Tıbbi sülük (Hirudo verbana)’den izole edilen Aeromonas spp. suşlarının antibiyotik duyarlılıklarının belirlenmesi ve Çoklu Antibiyotik Direnç (ÇAD) indeks sonuçları

Abstract

Bu çalışmanın amacı tıbbi sülük (Hirudo verbana)’den izole edilen hareketli Aeromonas suşlarının antimikrobiyal duyarlılıklarını, Çoklu Antibiyotik Direnç (ÇAD) indekslerini ve plazmitlerin varlığını araştırmaktır. Suşların antibiyotik duyarlılıkları (ampisilin, kanamisin, kloramfenikol, nalidiksik asit, streptomisin, tetrasiklin, trimetoprim ve trimetoprim+sülfametoksazol) standart disk difüzyon tekniği ile belirlenmiştir. Plazmit izolasyonu manuel olarak tespit edilmiştir. Suşların Çoklu Antibiyotik Direnç (ÇAD) indeksleri hesaplanmıştır. Çalışma sonuçlarına göre, suşların en az bir antibiyotiğe karşı dirençli olduğu tespit edilmiştir. İzole edilen suşlar plazmit içermiştir.

Keywords

• Tıbbi sülük

References

1. Abdulhamd, A. (2010). Genetic diversity and antimicrobial susceptibility of motile aquatic aeromonads. IJCEA, 1(1), 90-96.
2. Altanlar, N., Yücel, N., Akın, A. (2003). Occurence and antibiotic susceptibility of motile Aeromonas spp. of untreated well water. J Fac Pharm, Ankara. 32(3), 151-157.
3. Avşar, C., Berber, İ., Yıldırım, A K. (2016). Sinop ilindeki hamsi ve zargana balıklarından Vibrio spp. izolasyonu ve karakterizasyonu. Turk Hij Den Biyol Derg, 73(2), 121-130.
4. Awan, M. B., Maqbool, A., Bari, A., Krovacek, K. (2009). Antibiotic susceptibility profile of Aeromonas spp. isolates from food in Abu Dhabi, United Arab Emirates. New Microbiol, 32, 17-23.
5. Ayhan, H., Mollahaliloğlu, S. (2018). Medicinal leech therapy. Ankara Med J, 20(1), 141-148.
6. CLSI (Clinical and Laboratory Standards Institute) (2006). Methods for antimicrobial disk susceptibility testing of bacteria isolated from aquatic animals; approved guideline, CLSI document M42-A, 26(23), USA.
7. CLSI (Clinical and Laboratory Standards Institute) (2017). Performance standards for antimicrobial susceptibility testing. 27th ed., CLSI Supplement M100, USA.
8. Ehinmidu, J.O. (2003). Antibiotics susceptibility patterns of urine bacterial isolates in Zaria, Nigeria. Trop J Pharm Res, 2(2), 223-228.

