Metagenomic characterization of the bacterial microbiota in domestic cat (Felis catus) saliva

Abstract

Purpose: Felis catus is a domestic animal that interacts with people frequently, both directly and indirectly. These interactions ultimately result in changes to each organism's microbiome. Studying the microbiota of organisms which are in contact with humans enables new data on potential health risks and provides new understanding for microbial changes and compositions. This study aimed to enabled a detailed profile of the cat oral microbiota, contributing to a more comprehensive understanding of animal microbiomes and their potential impact on human health, particularly in the context of zoonoses and bacterial infections. Method: In this study, metagenomic analysis was used to understand Felis catus saliva’s bacterial composition at various taxonomic levels. The saliva sample was sequenced and the V3-V4 region of bacterial 16S rRNA gene was targeted for this analysis. Findings: At the phylum level, Bacterioidota (38%), Pseudomonadota (21%), Fusobacteriota (19%), Bacillota (11%), Spirochaetota (5%), and Mycoplasmatota (3%) and at the genus level Porphyromonas (30%), Fusobacterium (14%), Treponema (5%), Peptostreptococcus (5%), Campylobacter (5%) and Oceanivirga (4%) were dominant. Conclusion: This study provides a foundation for future research on microbial transmission between animals and humans. In the further studies, modern sequencing techniques can be used to better understand the links between bacterial communities in domestic animals and their potential impact on human health.

Keywords

• Felis catus
• metagenomics
• saliva
• microbiota

Evcil kedi (Felis catus) salivasının bakteriyal mikrobiyotasının metagenomik karakterizasyonu

Abstract

Amaç: Felis catus insanlar ile doğrudan ve dolaylı olarak sıklıkla etkileşime giren bir evcil hayvandır. Bu etkileşimlerin sonucunda her organizmanın mikrobiyomunda değişiklikler meydana gelmektedir. İnsanlarla temas halinde olan organizmaların mikrobiyotasının incelenmesi potansiyel sağlık riskleri hakkında yeni veriler; mikrobiyal değişiklikler ve kompozisyonlar hakkında yeni anlayışlar sağlamaktadır. Bu çalışmanın amacı kedi oral mikrobiyotasının ayrıntılı bir profilini elde edilmesini sağlayarak hayvan mikrobiyomlarının ve bunların özellikle zoonoz ve bakteriyel enfeksiyonlar bağlamında insan sağlığı üzerindeki potansiyel etkilerinin daha kapsamlı anlaşılmasına katkıda bulunmaktır. Metod: Bu çalışmada, Felis catus salivasının çeşitli taksonomik düzeylerdeki bakteriyel bileşimini anlamak için metagenom analizi kullanılmıştır. Saliva örneğinin sekanslanması ve analizi için bakteriyel 16S rRNA geninin V3-V4 bölgesi hedeflenmiştir. Bulgular: Filum seviyesinde baskın olarak Bacterioidota (%38), Pseudomonadota (%21), Fusobacteriota (%19), Bacillota (%11), Spirochaetota (%5) ve Mycoplasmatota (%3); cins seviyesinde ise Porphyromonas (%30), Fusobacterium (%14), Treponema (%5), Peptostreptococcus (%5), Campylobacter (%5) ve Oceanivirga (%4) tespit edilmiştir. Sonuç: Bu çalışma, hayvanlar ile insanlar arasındaki mikrobiyal bulaşmaya ilişkin gelecekteki araştırmalar için bir temel sağlamaktadır. Modern dizileme teknikleri, ilerleyen çalışmalarda evcil hayvanlardaki bakteri toplulukları arasındaki bağlantıları ve bunların insan sağlığı üzerindeki potansiyel etkilerini daha iyi anlamak için kullanılabilir.

