Araştırma Makalesi
BibTex RIS Kaynak Göster

Yoğun Bakım Ünitelerinde Sık Görülen Enfeksiyonlar, Gram-negatif Mikroorganizmalar, Antibiyotik Direnci

Yıl 2021, Cilt: 16 Sayı: 1, 35 - 39, 08.02.2021
https://doi.org/10.17517/ksutfd.671762

Öz

Amaç: Yoğun bakım ünitelerinde yatan hastaların çeşitli klinik örneklerinden izole edilen Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Pseudomonas aeruginosa ve Acinetobacter baumannii’nin dağılımlarının, ilaç direnç oranlarının ve bu oranların yııllara göre değişiminin saptanması, böylece akılcı antibiyotik uygulaması ve direncin önlenmesine katkı sağlanması amaçlanmıştır.
Gereç ve Yöntemler: İzole edilen suşların kolistin, tigesiklin, meropenem, imipenem ve trimetoprim-sülfametoksazol direnç oranları retrospektif olarak incelenmiştir. Üreyen bakterilerin identifikasyonu ve antibiyotik duyarlılık testleri VITEK 2 Compact ve MicroScan WalkAway 96 otomatize sistemi (kolistin için mikrotüp dilüsyon ) kullanılarak belirlenmiş ve Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI) önerilerine göre değerlendirilmiştir.
Bulgular: Yoğun bakım ünitelerinde en sık gözlenen mikroorganizma A. baumannii (%57.2) olarak saptanmıştır. Hastane enfeksiyonu olarak ventilatörle ilişkili pnömoni (%94.1), santral venöz kateterle ilişkili kan dolaşım enfeksiyonu (%45.2) ve kateter ilişkili üriner sistem enfeksiyonu (%44) görülmüştür. A.baumannii, P.aeruginosa ve K.pneumoniae’da meropenem, imipenem ve trimetoprim-sülfametoksazol direnç oranları yüksek bulunmuştur. Tüm mikroorganizmalara karşı en düşük direnç oranına sahip antibiyotiğin kolistin olduğu saptanmıştır.
Sonuç: En yüksek duyarlılığa sahip antimikrobiyalin kolistin olması nedeniyle özellikle çok ilaca dirençli suşlara karşı kolistin tek başına veya diğer antibiyotiklerle kombine olarak kullanılabilir. E.coli’de karbapenemler ve trimetoprim-sülfametoksazol duyarlı suşlarda kullanılabilir. Antibiyotik duyarlılık test sonuçlarına göre tedavi başlanması ve düzenli sürveyans takibinin yapılması, yoğun bakım ünitelerinde uygun antibiyotik kombinasyonları seçilmesine ve dirençli mikroorganizmaların azaltılmasına katkı sağlayacaktır.

Destekleyen Kurum

Herhangi bir kurum desteği alınmamıştır.

