BibTex RIS Cite

-

Year 2013, Volume: 2 Issue: 2, 163 - 168, 01.12.2013

Abstract

In this study micropropagation on the Agrova SA88 strain of soybean ( Glycine max L. Merrill) were carried out. The shoot tip, nod, leaf, petiole, root, cotyledon and hypocotyls explants from seedlings were incubated in Murashige and Skoog (MS) medium with different concentrations and combinations of plant growth regulators (PGR) to investigate the effect of genotype, PGRs and explant on clonal propagation of soybean. As PGRs, cytokinin in different concentration and combination for adventitious shoot regeneration were employed. Among the PGRs applications, KN ( Kinetin) was found to be most influential on adventitious shoot regeneration (3-5 buds) of soybean in 2 and 3 mg/l concentration. The t-Z (trans-Zeatin) in 2-4 mg/l concentration gave callus on leaf, petiole and cotyledone. The grown stem on explants were separeted and incubated in MS medium with the PGRs of NAA ( Naphthalene acetic acid) and IBA ( Indole-3-butyric acid) for root development. 2 mg/l NAA was found to be more suitable for root development and the regenerated seedling were transferred PGRs-free MS medium for seedling development and the healthy individuals were transferred to pots and aclimatized

References

  • 1. Özcan S., Özgen M. 1996. Bitki Genetik Mühendisliği, Kükem dergisi, 1(1): 69-95.
  • 2. Akı C. 1997. Capsicum Annum L. nin Bazı Varyeteleri Üzerinde Doku Kültürü Çalışmaları. Ege Üniversitesi, Fen Bilimleri Enstitüsü, Doktora tezi, İzmir.
  • 3. Markley S. K. 1950. Soybeans and Soybean Products, Vol. 1, New York, USA. P, 15-210.
  • 4. İşler N., Çalışkan M. E. 1998. GAP Bölgesi Ekolojik Koşullarında Soyada (Glycine max. L. Merrill) Verim ve Verime Etkili Bazı Özelliklerin Korelasyonu ve Path Analizi, Tr. J. Of Agriculture and Forestry, 22: 1-5.
  • 5. Shurpalekar S. A. 1961.Chemical Composition and Nutritive Value of Soybeans and Soybeans Products. Soybeans Concil of America, International Office.11(2): 7-12. Roma.
  • 6. Fehr W. R. 1987. Breeding Methods for Cultivar Development in B. E. Caldwell (Ed) soybeans. Improvement, production and uses, Agronomy, 16: 249-294.
  • 7. Yılmaz H. A., Efe L. 1998. Bazı Soya (Glycine max. L. Merrill) Çeşitlerinin Kahramanmaraş Koşullarında 2. Ürün Olarak Yetiştirilebilme Olanakları, Tr. J. Of Agriculture and Forestry, 22:135-142.
  • 8. Murashige T., Skoog F. 1962. A Revised Medium for Rapid Growth and Bioassay with Tobacco Tissue Cultures, Physiologia Plantarum, 15: 473-497.
  • 9. Ma H. H., Wu T. L. 2008. Rapid and Efficient Regeneration in Soybean [Glycine max. L. Merrill] from Cotyldenary Node Explants, Acta Physiologiae Plantarum, 30(2): 209-216.
  • 10. Lincoln T., Eduardo Z. 2008. Bitki Fizyolojisi 3. Baskıdan tercüme, Palme yayıncılık, 493-515s, Ankara.
  • 11. Özgen M., Özcan S., Sevimay C. S., Sancak C., Yıldız M. 1998. High Frequency Adventitious Shoot Regeneration in Sainfoin, Plant Cell Tissue and Organ Culture, 42: 205-208.
  • 12. Mariashibu T. S., Anbazhagan V. R., Jiang S.Y., Ganapathi A., Ramachandan S. 2013. In Vitro Regeneration and Genetic Transformation of Soybean, Edited by James E. Board, Published: January 2.
  • 13. Kadıoğlu A. 2004. Bitki Fizyolojisi, Eser ofset matbacılık, 258-317s, Trabzon.
  • 14. Halperin W., Wetherell D. F. 1965.Ammonium Requirement for Somatic Embryogenesis in Vitro, Nature, 205: 519-520.

