Bir Buzağıda Giardia Duodenalis Kaynaklı Şiddetli Kanlı Diyare Olgusu

Year 2020, , 179 - 182, 31.12.2020

Akın Koçhan , Aynur Şimşek , Duygu Neval Sayın İpek , Hasan İçen

https://doi.org/10.47027/duvetfd.751290

Cited By: 2

Abstract

Giardia duodenalis (G. lamblia, G. intestinalis) ruminantlarda, insanlarda ve yaban hayvanlarında yaygın olarak bulanan bir protozoondur. G. duodenalis buzağılarda enteritis, kilo kaybı ve gelişme gerileğine neden olan ishallin önemli bir etiyolojik ajandır. Bu çalışmanın amacı kanlı ishalle neden olan Giardia duodenalis’in moleküler teşhisini, klinik ve laboratuar bulguları bildirmektir. Çalışmanın materyalini kliniğimize kanlı ishal şikâyeti ile getirilen üç aylık erkek bir buzağı oluşturdu. Buzağının yapılan klinik muayenesinde kanlı bir ishalle birlikte, vücut sıcaklığı 39,8 0C, nabzın 92 vurum/dk ve solunum sayısının 53 solunum/dk olduğu tespit edildi. Tanı amacıyla rektumda dışkı örnekleri alındı. İshalle neden olan (Rotavirus, Coronavirus, Cryptosporidium, E.coli F5(K99) ve Cl. Perfiringes Type) ajanların teşhisinde kullanılan hızlı tanı kiti ile bu ajanların varlığı yönünden incelendi. Bu ajanların hiçbiri tespit edilemedi ancak mikroskobik incelmede Giardia trofozoitleri görülürken koksidiosis etkeni eimeria ookistlerine rastlanılmadı. Kesin tanı için parazitoloji laboratuarına gönderilen örnekte mikroskobik ve moleküler (PZR) analizinde Giardia duodenalis (Assemblage D) tespit edildi. Sonuç olarak; Giardia duodenalis (Assemblage D)’nin buzağılarda şiddetli kanlı ishalle sebep olabileceği ve buzağılar için potansiyel bir problem olduğu kanaatine varılmıştır.