Kaynakça

  • 1. Aydemir Ö, Demiray T, Köroğlu M, ve ark. Yoğun bakım ünitelerinde yatan hastaların endotrakeal aspirat örneklerinden izole edilen bakterilerin tanımlanması ve antibiyotik duyarlılıkları. Online Türk Sağlık Bilimleri Derg. 2016;1(4):1-8. 2. Çetin ES, Kaya S, Pakbaş İ, Demirci M. Yoğun bakım ünitelerinde yatan hastalardan izole edilen mikroorganizmalar ve antibiyotik duyarlılıkları, İnönü Üniversitesi Tıp Fakültesi Dergisi. 2007;14(2):69-73. 3.Nicasio, A.M, Kuti JL and Nicolau DP. The current state of multidrug-resistant gram-negative bacilli in North America. Pharmacotherapy. 2008;28(2):235-49. 4.Falagas ME, Karageorgopoulos DE. Extended-spectrum beta-lactamase-producing organisms. J Hosp Infect. 2009;73(4):345-54. 5.Nordmann P, Cuzon G, Naas T. The real threat of Klebsiella pneumoniae carbapenemase-producing bacteria. Lancet Infect Dis. 2009;9(4):228-36. 6.Vasudevan A, Mukhopadhyay A, Li J, et al. Prediction tool for nosocomial multi-drug resistant gram-negative bacilli infections in critically ill patients prospective observational study. BMC Infect Dis. 2014;25(14):615. 7.Garner JS, Jarvis WR, Emori TG, et al. CDC definitions for nosocomial infections, 1988. Am J Infect Control. 1988;16(3):128-40. 8.Clinical and Laboratory Standards Institute. Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing; Twenty-Third Informational Supplement (M100-S23). Wayne, PA: CLSI 2013:1-205. 9.Çiftçi İH, Çetinkaya Z, Aktepe OC ve ark. Klinik örneklerden izole edilen Pseudomonas aeruginosa suşlarının antibiyotiklere duyarlılıkları. Türk Mikrobiyoloji Cemiyeti Dergisi. 2005;35(2):98-102. 10.Köksal İ. Yoğun bakımda gram pozitif bakteri sorunu. ANKEM Dergisi. 2009;23(2):143-7. 11.Vincent JL, Rello J, Marshall J, et al. International study of the prevalence and outcomes of infection in intensive care units: Results of the European prevalence of infection in intensive care (EPIC II) study. JAMA. 2009;302(21):2323-9. 12.Ak O, Batırel A, Özer S, Çolakoğlu S. Nosocomial infections and risk factors in the intensive care unit of a teaching and research hospital: A prospective cohort study. Med Sci Monit. 2011;17(5):29-34. 13.Köksaldı MV, Evirgen Ö, Yula E ve ark. Mustafa Kemal Üniversitesi Tıp Fakültesi Yoğun bakım ünitesi’nde 2011 yılında sağlık hizmeti ile ilişkili infeksiyonların değerlendirilmesi. ANKEM Dergisi. 2012;26(3):137-42. 14.Yılmaz GR, Çevik MA, Erdinç FŞ, Tüfek N. Nöroloji Yoğun bakım ünitesinde gelişen nozokomiyal infeksiyon risk faktörlerinin değerlendirilmesi. Hastane İnfeksiyonları Dergisi. 2002;6(1):24-31. 15.Paterson DL. Serious infections in the intensive care unit: Pseudomonas aeruginosa and Acinetobacter baumannii. Clin Infect Dis. 2006;43(2):41-2. 16.Timurkaynak F, Can F, Azap OK, Demirbilek M, Arslan H, Karaman SO. In vitro activities of non-traditional antimicrobials alone or in combination against multidrug-resistant strains of Pseudomonas aeruginosa and Acinetobacter baumannii isolated from intensive care units. Int J Antimicrob Agents. 2006;27(3):224-8. 17.Eroğlu C, Ünal N, Karadağ A ve ark. Acinetobacter species isolated from various clinical specimens between 2006-2011 years and their susceptibilities against antibiotics. Journal of Turkish Hygiene and Experimental Biology. 2016;73(1):25-32. 18.Moolchandani K, Sastry AS, Deepashree R, et al. Antimicrobial Resistance Surveillance among Intensive Care Units of a Tertiary Care Hospital in Southern India. J Clin Diagn Res. 2017;11(2):1-7. 19.Lee CR, Lee JH, Park M, et al. Biology of Acinetobacter baumannii: Pathogenesis, Antibiotic Resistance Mechanisms, and Prospective Treatment Options. Front Cell Infect. Microbiol. 2017; 7(55):1-35. 20.Kurtoğlu MG, Opuş A, Kaya M ve ark. Bir Eğitim ve Araştırma Hastanesi’nde klinik örneklerden izole edilen Acinetobacter baumannii suşlarında antibakteriyel direnç (2008-2010). ANKEM Dergisi. 2011;25(1):35-41. 21. Rose WE, Rybak MJ. Tigecycline: first of a new class of antimicrobial agents. Pharmacotherapy. 2006;26(8):1099-1110. 22. Lu CT, Chuang YC, Sun W et al. Nationwide survelliance in Taiwan of the in-vitro activity of tigecycline against clinical isolates of extended-spectrum beta-lactamase-producing Enterobacteriaceae. Int Antimicrob Agents. 2008;32(5):179-83. 23.Falagas ME, Vardakas KZ, Roussos NS. Trimethoprim/sulfamethoxazole for Acinetobacter spp.: areview of current microbiologi¬cal and clinical evidence. Int J Antimicrob Agents. 2015;46(3):231-41.

