-

Abstract

This study describes adventitious shoot regeneration and browning in three sugar beet (Beta vulgaris L.) lines (ELK 345, ÇBM 315 and M 114) with petiole and leaf explants using different concentrations of Benzylaminopurine (BAP) , Naphtalaneacatic acid (NAA) and Indole-3-butyric acid (IBA) for adventitious shoot regenerations and browning in sugar beet. The highest shoot regeneration capacity in petiole explants was obtained of line ELK 345 (15 %) with 2 mg/1; BAP, 0,2 mg/1 NAA and 10 g/1 sucrose in MS media. The highest shoot regeneration was determined in petiole explants of line ÇBM 315 (9,66 %) where 0,5 mg/l BAP and 0,2 mg/I NAA was used as regenerant in MS. Maximum browning of 96,17 % was observed in regenerant media containing 2 mg/1 BAP and 0,5 mg/1 NAA in petiole explants of line M 114. Whereas, high frequency of browning was observed in leaf (average 91,81 %) explants of line M 114. However, browning of petiole explants was more severe

Keywords

• Sugar beet, Beta vulgaris L., doku kültürü, tissue culture, in vitro, adventitious shoot regeneration, browning

Bazı Şeker Pancarı (Beta vulgaris L.) Hatlarında In vitroAdventif Sürgün Rejenerasyonu

Öz

Bu çalışmada; farklı dozlarda benzil amino pürin (BAP) ,naftalen asetik asit (NAA) ve indol-3-bütirik asi t(IBA) kullanılarak şeker pancarı (ELK 345, ÇBM 315 ve M 114) hatlarına ait petiol ve yaprak eksplantlarında adventif sürgün rejenerasyonu ve kararma kapasiteleri belirlenmiştir. Petiol eksplantlarında en yüksek sürgün rejenerasyon kapasitesi (% 15,00) 2 mg/1 BAP; 0,2 mg/1 NAA ve 10 g/l sukroz içeren MS ortamına yerleştirilen ELK 345 hattına ait eksplantlarda elde edilmiştir. En yüksek sürgün rejenerasyonu 0,5 mg/1 BAP ve 0,2 mg/1 NAA içeren MS ortamına yerleştirlen ÇBM 315 hattına ait petiol eksplantlarında (% 9,66) tespit edilmiştir. Maksimum kararma 2 mg/l BAP ve 0,5 mg/1 NAA içeren rejenerasyon ortamına yerleştirilen M 114 hattına ait petiol (% 96,17) eksplantlarından elde edilmiştir. M 114 hattına ait yaprak eksplantlarında da yüksek oranda (ort. % 91,81) kararma görülmüştür. Bununla birlikte kararma petiol eksplantlarında daha fazla olmuştur

Anahtar Kelimeler

• Şeker pancarı, Beta vulgaris L., doku kültürü, in vitro, adventif sürgün rejenerasyonu, kahverengileşme

References

1. Anonim, 1993. Şeker Pancarı El Kitabı. Kozan Ofset Mat. San. ve Tic. Ltd. Şti., 32 s.
2. Anonim. 1997. Türkiye'de Şeker ve Şeker Pancarı Üretiminde Mevcut Durum, Sorunlar ve Çözüm Önerileri. İstanbul Ticaret Odası, İstanbul.
3. Anonim, 1998. Türkiye Şeker Fabrikaları A.Ş. Şeker Endüstrisi Agronomi Şubesi, 1997 yılı vejetasyon seyir raporları, Ankara.
4. Anonim, 1999. Türkiye Şeker Fabrikaları A.Ş. Şeker Endüstrisi Agronomi Şubesi, 1998 yılı vejetasyon seyir raporları, Ankara.
5. Allan, A. 1991. Plant cell culture in: "Plant Cell and Tissue Culture". Stafford, A. and Warren, G. (eds.), Open University Press, UK.
6. Burke, J.I., Sullivan, C.F., Finch, I. and Dix, P.J., 1993. Studies of in vitro propagation systems for sugar beet (Beta vulgaris L.). Plant Cell Reports,32,27-35
7. De Bock, Th.S.M. 1986.The genus beta: domestication, taxonomy and interspecific hybridization for plant breeding. Acta Hort. (ISHS) 182: 335-344.
8. Detrez, C.,Tetu., Sangwan, R.S., Sangwan-Norreel, B.S. 1988. Direct organogenesis from petiol and thin cell layer explants in Beta vulgaris L. cultured in vitro. Journal of Experimental Botany. 39:917-726

9. Fraley, R.T., Horsch, R.B., Rogers, S.G. 1985. A simple and general method for transferring genes into plants. Plant Science, 227:1229-1231.
10. Gönülşen, N. 1987. Bitki Doku kültürü yöntemleri ve uygulama alanları. Menemen - İzmir
11. Hall, R.D., Krens, F.A., Pedersen C. 1993. Petioles as the tissue source for isolation and culture of Beta vulgaris and Beta maritima protoplasts. Plant Science, 9S: 89- 97.
12. Jacq, B., Tetu, T., Sangwan, R.S., Laat, A.D., Sangwan- Norrel, B.S. 1992. Plant regeneration from sugar beet (Beta vulgaris L.) hypocotyls cultured in vitro and cytometric nuclear DNA analysis of regenerants. Plant Cell Reports,
13. Koç, H. 1992. Nişasta ve Şeker Bitkileri Ders Kitabı. Tokat Ziraat Fakültesi Yayınlan. No:48
14. Köksoy, N.F. 1995. Tahıllarda doku kültürü çalışmaları üzerine araştırmalar. Seminer notları. Ank. Üniv. Ziraat Fakültesi Tarla Bitkileri Anabilim Dalı Yayınları, Ankara.
15. Murashige, T., Skoog, F. 1962 A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol Plant 15(3): 473-497.
16. Özcan, S., Babaoğlu, M. 1999. I. Uluslararası Pancar Sempozyumu 11-13 Haziran, Konya
17. Raghawa Swamy, B.V., Himabindu, K, Lakshmi Sita, G. 1992. In vitro micropropagation of elite rosewood (Dalbergia latifolia Roxb.). Plant Cell Rep. II: 126- 131.
18. Ritchie, G.A., Short, K.C., Davey, M.R. 1989. In vitro shoot regeneration from callus, leaf axils and petioles of sugar beet (Beta vulgaris L.). Journal of Experimental Botany, 40. 277-283
19. Snedecor, G.W., Cochran, W.G. 1967. Statistical methods. The Iowa State University Press, Iowa, US.
20. Toldi, O., Gyulai, G., Kiss, J., Tamas, I.A, Belazs, E., 1996. Antiauxin enhanced microshoot initiation and plant regeneration from epicoty originated thin- layer explants of sugar beet (Beta vulgaris L.) plants. Plant Cell Rep. 15: 851-854
21. Yıldız, M. 2000. Keten (Linum usitatissimum L) bitkisinde adventif sürgün rejenerasyonu ve Agrobacterium tumefaciens aracılığıyla gen aktarımı. Doktora tezi. Fen Bil. Enst. Ank. Univ.
22. Yıldız, M., Avcı, M., Özgen, M., 1997. Studies of sterilization and medium preparation tecniques in sugarbeet regeneration. 5th. Turk-German Agricultural Research Sympozium. 29 Sep.- 4 Oct. Akdeniz Univ. 125-130.
23. Zhong, Z., H. G. Smith, and T. H. Thomas. 1993. In vitro culture of petioles and intact leaves of Sugar beet (Beta vulgaris L.). Plant Growth Regulation, 12: 59- 66.