Keywords

• Felis catus
• metagenom
• saliva
• mikrobiyota

References

1. [1] Küllük, E. & Dalgın, D. (2021). Veteriner Sahada Güncel Mikrobiyota Kavramı. Etlik Veteriner Mikrobiyoloji Dergisi, 32(1), 77-88. https://doi.org/10.35864/evmd.674349
2. [2] Uygun, A. (2017). “Fekal Mikrobiyota Transplantasyonu.”, J Biotechnol and Strategic Health Res., 1 (Special issue), 132-140.
3. [3] Suchodolski, J. S. (2011). “Companion animals symposium: microbes and gastrointestinal health of dogs and cats.” J Anim Sci., 89, 1520–1530.
4. [4] Song, S.J., Lauber, C., Costello, E.K., Lozupone. C.A., Humphrey. G., Berg-Lyons, D., Caporaso, J.G., Knights, D., Clemente, J.C., Nakielny, S., Gordon, J.I., Fierer, N. & Knight, R. (2013). Cohabiting family members share microbiota with one another and with their dogs. Elife, 16(2), e00458.. https://doi.org/10.7554/eLife.00458
5. [5] Taştan, R., & Ak Can, A. (2019). One health approach to decreasing biodiversity and the problem of emerging zoonotic diseases. Biological Diversity and Conservation, 12(3), 95-102. 10.5505/biodicon.2019.52824
6. [6] Açıkgöz, S., & Göl, İ. (2023). Halk Sağlığı Hemşireliği Perspektifinden Zoonozlarla Bulaşan Hastalıklar. STED, 32(2), 146-155. https://doi.org/10.17942/sted.1192443
7. [7] Ozen, D., Gürcan, S. & Kaya, U. (2014). Ankara ilinde yer alan sahipli kedi ve köpek populasyonunun belirlenmesi. Vet Hekim Der Derg., 85(1), 9-16.
8. [8] Sturgeon, A., Pinder, S. L., Costa, M. C. & Weese, J. S. (2014). Characterization of the oral microbiota of healthy cats using next-generation sequencing. The Veterinary Journal, 201(2), 223–229. 0.1016/j.tvjl.2014.01.024

9. [9] Vurucu, S., Alkan, S., Akça, A., Önder, T., Yüksel, C. & Güçlü-Kayta, S. B. (2022). Kedi Isırığı Sonrası Yumuşak Doku Enfeksiyonu. Black Sea Journal of Health Science, 5(2), 286-288. https://doi.org/10.19127/bshealthscience.1036823
10. [10] Babovic, N., Çaycı, C. & Carlsen, B. T. (2014). Cat bite infections of the hand: assessment of morbidity and predictors of severe infection. J Hand Surg Am., 39(2), 286-90. https://doi.org/10.1016/j.jhsa.2013.11.003
11. [11] Pekmezci, G. & Pekmezci, G. Z. (2016). Toksoplazmozis Kedilerde Davranışsal Değişikliklere Neden Olabilir mi?.Etlik Vet Mikrobiyol Derg., 27 (2), 149-154. https://doi.org/10.35864/evmd.515974
12. [12] Krumbeck, J. A., Reiter, A. M., Pohl, J. C., Tang, S., Kim, Y. J., Linde, A., Prem, A., & Melgarejo, T. (2021). Characterization of Oral Microbiota in Cats: Novel Insights on the Potential Role of Fungi in Feline Chronic Gingivostomatitis. Pathogens (Basel, Switzerland), 10(7), 904. https://doi.org/10.3390/pathogens10070904
13. [13] Bukin, Y., Galachyants, Y., Morozov, I., Bukin S. V., Zakharenko A. S. & Zemskaya T. I. (2019). The effect of 16S rRNA region choice on bacterial community metabarcoding results. Sci Data 6, 190007. https://doi.org/10.1038/sdata.2019.7
14. [14] Klindworth, A., Pruesse, E., Schweer, T., Peplles, J. & Quast, C. (2013). Evaluation of general 16S ribosomal RNA gene PCR primers for classical and next-generation sequencing-based diversity studies. Nucleic Acids Researches, 41(1). https://doi.org/10.1093/nar/gks808
15. [15] Adler, C. J., Malik, R., Browne, G. V. & Norris, J. M. (2016). Diet may influence the oral microbiome composition in cats. Microbiome, 4, 1-9. https://doi.org/10.1186/s40168-016-0169-y
16. [16] Harris, S., Croft, J., O’Flynn, C., Deusch, O., Colyer, A., Allsopp, J., Milella, L. & Davis, I. J. (2015). A pyrosequencing investigation of differences in the feline subgingival microbiota in health, gingivitis and mild periodontitis. PLoS One, 10(11), e0136986. 10.1371/journal.pone.0136986
17. [17] Thomas, S., Lappin, D. F., Nile, C. J., Spears, J., Bennett, D., Brandt, B. W. & Riggio, M. P. (2021). Microbiome analysis of feline odontoclastic resorptive lesion (FORL) and feline oral health. Journal of Medical Microbiology, 70(4), 001353. https://doi.org/10.1099/jmm.0.001353
18. [18] Mei, S., Cai, M., Lei, F., Wang, X., Yuan, X., Lin, Y. & Zhu, B. (2024). Revealing microbial community characteristics in healthy human, cat and canine salivas and looking for species-specific microbes. Int Journal of Legal Med., 138(6):2259-2269. https://doi.org/10.1007/s00414-024-03277-1