Normal Plasenta ve Plasenta Perkreata Vakalarında E ve P Kaderinin Dağılımı

Abstract

Amaç: Bu çalışmada, hamilelikte önemli fonksiyonlar üstlendiğine inanılan hücre adezyon moleküllerinden olan kaderinler (E- ve P-kaderin) hem normal hem perkreatalı insan plasentalarındaki lokalizasyonları ile ekspresyonlarını ve plasentasyona katılan dokularda bu faktörlerin rollerinin bulunup bulunmadığını araştırmaktır. Yöntemler: Çalışmamıza; Temmuz 2023 - Eylül 2023 tarihleri arasında Dicle Üniversitesi Tıp Fakültesi Kadın Hastalıkları ve Doğum Kliniği’ne başvuran normal plasenta yerleşimi olan 22 hasta ve plasenta perkreata spektrumu olan 22 hastanın, doğum sonrası elde edilen plasentalarından histolojik takip için küçük parçalar alındı. Plasenta perkreata spektrumu olan hastaların tanısı USG ile konulduktan sonra sezaryen sonrası plasentanın histopatolojik incelenmesi ile konfirme edildi. Alınan doku örnekleri rutin histolojik doku işleme sonrasında parafinde bloklandı. Parafin bloklardan seri kesitler alındı. Parafin kesitlere E- ve P-Kaderin proteinleri için immunohistokimyasal boyama yöntemi uygulandı. Bulgular: E- kaderin immmunaktivitesi normal plasentanın sinsityotrofoblast ve desidual hücrelerinde kuvvetli olmasına karşın perkreatalı plasentada bu immunoaktivitenin düşük olduğu, buna bağlı olarak koryon villus morfolojik yapılarında bozulma ve trofoblastik invazyonu etkileyebileceğini gözlemledik. E kaderin immunaktivitesi Perkeata olgularında belirteç olabileceği buna karşın normal plasentalarda ve perkreatalı plasentalarda P- kaderin immunaktivitesi e- kaderine göre zayıf olarak izlendi. Sonuç: E kaderin immunoaktivitesinin düşüklüğüne bağlı olarak, perkratalı plasentalarda koryon villus morfolojik yapılarında bozulma ve trofoblastik invazyonu etkileyebileceğini, bir belirteç olarak gözlenmesine karşın P kaderin immun aktivitesi normal ve perkratalı plasendalarda önemli bir ayrıt edici farklılığı ortaya koymamıştır.

Keywords

• Kaderin
• plasenta
• perkreata

References

1. 1.Yawei L, Xiaoying F, Rui W, et al. Single-cell RNA-seqreveals the diversity of trophoblast subtypes andpatterns of differentiation in the human placenta. CellResearch.2018;28:819–32.
2. 2. Alev Ö, Aslı Y, Sezen K. The Role of Osteopontin in thePathogenesis of Placenta Percreta. GinekologiaPolska.2018; 89, 8, 437–41.
3. 3.Qingyuan J, Lei DNC,Junshu LY, Gao JZ. IntegrativeAnalysis Provides Multi-Omics Evidence for thePathogenesis of Placenta Percreta. J Cell Mol Med.2020;24:13837–52.
4. 4.Sağsöz H, Liman N, Akbalık ME, et al. Expression ofcadherins and some connective tissue components incow uterus and placenta during pregnancy. Researchin Veterinary Science.2022;151: 64-79.
5. 5.Şahin H, Akpak YK, Berber U, et al. Expression of P-cadherin (cadherin-3) and E-selectin in the villoustrophoblast of first trimester human placenta. Journalof the Turkish German GynecologicalAssociation.2014;15(1): 13-7.
6. 6.Persaud TVN, Moore KL Çeviren: Yıldırım M, Okar İ,Dalçık H.Klinik Yönleri ile İnsan Embriyolojisi1. Basım,Nobel Tıp Kitabevleri Ltd Şti , İstanbul. 2002; s: 131-46.
7. 7.Oyelese Y, Smulian JC. Placenta previa, placentaaccreta, and vasa previa. Obstet Gynecol.2006;107(4):927-41.
8. 8.Jauniaux E, Alfirevic Z, Bhide AG, et al. PlacentaPraevia and Placenta Accreta: Diagnosis andManagement: Green-top Guideline No. 27a. BJOG2019;126(1):e1-e48).

