THE EFFECTS OF DIFFERENT TREATMENTS ON IN VITRO SEED GERMINATION OF PAPAVER RHOEAS

Abstract

In this research, the most suitable pH level, sucrose and agar doses for in vitro germination of Papaver rhoeas  which has got germination problem and medical importance were determined. The germination of seeds carried out in distilled water and in vitro condition at plant growth cabinet. As a result of our study, Papaver rhoeas  seeds germination rate in distilled water is very low and seeds are dormant (germination percentage ~  10 %) were detected. The most suitable pH level, in vitro germination treatment was determined as 5.8. 3 % sucrose and 0.7 % agar led to highest germination rate. Consequently, Papaver rhoeas seeds was successfully germinated in vitro  culture. 

Keywords

• Agar,germination,in vitro,Papaver rhoeas,pH,sucrose

PAPAVER RHOEAS TOHUMLARININ IN VİTRO ORTAMDA ÇİMLENMESİ ÜZERİNE FARKLI UYGULAMALARIN ETKİLERİ

Abstract

Bu araştırmada, çimlenme problemi olan ve tıbbi öneme sahip olan Papaver rhoeas tohumlarının doku kültürü (in vitro) ortamında çimlendirilmesi için en uygun ortam pH’ı, sükroz ve agar dozunun belirlenmesi amaçlanmıştır. Tohumların çimlendirilmesi saf su ortamında ve in vitro ortamda bitki büyütme kabininde gerçekleştirilmiştir. Yaptığımız çalışmanın sonucunda, Papaver rhoeas tohumlarının saf suda çimlenme oranının çok düşük olduğu ve tohumların dormant olduğu (çimlenme yüzdesi ~ % 10) tespit edilmiştir. In vitro ortamda yapılan çimlendirme denemesinde ise en uygun ortam pH’ı 5.8 olarak belirlenmiştir. % 3 oranında kullanılan sükroz ve % 0.7 oranında kullanılan agar ortamında en yüksek çimlenme elde edilmiştir. Sonuç olarak, Papaver rhoes tohumları in vitro ortamda başarılı bir şekilde çimlendirilmiştir. 

Keywords

• Agar,çimlenme,in vitro,Papaver rhoeas,pH,sükroz

References

1. [1] A. Hamilton, P. Hamilton, “Plant Conservation: An ecosystem approach”, Earthscan Publications Limited, ISBN: 9781844070824, 351 p. (2006).
2. [2] A. Ocak, “Eskişehir Çatacık Florası I”, Eskişehir Büyükşehir Belediyesi Yayını, 346 s (2007).
3. [3] E. Yücel, “Türkiye'de Yetişen Tıbbi Bitkiler 1”, 406 sayfa, Eskişehir (2007).
4. [4] G. Sariyar, “Biodiversity in the alkaloids of Turkish Papaver species”, Pure Appl. Chem., 74 (4), 557-574 (2002).
5. [5] E. Yücel, A. Tülükoğlu, “Gediz (Kütahya) çevresinde halk ilacı olarak kullanılan bitkiler”, 9 (36), 12-14 (2000).
6. [6] D. A. Kostic, S. S. Mitic, M. N. Mitic, A. R. Zarubica, J. M. Velickovic, A. S. Dordevic, A. S. Randelovic, “Phenolic contents, antioxidant and antimicrobial activity of Papaver rhoeas L. extracts from Southeast Serbia”, Journal of Medicinal Plants Research Vol. 4 (17), 1727-1732 (2010).
7. [7] Ş. S. İşbilir, “Yaprakları salata-baharat olarak tüketilen bazı bitkilerin antioksidan aktivitelerinin incelenmesi”, Doktora tezi, Trakya Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü, 132 p (2008).
8. [8] C. Cimpoiu, “Analysis of some natural antioxidants by thin-layer chromatography and high performance thin-layer chromatography”, Journal of Liquid Chromatography & Related Technologies”, 29: 1125–1142 (2006).