Soya Fasulyesi (Glycine max L. Merrill)’nin Doku Kültüründe Mikroçoğaltımı

Year 2013, Volume: 2 Issue: 2, 163 - 168, 01.12.2013

Abstract

Bu çalışmada soya fasulyesinin (Glycine max L. Merrill) Agrova SA88 varyetesi kullanılarak in vitro klonal çoğaltımı gerçekleştirilmiştir. Denemelerde kullanılan fideler in vitro koşullarda çimlendirilmiş tohumlardan elde edilmiştir. Çimlendirilen fidelerden alınan gövde ucu, boğum, yaprak, petiyol, kök, kotiledon ve hipokotil eksplantları Murashige ve Skoog (MS) ortamında farklı bitki büyüme düzenleyicileri (BBD) ile muamele edilip, genotipin, kullanılan eksplantın ve bitki büyüme düzenleyicilerinin soya fasulyesinde klonal üretim üzerine etkileri araştırılmıştır. Sitokinin olarak KN (Kinetin) ve t-Z (trans Zeatin)nin farklı konsantrasyon ve kombinasyonları adventif sürgün rejenerasyonu için uygulanmıştır. Eksplantlara uygulanan BBD’lerden KN’nin 2 ve 3 mg/l konsantrasyonlarında en iyi adventif sürgün rejenerasyonu gözlenmiştir (3-5 adet). Yaprak, petiyol ve kotiledon eksplantlarında ise t-Z’nin 2 mg/l ve 4 mg/l konsantrasyonu kallus gelişimine neden olmuştur. Adventif sürgünlerin köklendirilmesi için NAA (Naphthalene acetic acid) ve IBA (Indole-3-butyric acid) uygulanmış ve 2 mg/l NAA’ nın kök gelişimini uyarmada en etkili BBD olduğu saptanmıştır. Gövde gelişimi ve köklendirilmesi tamamlanmış sürgünler gelişimini devam ettirebilmeleri için BBD içermeyen MS ortamına aktarılmıştır. Olgunlaşan bitkiler daha sonra saksılara transfer edilerek dış koşullara alıştırılmıştır.

References

  • 1. Özcan S., Özgen M. 1996. Bitki Genetik Mühendisliği, Kükem dergisi, 1(1): 69-95.
  • 2. Akı C. 1997. Capsicum Annum L. nin Bazı Varyeteleri Üzerinde Doku Kültürü Çalışmaları. Ege Üniversitesi, Fen Bilimleri Enstitüsü, Doktora tezi, İzmir.
  • 3. Markley S. K. 1950. Soybeans and Soybean Products, Vol. 1, New York, USA. P, 15-210.
  • 4. İşler N., Çalışkan M. E. 1998. GAP Bölgesi Ekolojik Koşullarında Soyada (Glycine max. L. Merrill) Verim ve Verime Etkili Bazı Özelliklerin Korelasyonu ve Path Analizi, Tr. J. Of Agriculture and Forestry, 22: 1-5.
  • 5. Shurpalekar S. A. 1961.Chemical Composition and Nutritive Value of Soybeans and Soybeans Products. Soybeans Concil of America, International Office.11(2): 7-12. Roma.
  • 6. Fehr W. R. 1987. Breeding Methods for Cultivar Development in B. E. Caldwell (Ed) soybeans. Improvement, production and uses, Agronomy, 16: 249-294.
  • 7. Yılmaz H. A., Efe L. 1998. Bazı Soya (Glycine max. L. Merrill) Çeşitlerinin Kahramanmaraş Koşullarında 2. Ürün Olarak Yetiştirilebilme Olanakları, Tr. J. Of Agriculture and Forestry, 22:135-142.
  • 8. Murashige T., Skoog F. 1962. A Revised Medium for Rapid Growth and Bioassay with Tobacco Tissue Cultures, Physiologia Plantarum, 15: 473-497.
  • 9. Ma H. H., Wu T. L. 2008. Rapid and Efficient Regeneration in Soybean [Glycine max. L. Merrill] from Cotyldenary Node Explants, Acta Physiologiae Plantarum, 30(2): 209-216.
  • 10. Lincoln T., Eduardo Z. 2008. Bitki Fizyolojisi 3. Baskıdan tercüme, Palme yayıncılık, 493-515s, Ankara.
  • 11. Özgen M., Özcan S., Sevimay C. S., Sancak C., Yıldız M. 1998. High Frequency Adventitious Shoot Regeneration in Sainfoin, Plant Cell Tissue and Organ Culture, 42: 205-208.
  • 12. Mariashibu T. S., Anbazhagan V. R., Jiang S.Y., Ganapathi A., Ramachandan S. 2013. In Vitro Regeneration and Genetic Transformation of Soybean, Edited by James E. Board, Published: January 2.
  • 13. Kadıoğlu A. 2004. Bitki Fizyolojisi, Eser ofset matbacılık, 258-317s, Trabzon.
  • 14. Halperin W., Wetherell D. F. 1965.Ammonium Requirement for Somatic Embryogenesis in Vitro, Nature, 205: 519-520.
There are 14 citations in total.

Details

Primary Language Turkish
Journal Section Articles
Authors

Özlem Efendioğlu This is me

Özlem Efendioğlu This is me

Musa Türker This is me

Musa Türker This is me

Fethi Ahmet Özdemir This is me

Publication Date December 1, 2013
Submission Date January 5, 2015
Published in Issue Year 2013 Volume: 2 Issue: 2

Cite

IEEE Ö. Efendioğlu, Ö. Efendioğlu, M. Türker, M. Türker, and F. A. Özdemir, “Soya Fasulyesi (Glycine max L. Merrill)’nin Doku Kültüründe Mikroçoğaltımı”, Bitlis Eren Üniversitesi Fen Bilimleri Dergisi, vol. 2, no. 2, pp. 163–168, 2013.

Bitlis Eren University
Journal of Science Editor
Bitlis Eren University Graduate Institute
Bes Minare Mah. Ahmet Eren Bulvari, Merkez Kampus, 13000 BITLIS