Tıp Kitabevleri, 2001 : 149-60.