9. 9.Sağsöz H, Akbalık ME, Ketani MA, et al. Expression ofcadherins and some connective tissue components incow uterus and placenta during pregnancy. Researchin Veterinary Science.2022;151: 64-79.
10. 10.Borbely AU, Sandri S, Fernandes IR.et al .The termbasal plate of the humanplacenta as a source offunctional extravillous trophoblast cells. Reprod BiolEndocrinol 2014;12:7–19.
11. 11.Pafilis J, Batistatou A, Iliopoulou A, et al. Expressionof adhesion molecules during normal pregnancy. Celland Tissue Res 2007;329:1–11.
12. 12.Fitzpatrick KE, Sellers S, Spark P, et al. Incidenceand risk factors for placenta accreta/increta/percretain the UK: a national casecontrol study. PLoS One2012;7:52893.
13. 13. Aplin JD, Myers JE, Timms K, Westwood M. Tracking placental development in health and disease. Nat RevEndocrinol. 2020;16(9):479-494;DOI:10.1038/s41574-020-0372-6.).
14. 14.Ander SE, Diamond MS, Coyne CB. Immuneresponses at the maternal-fetal interface. Sci Immunol.2019;4(31):eaat6114; DOI:10.1126/sciimmunol.aat6114.).
15. 15.Zhong YC, Zhang T, Di W, Li WP. Thrombinpromotes epithelial ovarian cancer cell invasion byinducing epithelial-mesenchymal transition. J GynecolOncol 2013;24:265–72.
16. 16.Zhou Y, Damsky C, Fisher SJ. Preeclampsia isassociated with failure of human cytotrophoblasts tomimic a vascular adhesion phenotype. J Clin Invest1997;99:2152e64.
17. 17.Bıyık I, Metineren H, Ozturk E, et al. Placental T-Cadherin Correlates With Trophoblastic InvasionAnomalies: Placenta Percreta and Fetal GrowthRestriction. Int J Gynecol Pathol. 2023;1:42(3):293-300.
18. 18.Knudsen KA, Wheelock MJ. Cadherins and themammary glad. J Cell Biochem 2005;95:488e96.
19. 19.Shimoyama Y, Yoshida T, Terada M, et al. Molecularcloning of a human Ca2+-dependent cell-cell adhesionmolecule homologous to mouse placental cadherin: itslow expression in human placental tissues. J Cell Biol1989; 109: 1787-94.
20. 20.Campbell S, Swann HR, Seif MW, Kimber SJ, AplinJD. Cell adhesion molecules on the oocyte andpreimplantation human embryo. Hum Reprod 1995;10: 1571-8.
21. 21.Li CM, Hou L, Zhang H, Zhang WY. CCL17 inducestrophoblast migration and invasion by regulatingmatrix metalloproteinase and integrin expression inhuman first-trimester placenta. Reprod Sci 2014;10.1177/1933.
22. 22.Sunder S, Lenton EA. Endocrinology of the peri-implantation period. Baillieres Best Pract Res ClinObstet Gynaecol 2000; 14: 789-800.
23. 23.Crockard AD, Boylan MT. Corticosteroids effects onneutrophil adhesion molecules. Int. J. Clin. Lab.Res.,1998; 28, 110–5.
24. 24.Saygılı Ö,Gültekin F. Hücre adezyon molekülleri. T.Klin. Tıp. Bil., 1999; 19, 362-5.
25. 25.Boer DCJ, DE Van,KH Van. Changing roles ofcadherins and catenins during progression ofsquamous intraepithelial lesions in the uterine cervix.Am J Pathol 1999;155:505–15.
26. 26.Babawale MO, Van NS, Pignatelli M, et al.Morphological interactions of human first trimesterplacental villi co-cultured with decidual explants. HumReprod 1996;11: 444-50.
27. 27.Babawale MO, Mobberley MA, Ryder TA, Elder MG,Sullivan MH. Ultrastructure of the early human feto-maternal interface co-cultured in vitro. Hum Reprod2002;17(5):1351-7.
28. 28.Duzyj CM,Buhimschi IA. The invasive phenotype ofplacenta accreta extravillous trophoblasts associateswith loss of E-cadherin Placenta2015;36- 645-51.
29. 29.Durmaz G. Plasenta Yapışma anomalilerindeadezyon molekülü olan P- kaderinin rolü. TıptaUzmanlık Tezi, 2020.