9. [9] S. E. Meyer, S. B. Monsen, “Habitat-correlated variation in mountain big sagebush (Artemisia tridentata ssp. vaseyana) seed germination patterns”, Ecology, 72: 739-742 (1991).
10. [10] W. Schütz, P. Milberg, “Seed dormancy in Carex canescens. Regional differences and ecological consequences”, Oikos, 78: 420-428 (1997).
11. [11] M. F. Fay, “Conservation of rare and endangered plants using in vitro methods”, In Vitro Cell. Dev. Biol., 28:1-4 (1992).
12. [12] E. E. Benson (Editor), “Plant conservation biotechnology, Chapter 15 (V. C. Pence)”, London, UK: CRC Press, 227-242 p (1999).
13. [13] E. E. Benson, J. E. Danaher, I. M. Pimbley, C. T. Anderson, J. E. Wake, S. Daley, L. K. Adams, “In vitro micropropagation of Primula scotica: a rare Scottish plant”, Biodiversity and Conservation, 9, 711-726 (2000).
14. [14] C. C. Baskin, P., Milberg, L., Andersson, J. M., Baskin, “Non-deep simple morphophysiological dormancy in seeds of the weedy facultative winter annual Papaver rhoeas”, Weed Research, 42, 94-202 (2002).
15. [15] Benech-Arnold, R. L., Sanchez, R. A., Forcella, F., Kruk, B. C., Ghersa, C. M., 2000, Enviromental control of dormancy in weed seed banks in soil, Field Crops Research, 67, 105-122.
16. [16] Bewley, J. D., 1997, Seed germination and dormancy, The Plant Cell, 9, 1055-1066.
17. [17] B. Akın, “Dormansi kırıcı yöntemlerin yabancı ot tohumları üzerinde etkileri”, Yüksek Lisans Tezi, 62 s. (2004).
18. [18] M. Babaoğlu, E. Gürel, S. Özcan, “Bitki biyoteknolojisi, I. Doku kültürü ve uygulamaları”, Selçuk Üniversitesi Vakfı Yayınları, 374 s. (2002).
19. [19] T. Murashige and F. Skoog, “A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures”, Physiol. Plant. 15: 473-497 (1962).
20. [20] İ. Kocaçalışkan, , Bitki doku kültürleri, Bizim Büro Basımevi, Ankara, 3. Baskı, 136 p. (2008).
21. [21] K. Özdamar, “SPSS ile Biyoistatistik”. Kaan Kitapevi, Yay_n No: 3-4, ISBN: 975-6787-03-1, 452 s. (2001).
22. [22] M. Savory-Posselius, “Herbology, home health care management & practice”, Volume 16 (6), 456-463 (2004).
23. [23] R. L. Benech-Arnold, R. A. Sanchez, F. Forcella, B. C. Kruk, C. M. Ghersa, “Enviromental control of dormancy in weed seed banks in soil”, Field Crops Research, 67, 105-122 (2000).
24. [24] M. Abdoli, A. Moieni, H. Dehghani, “Effects of cultivar and agar concentration on in vitro shoot organogenesis and hyperhydricity in sunflower (Helianthus annuus L.)”, Pak. J. Bot., 39 (1), 31-35 (2007).
25. [25] C. H. Bornam, and T. C. Vogelman, “Effect of rigidity of gel medium on benzyladenine-induced adventitious bud formation and vitrification in vitro in Picea abies”, Physiol. Plant. 61: 505–512 (1984).
26. [26] S. Sumlu, H. H. Atar, K. M. Khawar, “Breaking seed dormancy of water lily (Nymphaea alba L.) under in vitro conditions”, Biotechnol. & Biotechnol. EQ, 1582-1586 (2010).
27. [27] A. Onay, “In vitro organogenesis and embrygenesis of Pistachio, Pistacia vera L.”, Institute of Cell and Moleculer Biology, University of Edinburgh, Doktora tezi, 198 p. (1996).
28. [28] M. Avcı, “Çeşitlilik ve endemizm açısından Türkiye’nin bitki örtüsü”, Coğrafya Dergisi, 13 : 27-55 (2005).