Keywords

Buzağı, Diyare, Giardia doudenalis

Supporting Institution

--

Project Number

---

Thanks

---

References

• 1) Şen İ, Güzelbekteş H, Yıldız R. (2013). Neonatal Buzağı İshalleri: Patofizyoloji, Epidemiyoloji, Klinik, Tedavi ve Koruma. Turkiye Klinikleri Journal of Veterinary Sciences, 4(1): 71-78.
• 2) Al M, Balıkçı E. (2012). Neonatal İshalli Buzağılarda Rotavirus, Coronavirus, E. Coli K99 ve Cryptosporidium Parvum'un Hızlı Test Kitleri ile Teşhisi ve Enteropatojen İle Maternal İmmünite İlişkisi. FÜ Sağ. Bil. Vet. Derg, 26(2): 73-78.
• 3) Gökçe G. (1995). Buzağı İshallerinde Etiyoloji, Patogenezis ve Tedavi Seçenekleri. Kafkas Üniversitesi Vet Fak Derg, 1(1-2): 98-102.
• 4) Adnan A, Ural K, Aysul N ve ark. (2016). Natural Cyst Shedding in Calves Infected with Giardia Duodenalis. Journal of Advances in VetBio Science and Techniques, 1(1): 14-19.
• 5) Olson ME, O'Handley RM, Ralston BJ, McAllister TA, Thompson RCA. (2004). Update on Cryptosporidium and Giardia Infections in Cattle. Trends in Parasitology. 20(4):185-191.
• 6) Appelbee AJ, Frederick LM, Heitman TL, Olson ME. (2003). Prevalence and Genotyping of Giardia Duodenalis from Beef Calves in Alberta. Veterinary Parasitology. 112(4):289-294.
• 7) Coklin T, Farber J, Parrington L. Dixon B. (2007). Prevalence and Molecular Characterization of Giardia Duodenalis and Cryptosporidium Spp. in Dairy Cattle in Ontario, Canada. Veterinary Parasitology. 150(4): 297-305.
• 8) Santin M, Dargatz D, Fayer R. (2012). Prevalence of Giardia Duodenalis Assemblages in Weaned Cattle on Cow-Calf Operations in The United States. Veterinary Parasitology. 183(3-4):231-236.
• 9) De Lucio A, Bailo B, Aguilera M, Cardona GA, Fernandez-Crespo JC, Carmena D. (2017). No Molecular Epidemiological Evidence Supporting Household Transmission of Zoonotic Giardia Duodenalis and Cryptosporidium Spp. from Pet Dogs and Cat in the Province of Álava. Acta Tropica, 170: 48-56.
• 10) Guanghua W, Ge-ping W, Xiu-ping L et al. (2017). Detection of Giardia Duodenalis Assemblage E Infections at The Tibetan Plateau Area: Yaks are Suitable Hosts. Acta Tropica. 169: 157-162.
• 11) Li F, Wang H, Zhang Z et al. (2016). Prevalence and Molecular Characterization of Cryptosporidium spp. and Giardia Duodenalis in Dairy Cattle in Beijing. Veterinary Parasitology. 219: 61-65.
• 12) Mendonça C, Almeida A, Castro A et al. (2007). Molecular Characterization of Cryptosporidium and Giardia Isolates from Cattle from Portugal. Veterinary Parasitology, 147(1-2): 47-50.
• 13) Geurden T, Geldhof P, Levecke B et al. (2008). Mixed Giardia Duodenalis Assemblage A and E Infections in Calves. International Journal for Parasitology, 38(2): 259-264.
• 14) Gultekin M, Ural K, Aysul N, Ayan A, Balikci C. Akyildiz G. (2016). The Efficacy of Chloroquine Treatment of Giardia Duodenalis Infection in Calves. Vlaams Diergeneeskundig Tijdschrift, 85(6): 335-341.
• 15) Albay MK, Sahinduran S, Adanır R, Yukarı BA, Kose O. (2011). Efficacy of Albendazole and Two Different Doses of Paromomycin for Treatment of Naturally Occurring Giardia Infection in Lambs. Kafkas Üniversitesi Vet Fak Derg, 17(6):1021-1024.
• 16) Toros G, Ural K. (2018). Single Dose Secnidazole Treatment Efficiency Against Naturally Occuring Giardia Duodenalis Infection in Calves. Revista MVZ Córdoba. 23(2):6660-6670.
• 17) Geurden T, Vandenhoute E, Pohle H et al. (2010). The Effect of a Fenbendazole Treatment on Cyst Excretion and Weight Gain in Calves Experimentally Infected with Giardia Duodenalis. Veterinary Parasitology. 169(1-2):18-23.
• 18) Xiao L, Saeed K, Herd RP. (1996). Efficacy of Albendazole and Fenbendazole Against Giardia Infection in Cattle. Veterinary Parasitology. 61(1-2):165-170.
• 19) Minetti C, Taweenan W, Hogg R et al. (2014). Occurrence and Diversity of Giardia Duodenalis Assemblages in Livestock in The UK. Transboundary and Emerging Diseases, 61(6):60-67.
• 20) Hopkins RM, Meloni BP, Groth DM, Wetherall JD, Reynoldson JA, Thompson RCA (1997). Ribosomal RNA Sequencing Reveals Differences Between The Genotypes Of Giardia İsolates Recovered from Humans and Dogs Living in The Same Locality. J. Parasitol, 83:44-51.
• 21) Read C, Walters J, Robertson ID, Thompson RC (2002). Correlation Between Genotype of Giardia Duodenalis and Diarrhoea. Int. J. Parasitol, 32: 229-231.