Common Infections in Intensive Care Units, Gram-negative Microorganisms, Antibiotic Resistance

Yıl 2021, Cilt: 16 Sayı: 1, 35 - 39, 08.02.2021
https://doi.org/10.17517/ksutfd.671762

Öz

Objective: The aim of the study was to determine the distribution of E.coli, K pneumoniae, P.aeruginosa, and A.baumannii strains isolated from various clinical samples of patients hospitalized in intensive care units (ICUs) as well as the drug resistance rates and the change of these rates over the years, thus contributing to rational antibiotic use and prevention of resistance. Material and Methods: The resistance rates of the isolated strains against colistin, tigecycline, meropenem, imipenem, and trimethoprim-sulfamethoxazole were retrospectively analyzed. Identification and antibiotic susceptibility tests of the microorganisms were done using the VITEK 2 Compact and MicroScan WalkAway 96 automated system (microtube dilution for colistin) and evaluated according to the Clinical and Laboratory Standards Institute recommendations. Results: The most common microorganism in ICUs was A. baumannii (52.2%). As hospital infections, 94.1% ventilator-associated pneumonia, 45.2% central venous catheter-related bloodstream infection, and 44% catheter-related urinary system infection were observed. Meropenem, imipenem, and trimethoprim-sulfamethoxazole resistance rates were found to be high in A. baumannii, P. aeruginosa, and K. pneumoniae. The antibiotic with the lowest resistance rate against all microorganisms was colistin. Conclusion: Since the most susceptible antimicrobial agent is colistin, it can be used alone or in combination with other antibiotics, especially against highly drug-resistant strains. For E. coli infections, carbapenems and trimethoprim-sulfamethoxazole can be used in susceptible strains. Starting treatment and following regular surveillance according to the antibiotic susceptibility test results will contribute to the selection of appropriate antibiotic combinations in ICUs and the reduction of resistant microorganisms.

