Research Article

Pixy Erik Klon Anacının Mikro Çoğaltımında Destek Sistemli Sıvı Besin Ortamının Sürgün Çoğaltma Aşamasında Performansı

Volume: 14 Number: 1 June 30, 2025
EN TR

Pixy Erik Klon Anacının Mikro Çoğaltımında Destek Sistemli Sıvı Besin Ortamının Sürgün Çoğaltma Aşamasında Performansı

Öz

Amaç: Bu çalışmanın amacı, Pixy erik klon anacının (P. insititia L.) mikro çoğaltımında sürgün çoğaltma aşamasında destek sistemli sıvı besin ortamının, farklı BAP (6-benzil amino pürin) dozları ile birlikte sürgün canlılığı, çoğaltımı ve kalitesi üzerine etkilerinin araştırılmasıdır. Materyal ve Yöntem: Bitkisel materyal olarak alt kültürlerden sağlanan mikro sürgünler kullanılmıştır. Modifiye edilmiş Murashige ve Skoog (MS) besin ortamına 0.01 mg L-1 IBA (indol-3-bütirik asit) ve 0.1 mg L-1 GA3 (gibberellik asit) ile birlikte BAP’ın 0.5 mg L-1 veya 1.0 mg L-1 dozları, 30 g L-1 sakaroz ilave edilmiştir. Yarı katı besin ortamı 0.65 g L-1 agar ile katılaştırılmıştır. Sıvı besin ortamında destek sistemi olarak filtre kâğıdı kullanılmıştır. Kültürler 251 oC sıcaklık ve 16 saat aydınlık (35 µmol m-2 s-1) koşullarda tutulmuştur. Dördüncü haftanın sonunda sürgünlerde canlılık oranı, canlı kalan kültürlerde sürgün çoğalma oranı, sürgün sayısı, uzunluğu, kalınlık düzeyi (1-3) ve yaprak sayısı belirlenmiştir. Araştırma Bulguları: Sürgünlerde canlılık oranı BAP dozlarının ortalaması olarak sıvı ortamda (%100.0), yarı katı ortama (%66.7) göre ve canlı kalan kültürlerde çoğalma oranı yarı katı ortamda (%91.7), sıvı ortama (%73.6) göre istatistiksel anlamda önemli düzeyde daha yüksek bulunmuştur. Tüm uygulamaların ortalaması olarak sürgün sayısı 2.8±0.3 ve yaprak sayısı ise 8.0±0.6 adet/eksplant, sürgün kalınlık düzeyi 2.0±0.1 olarak belirlenmiştir. Ortalama sürgün uzunluğu, yarı katı ortamda (10.1±3.1 mm), sıvı ortamdan (8.0±2.5 mm) daha yüksek bulunmuştur. Sonuç: Sıvı ortamda eksplantların canlılık oranı yarı katı ortama göre %33.3 daha yüksek bulunmuştur. Bu durum dikkate alınarak canlılık yüzdesine göre hesaplanan sürgün çoğalma oranı sıvı ortamda (%73.6), yarı katı ortamdan (%61.2) %12.4 daha yüksek gerçekleşmiştir. Her iki ortam tipinde de sürgünler genellikle benzer sayıda ve kalitede üretilmiştir. Ortam tiplerinin ortalaması olarak BAP’ın 0.5 mg L-1 dozu (%88.5), 1.0 mg L-1 dozuna (%72.9) göre sürgün çoğaltım oranını artırmıştır.

Anahtar Kelimeler

Prunus insititia , in vitro , 6-benzil amino pürin , yarı katı ortam

References

  1. Arıcı, S. E. (2008). Bazı sert çekirdekli meyve anaçlarının doku kültürü ile çoğaltılması. Süleyman Demirel Üniversitesi Ziraat Fakültesi Dergisi 3(1), 19-23.
  2. Beakbane, A. B. (1977). Plum rootstock-Pixy variety. U.S. Patent No. Plant 4,061.
  3. Cantabella, D., Mendoza, C.R., Teixidó, N., Vilaró, F., Torres, R., & Dolcet-Sanjuan, R. (2022). GreenTray® TIS bioreactor as an effective in vitro culture system for the micropropagation of Prunus spp. rootstocks and analysis of the plant-PGPMs interactions, Scientia Horticulturae, 291, 110622. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2021.110622
  4. Dodds, J. H. & Roberts, L. W. (1993). Experiments in plant tissue culture. Cambridge University Press. New York, 231 p.
  5. Dolcet-Sanjuan, R., Casanovas, M., Franquesa, S., Alsina, E., Carrasco-Cuello, F., Torres, E., Rufat, J., Solsona, C., & Teixido, N. (2024). GreenTray®, a TIS bioreactor for plant micropropagation and abiotic or biotic stress bioassays. Applied Sciences, 14(10), 4051. https://doi.org/10.3390/app14104051
  6. Dolgun, O., Tekintas, F. E., & Ertan, E. (2008). A histological investigation on graft formation of some nectarine cultivars grafted on Pixy rootstock. World Journal of Agricultural Sciences 4(5), 565-568.
  7. Donadio, L. C., Lederman, I. E., Roberto, S. R., & Stucchi, E. S. (2019). Dwarfing-canopy and rootstock cultivars for fruit trees. Revista Brasileira De Fruticultura, 41(3), 1-12. https://doi.org/10.1590/0100-29452019997
  8. Gago, D., Sánchez, C., Aldrey, A., Christie, C. B., Bernal, M. Á., & Vidal, N. (2022). Micropropagation of plum (Prunus domestica L.) in bioreactors using photomixotrophic and photoautotrophic conditions. Horticulturae, 8(4), 286. https://doi.org/10.3390/horticulturae8040286
  9. Geyik, D., & Canlı, F. A. (2015). Micropropagation of ‘Pixy’ (Prunus institia L.) rootstock. Plant Molecular Biology & Biotechnology. 5, 1-6.
  10. Dutta Gupta, S., & Prasad, V. S. S. (2006). Matrix-supported liquid culture systems for efficient micropropagation of floricultural plants. J. A. Teixeira da Silva (Ed.), Floriculture, Ornamental and Plant Biotechnology: Advances and Topical Issues içinde (487-495. ss.). London: Global Science Books, Ltd.
APA
Ölmez, A., Dumanoğlu, H., & Polat, G. (2025). Pixy Erik Klon Anacının Mikro Çoğaltımında Destek Sistemli Sıvı Besin Ortamının Sürgün Çoğaltma Aşamasında Performansı. Akademik Ziraat Dergisi, 14(1), 13-22. https://doi.org/10.29278/azd.1645026