Fascioliasis Tanısında Erişkin Antijeni İle Pbs Ve Rpmı 1640’da Elde Edilen Ekskresyon/Sekresyon Antijenlerinin Elisa Yöntemiyle Karşılaştırılması

Year 2005, Volume: 62 Issue: 1, 17 - 26, 01.06.2005

Ayşegül Taylan Özkan Metin Korkmaz Aydınten Kuman Hasan Ayçiçek Mehmet Tanyüksel

Abstract

İnsanda fascioliasis hepaticanın akut döneminde spesifik tanı koydurucu, kronik anjiokolit döneminde ise tanıyıdestekleyici ve doğrulayıcı olarak serolojik tanı yöntemlerinden yararlanılmaktadır. Çalışmada F a s c i o l aenfeksiyonunun tanısında parazitin erişkin antijeni ile PBS ve RPMI-1640’da elde edilen ekskresyon/ sekresyon ES antijenleri karşılaştırılmış kesin ve şüpheli Fasciolaolgularının yanısıra toxocariasis, schistosomiasis, ascariasis,echinoccosis ve sağlıklı yetişkinlerden elde edilen serumlar çapraz reaksiyonlar açısından incelenmiştir. Kesinfascioliasis olduğu bilinen olgularda testin duyarlılığı her üç antijenle de %100 olarak bulunmuştur. Testin özgüllüğüise erişkin antijeni ile %90.6, PBS-ES ve RPMI-ES ile %95.3 olarak saptanmıştır. Varyans analizi ile antijenlerarasında anlamlı bir fark saptanamamıştır p>0.05 . Her üç antijenle de hazırlanan Enzyme-Linked ImmunosorbentAssay ELISA yönteminden insan fascioliasis olgularının tanısında yararlanılabileceği sonucuna varılmıştır

Keywords

Fasciola spp, tanı, seroloji, ELISA

Comparison Of Somatic And Excretion/Secretion Antigens Obtained in Pbs And Rpmi 1640 By Elisa Method For The Serodiagnosis Of Fascioliasis

Abstract

Serodiagnosis of fascioliasis hepatica in humans is used for the diagnosis during the acute phase of thedisease and a supporting and confirming method for the diagnosis during the chronic phase. Somatic antigens ofFasciola spp.and antigens obtained from the excretions/secretions ES of the parasite, extracted in RPMI 1640medium and PBS were compared by ELISA for the diagnosis of this infection. Sera from patients with confirmed orsuspected infection with Fasciolaas well as sera from patients infested with toxocariasis, schistosomiasis,ascariasis, echinoccosis and from healthy individuals were compared for evaluation of cross-reactivity. Thesensitivity of the tests in patients with confirmed fascioliasis was 100% for all three antigens and extractionmodalities used. The specificity of the somatic antigens was 90.6%, while those of PBS-ES and RPMI-ES were95.3%. Using variance analysis, no significant difference was found among the three antigens p>0.05 . It appearsthat all three antigens could be used in the serodiagnosis of human fascioliasis