9. Ekici, H., Yarsan, E. (2008). Antibiyotiklere direnç ve dirençliliğin boyutlarının çok yönlü değerlendirilmesi. Türk Veteriner Hekimleri Birliği Dergisi, 3-4, 85-93.
10. Elal Muş, T., Çetinkaya, F. (2013). Perakende su ürünlerinde Aeromonas hydrophila varlığının araştırılması. Uludag Univ J Fac Vet Med, 32(1), 7-10.
11. Eroğlu, C., Hökelek, M., Güneren, E., Sünbül, M., Aydoğan, S., Uysal, O.A. (2000). Plastik cerrahide kullanılan sülük (Hirudo medicinalis)’lerden izole edilen Aeromonas hydrophila’ların antibiyotik duyarlılıkları. 15. Antibiyotik ve Kemoterapi (ANKEM) Kongresi, Antalya, 551-553.
12. EUCAST (2018). The European committee on antimicrobial susceptibility testing routine and extended international quality control for MIC determination and disk diffusion as recommended by EUCAST. Version 8.0.
13. Freitas, M.R., Freire, N.B., Peixoto L.J.S., Oliveira, S.T.L., Souza, R.C., Gouveia, J.J.S., Costa, M.M., Gouveia, G.V. (2018). The presence of plasmids in Aeromonas hydrophila and its relationship with antimicrobial and heavy metal-resistance profiles. CR, 49(9), e20170813, 1-6.
14. Furmanec-Blaszk, B. (2014). Phenotypic and molecular characteristics of an Aeromonas hydrophila isolated from the River Nile. Microbiol Res, 169, 547-552.
15. Goňi-Urriza, M., Pineau, L., Capdepy, M., Roques, C., Caumette, P., Quentin, C. (2000). Antimicrobial resistance of mesophilic Aeromonas spp. isolated from two European rivers. J Antimicrob Chemother, 46, 297-301.
16. Gödekmerdan, A., Arusan, S., Bayar, B., Sağlam, N. (2015). Tıbbi sülükler ve hirudoterapi. Turkiye Parazitol Derg, 35, 234-239.
17. Gönenç, B. (2000). Sülüklerin genel özellikleri, patojenite ve tedavi şekilleri. Kafkas Univ Vet Vet Fak Derg, 6(1-2), 137-144.
18. Hatha, M., Vivekanandhan, A. A., Julie, A., Christol, J. (2005). Antibiotic resistance pattern of motile aeromonads from farm raised fresh water. Int J Food Microbiol, 98, 131-134.
19. Jaberi, S., Rahmena, M., Shapouri, R. (2014). Determine of the microbial flora of leeches in North of Iran and designing antimicrobial solution to sterile the leeches. JABS, 8(3), 42-45.
20. Jagoda, S.S.S.S., Wijewardana, T. G., Kinoshita, S., Watabe, S., Asakawa, S. (2014). Characterization and antimicrobial susceptibility of motile aeromonads isolated from freshwater ornamental fish showing signs of septicaemia. Dis Aquat Org, 109, 127-137.
21. Joseph, A.V., Sasidharan, R.S., Nair, H.P., Bhat, S.G. (2013). Occurence of potential pathogenic Aeromonas species in tropical seafood, aquafarms and mangroves off Cochin coast in South India. Vetworld, 300-306.
22. Kumar, S., Varela, M.F. (2013). Molecular mechanisms of bacterial resistance to antimicrobial agents. Formatex, 552-534.
23. Kusdarwati, R., Rozi, D., Dinda, N., Nurjanah, I. (2017). Antimicrobial resistance prevalence of Aeromonas hydrophila isolates from motile Aeromonas septicemia disease. Asean-Fen International Fisheries Symposium, 1-6.
24. Litwinowicz, A., Blaskowska, J. (2013). Hirudo verbana is a source of fungal isolates potentially pathogenic to humans. Afr J Microbiol Res, 7(47), 5358-5363.
25. Odeyemi, O.A., Ahmad, A. (2017). Antibiotic resistance profiling and phenotyping of Aeromonas species isolated from aquatic sources. Saudi J Biol Sci, 24, 65-70.
26. Öztürk, R. (2002). Antimikrobik ilaçlara karşı direnç geliştirme mekanizmaları ve günümüzde direnç durumu. Akılcı antibiyotik Kullanımı ve Erişkinlerde Toplumdan Edinilmiş Enfeksiyonlar Sempozyum Dizisi, 31, 83-100.
27. Ruppé, E., Cherkaovi, A., Wagner, N., La Scala, G.C., Beaulieu, J.Y., Girard, M., Frey, J., Lazarevic, V., Schrenzel, J. (2018). In vivo selection of a multidrug resistant Aeromonas salmonicida during medicinal leech therapy. New Microbes New Infect, 21, 23-27.
28. Sağlam, N. (2018). The effects of environmental factors on leeches. AAE, 1(1), 1-3.
29. Samal, S.K., Das, B. K., Pal, B. B. (2014). Isolation, biochemical characterization, antibiotic susceptibility study of Aeromonas hydrophila isolated from freshwater fish. IJCMAS, 3(12), 259-267.
30. Sig, A.K., Güney, M., Üsküdar Güçlü, A., Özmen, E. (2017). Medicinal leech therapy an overall perspective. IMR, 6, 337-343.
31. Tekdal, D. (2009). Spirulina platensis (Cyanophyta)’e elektroporasyon yolu ile gen aktarım olanaklarının araştırılması. Adana, Türkiye, Yüksek Lisans Tezi, Çukurova Üniversitesi, 96 sayfa.
32. Tripthi, P.S., Ashalatha, M. (2015). Hirudotherapy-modern twist to ancient science and its relevance in maxillofacial region-a review. IJISR, 20(1), 141-148.
33. Verriere, B., Sabatier, B., Carbonelle, E., Mainardi, J.I., Prognon, P., Whitaker, I., Lantieri, L., Hivelin, M. (2016). Medicinal leech therapy and Aeromonas spp. infection. Eur J Clin Microbiol Infect Dis, 35, 1001-1006.
34. Whitaker, I.S., Maltz, M., Siddall, M.E., Graf, J. (2014). Characterization of the digestive tract microbiota of Hirudo orientalis (medicinal leech) and antibiotic resistance profile. Plastic and Reconstructive Surgery. 193(3), 408e-418e.
35. Yücel, N., Aslım, B., Bayatlı, Y. (2005). Prevalence and resistance to antibiotics for Aeromonas species isolated from retail fish in Turkey. J Food Quality, 28, 313-324.
36. Zhou, G., Shiq S., Huang, X.M., Xie, X.B. (2015). The three bacterial lines of defense against antimicrobial agents. Int J Mol Sci, 16, 21711-21733.