Trikomoniyaz tanısında farklı laboratuvar yöntemlerinin kullanılması ve Trikomoniyaz hastalarında miRNA profilinin belirlenmesi

Year 2024, Volume: 51 Issue: 1, 89 - 97, 14.03.2024

Hasan Turgut , Fadime Eroğlu

https://doi.org/10.5798/dicletip.1451668

Abstract

Amaç: Türkiye’nin kuzeyinde yer alan Karadeniz Bölgesinde yapılan bu çalışmada trikomoniyaz tanısında kullanılan laboratuvar yöntemlerini karşılaştırmak, sosyo-demografik özelliklerin ve cinsellikte çok eşliliğin hastalığın yaygınlığına etkisini araştırmak, trikomoniyaz hastalarında immun yanıt oluşumunda rol oynayan T ve B hücrelerini aktive eden miRNA profilini belirlemek amaçlanmıştır.
Yöntemler: Çalışma için 2018-2023 yılları arasında üroloji polikliniğine üretral akıntı şikayeti ile başvuran 86 erkek hastadan idrar örneği alınırken, eşlerinden de vajinal sürüntü örnekleri alınmıştır. Klinik örnekler mikroskobik inceleme, kültür, PCR ve gerçek zamanlı PCR yöntemleri ile analiz edilmiştir. Hastalardaki miRNA analizini belirlemek için alınan kan örnekleri miRNA kitlerinin (Qiagen, Hilden, Almanya) kullanma talimatlarına göre hazırlandıktan sonra miRNA analiz cihazında (Fluidgm, Almanya) hastaların miRNA profili belirlenmiştir.
Bulgular: Gerçek zamanlı PCR yönteminin pozitif prediktif değeri %17,4 ve duyarlılığı ise %100 bulunmuş olup trikomoniyaz tanısında kullanılabilecek en duyarlı test olduğu saptanmıştır. Çalışmada sosyo-demografik özelliklerin trikomoniyaz yaygınlığına etkisinin olmadığı, ancak cinsellikte çok eşliliğin hastalığın yaygınlığına etkili olduğu görülmüştür. Trikomoniyaz hastalarında T ve B hücrelerini aktive eden 60 miRNA’nın 20’sinin düşük seviyelerde eksprese olduğu, 11’inin ise yüksek seviyelerde eksprese olduğu ve 29’unun ise değişmediği saptanmıştır.
Sonuç: Trikomoniyazın laboratuvar tanısında gerçek zamanlı PCR yöntemi kullanılarak hastalığa erken ve hızlı tanı konulabilir. Böylece hastalık erken tedavi edilerek, hastalığın yayılması ve halk sağlığı sorunu olması önlenebilir. Trikomoniyaz hastalarında T ve B hücrelerini aktive eden miRNA’ların ekspresyon seviyelerinin belirlenmesi ile hastalığın immünitesi hakkında yeni bilgiler elde edilmiştir.