Keywords

Fasciola hepatica, diagnosis, serology, ELISA

References

• 1. El-Metanawy T, Vuruşaner C. İstanbul’da kesilen sığırlardaki karaciğer kelebekleri üzerine bir araştırma. İnfeksiyon Dergisi 1991; 5(3), 203-5.
• 2. Celep A, Açıcı M, Çetindağ M. Samsun yöresi sığır ve koyunlarında paraziter epidemiyolojik çalışmalar. 8. Ulusal Parazitoloji Kongresi bildiri özetleri kitabı 1993: 91.
• 3. Vuruşaner C, Çetin B, Akkaya H, Gökçe R. İstanbul’da kesilen koyunlardaki karaciğer kelebekleri üzerine bir araştırma. Türkiye Parazitoloji Dergisi 1997; 22(4): 432-7.
• 4. Şeşen R, Yıldırım M. Parazitolojik önemi olan Türkiye tatlısu salyongozları üzerine bir çalışma. Türkiye Parazitoloji Dergisi 1993; 17(3-4): 138-47.
• 5. Boyacıoğlu S, Dalay R, Hilmioğlu F,Akoğlu M, Şahin B. The cholangiographic findings of human fascioliasis: A report of two cases. Gastroenteroloji 1991; 2(2): 130-2.
• 6. Kayabali İ, Gökçora İ.H, Yerdel M.A, Örmeci N. Hepatic fascioliasis and biliary surgery. Int Surg. 1992; 77: 154-7.
• 7. Atalay F, Kırımlıoğlu V, Dağlı Ü, Akıncıoğlu T, Akaoğlu M. Seven C. Human fascioliasis. Surgery Today 1993; 23: 366-9.
• 8. Tetik A, Türkkan I, Bilgen K, Yandakçı K. Mekanik iktere neden olan beş Fasciola hepatica vakası. Klinik ve Deneysel Cerrahi Dergisi 1995; 3(4): 229.
• 9. Savaşçın B, Savan B, Aydede H, Arıcı A. Dış safra yollarının paraziter hastalıkları. Klinik ve Deneysel Cerrahi Dergisi 1995; 3(4): 212.
• 10. Büyükbaba Ö, Özkan E, Büyükuncu Y, Büget E. Fasciola hepatica’ya bağlı bir kolesistit olgusu. Klimik Dergisi 1996; 9(2): 98-9
• 11. Demir A, Cümşüdov C, Topgül K, Baydar B, Hasıroğlu F, Taner Ş, Şahin H.C. Koledokta Fasciola hepatica. Gastroenteroloji 1996; 7(1ek): 90.
• 12. Perek A, Perek S, Sonsuz A. İnsanda fascioliasis. Çağdaş Cerrahi Dergisi. 1996; 10(4): 228-229.
• 13. Akdeniz H, Irmak H, Buzgan T, Seçkinli T, Demiröz A.P. Van yöresinde karşılaşılan paraziter enfeksiyonlar. 10. Ulusal Parazitoloji Kongresi Bildiri Özetleri Kitabı. 1997: 153.
• 14. Yılmaz H, Çöz Y, Güdücüoğlu H, Gül A. Van’ın Erciş ilçesinde Parazitozis sorunu. 10. Ulusal Parazitoloji Kongresi Bildiri Özetleri Kitabı. 1997: 136.
• 15. Pulpeiro J.R, Armesto V, Varela J., Corredoira J. Fascioliasis: findings in 15 patients. The British J.Radiology 1991; 64: 798-801.
• 16. WHO Division of Control of Tropical Diseases. Fascioliasis. Weekly Epid. Record 1992; 44: 326-9.
• 17. Price T.A, Tuazon C.A, Simon G.L. Fascioliasis: Case reports and review. Clin. Infec. Diseases 1993; 17: 426-30.
• 18. Arjona R, Riancho J.A, Aguado J.M, Salesa R, Gonzalez-Macias J. Fascioliasis in developed countries: A review of classic and aberrant forms of the diseases. Medicine 1995; 74(1): 13-23.
• 19. Espino A.M, Dumenigo B.E, Fernandez R, Finlay C.M. Immunodiagnosis of human fascioliasis by ELISA using excretory-secretory products. Am. J.Trop.Med.Hyg. 1987; 37(3): 605-8.
• 20. Zeinab A.S, Zeinab A.D, Wafaa A.M, Hanaa I.H, Hanan G.B, Hend I.G. Evaluation of specific Fasciola antigen in the immunodiagnosis of human fascioliasis in Egypt. J.Egypt Soc. Parasitol. 1994; 24(3): 463-70.
• 21. Mansour N.S, Youssef F.G, Mikhail E.M, Boctor F.N. Use of partially purified Fasciola gigantica worm antigen in the serological diagnosis of human fascioliasis in Egypt. Am. J.Trop.Med.Hyg. 1983; 32(3): 550-4.
• 22. Hillyer G.V, Haroun T.M, Hernandez A, Galanes M.S. Acquired resistance to Fasciola hepatica in cattle using a purified adult worm antigen. Am.J.Trop.Med.Hyg. 1987; 37 (2): 363-9.
• 23. Zeinab A.S, Zeinab A.D, Wafaa A.M, Hanaa I.H, Mohandes M, Hend I.G. Purification and characterization of a specific Fasciola antigen. J.Egypt Soc. Prasitol. 1994; 24(2): 309-16.
• 24. Santiago N, Hillyer G.V, Garcia-Rosa M, Morales M.H. Identification of functional Fasciola hepatica antigens in experimental infections in rabbit. Am.J.Trop.Med.Hyg. 1986; 35(1): 135-40.
• 25. Hillyer G.V, Galanes M.S. Initial feasibility studies of the FAST-ELISA for the immunodiagnosis of fascioliasis. J. Parasitology 1991; 77(3): 362-5.
• 26. El-Shabrawi M, El-Karaksy H, Okasha S, El-Hennawy. Human fascioliasis: Clinical features and diagnostic difficulties in Egyptian Children. J. Trop. Pediatrics 1997; 43: 162-6.
• 27. Shaheen H.I, Kamal K.A, Farid Z, Mansour N, Boctor F.N, Woody J.N. DOT-ELISA for the rapid diagnosis of human fascioliasis. J.Parasitol. 1989; 75(4): 549-52.
• 28. Bechtel U, Feucht H.E, Held E, Vogl T, Nothdruft H.D. Fasciola hepatica- Infektion einer familie. Dtsch.Med.Wschr. 1992; 117: 978-82.
• 29. Laird P.P, Boray J.C. Human fascioliasis successfully treated with triclabendazole. Aust.NZ. J. Med. 1992; 22: 45-7.
• 30. Prociv P, Walker J.C, Whitby M. Human ectopic fascioliasis in Australia: first case reports. Med. J. Australia, 1992; 156: 349-51.
• 31. Cho S.Y, Yang H.N, Kong Y, Kim J.C, Shin K.W, Koo B.S. Intraocular fascioliasis: a case report. Am. J.Trop.Med.Hyg., 1994; 50(3): 349-53.
• 32. Hillyer G.V, Galanes M.S, Rodriguez-Perez J, Bjorland J, Lagrava M.S, Guzman S.R, Bryan R.T, Use of FASTELISA and EITB to determine the prevalence of human fascioliasis in the Bolivian Altiplano. Am J.Trop.Med.Hyg. 1992; 46(5): 603-9.
• 33. Stark M.E, Herrington D.A, Hillyer G.V, McGill D.B. An international traveler with fever, abdominal pain, eosinophilia and a liver lesion. Gastroenterology. 1993; 105: 1900-8.
• 34. Santiago N, Hillyer G.V. Antibody profiles by EITB and ELISA of cattle and sheep infected with Fasciola hepatica. J.Parasitol. 1988; 74(5): 810-8.