Keywords

Trikomoniyaz, laboratuvar tanısı, T ve B hücreleri, miRNA

References

• 1. Noh CS, Kim SS, Park SY, et al. Comparison of two PCRassays for Trichomonas vaginalis. Korean J Parasitol2019;57(1):27-31.https://doi:10.3347/kjp.2019.57.1.27
• 2. https://www.seyahatsagligi.gov.tr/SeyahatOnerileri/CinselHastaliklar (Erişim Tarihi: 01.04.2023)
• 3.Nemati Malla N, Yadav M, Khorramdelazad H,Jafarzadeh A. Humoral and T cell-mediated immuneresponse against trichomoniasis. Parasite Immunol2018; 40(3). https://doi.org/10.1111/pim.12510.
• 4.Lin WC, Li SC, Lin WC, et al. Identification ofmicroRNA in the protist Trichomonas vaginalis.Genomics 2009;93(5):487-93.https://doi.org/10.1016/j.ygeno.2009.01.004.
• 5.Wahid F, Shehzad A, Khan T, Kim YY. MicroRNAs:synthesis, mechanism, function, and recent clinicaltrials. Biochim Biophys Acta 2010; 1803(11):1231-43.
• 6. Ertabaklar H, Yaman Karadam S, Malatyalı E, Ertuğ S.Investigation of in vitro metronidazole resistance inthe clinical isolates of Trichomonas vaginalis.Mikrobiyol Bul 2016; 50(4):552-58.https://doi.org/10.5578/mb.30140.
• 7.Yazısız H, Koyuncu Özyurt Ö, Öztürk Eryiğit F, et al.Evaluation of microscopic examination, culture andpolymerase chain reaction tests in the diagnosis ofTrichomonas vaginalis infection. Mikrobiyol Bul2020;54(1):135-143. https://doi.org/ doi:10.5578/mb.68828.
• 8.Ertabakar H, Ertuğ S, Çalışkan SÖ, Malatyalı E,Bozdoğan B. Use of internal transcrbed spacersequence polymorphisms as a method forTrichomonas vaginalis genotyping. Turkiye ParazitolDerg 2018;42(1):6-10.https://doi.org/10.5152/tpd.2018.5503.
• 9. Shaw MK, Porterfield HS, Favaloro S, et al. Prevalenceand cervical organism burden among Louisianawomen with Trichomonas vaginalis infections.PlosOne 2019 14(6):e027041.https://doi.org/10.1371/journal.pone.021041.
• 10.Nolan MS, Cruz AT, Erickson T. Retrospective chartanalysis of child and adolescent Trichomonas vaginalisinfection in Houston, Texas. J Pediatric Infect Dis Soc2020; 28;9(1):75-81.https://doi.org/10.1093/jpids/piy134.
• 11.Tamer Sönmez G, Dündar D, Çalışkan Ş, Doğer E.Comparison of direct microscopy and in-vitro culturesin detection of Trichomonas vaginalis. Turk Hij DenBiyol Derg 2008; 65(2):75-80.
• 12.Yazar S, Dağcı H, Aksoy Ü, et al. İzmir’de vaginalakıntılı kadınlarda Trichomonas vaginalis sıklığı.İnönü Üniv Tıp Fak Derg 2002; 9(3):159-61.
• 13.Akısu Ç, Aksoy Ü, Özkoç S, Orhan V. Trichomonasvaginalis’in tanısında direkt mikroskobik bakı, in vitrokültür, hücre kültürünün araştırılması. TurkiyeParazitol Derg 2002; 26(4):377-80.
• 14.Caliendo AM, Jordan JA, Green AM, et al. Real-timePCR improves detection of Trichomonas vaginalisinfection compared with culture using self-collectedvaginal swabs. Infect Dis Obstet Gynecol2005;13(3):145-50.https://doi.org/10.1080/10647440500068248.
• 15.Schirm J, Bos PA, Roozeboom-Roelfsema IK, LujitDS, Möller LV. Trichomonas vaginalis detection usingreal-time Taqman PCR. J Microbiol Methods2007;68(2):243- 7.https://doi.org/10.1016/j.mimet.2006.08.002.
• 16.Guenther PC, Secor WE, Dezzutti CS. Trichomonasvaginalis induced epithelial monolayer disruption andhuman immunodeficiency virus type1 (HIV-1)replication: implications for the sexual transmission ofHIV-1. Infect Immun 2005;73:4155-60.https://doi.org/10.1128/IAI.73.7.4155-4160.2005.
• 17.Lee JJ, Moon HS, Lee TY, et al. PCR for diagnosis ofmale Trichomonas vaginalis infection with chronicprostatitis and urethritis. Korean J Parasitol2012;50:157-59.https://doi.org/10.3347/kjp.2012.50.2.17.
• 18. Mitteregger D, Aberle SW, Makristathis A, et al. Highdetection rate of Trichomonas vaginalis in benignhyperplastic protatic tissue. Med Microbiol Immunol2012;201(1):113-6. https://doi.org/10.1007/s0430-011-0205-2.
• 19.Gratrix J, Plitt S, Turnbull L, Smyczek P, BrandleyScarrott R. Trichomonas vaginalis prevalence andcorrelates in women and men attending STI clinics inwestern Canada. Sex Transm Dis 2017;44(10):627-29.https://doi.org/10.1097/OLQ.0000000000000650.
• 20.Ulusan Bağcı Ö, Caner A. The role of microRNAs inparasitoloy. Turkiye Parazitol Derg 2020;44(2):102-8.https://doi.org/10.4274/tpd.galenos.020.6776.
• 21.Nemati M, Malla N, Yadav M, Khorramdelazad H,Jafarzadeh A. Humoral and T cell mediated immuneresponse against trichomoniasis. Parasite Immunol2018; 40(3). https://doi.org/10.1111/PİM.12510.
• 22.Xu MJ, Qiu SB, Nisbet AJ, et.al. Globalcharacterization of microRNAs in Trichomonasgallinae. Parasit Vectors 2014;10:7-9.https://doi.org/10.1186/1756-3305-7-99.
• 23.Huang PJ, Lin WC, Chen SC, et al. Identification ofputative miRNAs from the deepbranching unicellularflagellates. Genomics 2012; 99(2):101-7.https://doi.org/10.1016/j.ygeno.201.11.002.
• 24.Nemati M, Malla N, Yadav M, et al. Humoral and Tcell-mediated immune response againsttrichomoniasis. Parasite Immunol 2018;40(3). doi:10.1111/pim.12510.
• 25.Doğan S, Altındağ E. Cinsel yolla bulaşan hastalıklarkonusunda danışmanlık vermek. Klinik Tıp AileHekimliği Dergisi 2017; 9(2):33-6.