Kaynakça

  • 1. Aydemir Ö, Demiray T, Köroğlu M, ve ark. Yoğun bakım ünitelerinde yatan hastaların endotrakeal aspirat örneklerinden izole edilen bakterilerin tanımlanması ve antibiyotik duyarlılıkları. Online Türk Sağlık Bilimleri Derg. 2016;1(4):1-8. 2. Çetin ES, Kaya S, Pakbaş İ, Demirci M. Yoğun bakım ünitelerinde yatan hastalardan izole edilen mikroorganizmalar ve antibiyotik duyarlılıkları, İnönü Üniversitesi Tıp Fakültesi Dergisi. 2007;14(2):69-73. 3.Nicasio, A.M, Kuti JL and Nicolau DP. The current state of multidrug-resistant gram-negative bacilli in North America. Pharmacotherapy. 2008;28(2):235-49. 4.Falagas ME, Karageorgopoulos DE. Extended-spectrum beta-lactamase-producing organisms. J Hosp Infect. 2009;73(4):345-54. 5.Nordmann P, Cuzon G, Naas T. The real threat of Klebsiella pneumoniae carbapenemase-producing bacteria. Lancet Infect Dis. 2009;9(4):228-36. 6.Vasudevan A, Mukhopadhyay A, Li J, et al. Prediction tool for nosocomial multi-drug resistant gram-negative bacilli infections in critically ill patients prospective observational study. BMC Infect Dis. 2014;25(14):615. 7.Garner JS, Jarvis WR, Emori TG, et al. CDC definitions for nosocomial infections, 1988. Am J Infect Control. 1988;16(3):128-40. 8.Clinical and Laboratory Standards Institute. Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing; Twenty-Third Informational Supplement (M100-S23). Wayne, PA: CLSI 2013:1-205. 9.Çiftçi İH, Çetinkaya Z, Aktepe OC ve ark. Klinik örneklerden izole edilen Pseudomonas aeruginosa suşlarının antibiyotiklere duyarlılıkları. Türk Mikrobiyoloji Cemiyeti Dergisi. 2005;35(2):98-102. 10.Köksal İ. Yoğun bakımda gram pozitif bakteri sorunu. ANKEM Dergisi. 2009;23(2):143-7. 11.Vincent JL, Rello J, Marshall J, et al. International study of the prevalence and outcomes of infection in intensive care units: Results of the European prevalence of infection in intensive care (EPIC II) study. JAMA. 2009;302(21):2323-9. 12.Ak O, Batırel A, Özer S, Çolakoğlu S. Nosocomial infections and risk factors in the intensive care unit of a teaching and research hospital: A prospective cohort study. Med Sci Monit. 2011;17(5):29-34. 13.Köksaldı MV, Evirgen Ö, Yula E ve ark. Mustafa Kemal Üniversitesi Tıp Fakültesi Yoğun bakım ünitesi’nde 2011 yılında sağlık hizmeti ile ilişkili infeksiyonların değerlendirilmesi. ANKEM Dergisi. 2012;26(3):137-42. 14.Yılmaz GR, Çevik MA, Erdinç FŞ, Tüfek N. Nöroloji Yoğun bakım ünitesinde gelişen nozokomiyal infeksiyon risk faktörlerinin değerlendirilmesi. Hastane İnfeksiyonları Dergisi. 2002;6(1):24-31. 15.Paterson DL. Serious infections in the intensive care unit: Pseudomonas aeruginosa and Acinetobacter baumannii. Clin Infect Dis. 2006;43(2):41-2. 16.Timurkaynak F, Can F, Azap OK, Demirbilek M, Arslan H, Karaman SO. In vitro activities of non-traditional antimicrobials alone or in combination against multidrug-resistant strains of Pseudomonas aeruginosa and Acinetobacter baumannii isolated from intensive care units. Int J Antimicrob Agents. 2006;27(3):224-8. 17.Eroğlu C, Ünal N, Karadağ A ve ark. Acinetobacter species isolated from various clinical specimens between 2006-2011 years and their susceptibilities against antibiotics. Journal of Turkish Hygiene and Experimental Biology. 2016;73(1):25-32. 18.Moolchandani K, Sastry AS, Deepashree R, et al. Antimicrobial Resistance Surveillance among Intensive Care Units of a Tertiary Care Hospital in Southern India. J Clin Diagn Res. 2017;11(2):1-7. 19.Lee CR, Lee JH, Park M, et al. Biology of Acinetobacter baumannii: Pathogenesis, Antibiotic Resistance Mechanisms, and Prospective Treatment Options. Front Cell Infect. Microbiol. 2017; 7(55):1-35. 20.Kurtoğlu MG, Opuş A, Kaya M ve ark. Bir Eğitim ve Araştırma Hastanesi’nde klinik örneklerden izole edilen Acinetobacter baumannii suşlarında antibakteriyel direnç (2008-2010). ANKEM Dergisi. 2011;25(1):35-41. 21. Rose WE, Rybak MJ. Tigecycline: first of a new class of antimicrobial agents. Pharmacotherapy. 2006;26(8):1099-1110. 22. Lu CT, Chuang YC, Sun W et al. Nationwide survelliance in Taiwan of the in-vitro activity of tigecycline against clinical isolates of extended-spectrum beta-lactamase-producing Enterobacteriaceae. Int Antimicrob Agents. 2008;32(5):179-83. 23.Falagas ME, Vardakas KZ, Roussos NS. Trimethoprim/sulfamethoxazole for Acinetobacter spp.: areview of current microbiologi¬cal and clinical evidence. Int J Antimicrob Agents. 2015;46(3):231-41.
Toplam 1 adet kaynakça vardır.

Ayrıntılar

Birincil Dil Türkçe
Konular Sağlık Kurumları Yönetimi
Bölüm Araştırma Makaleleri
Yazarlar

Arzu Şenol 0000-0002-8537-0195

Şafak Özer Balın 0000-0002-3722-4660

Yayımlanma Tarihi 8 Şubat 2021
Gönderilme Tarihi 23 Ocak 2020
Kabul Tarihi 23 Aralık 2020
Yayımlandığı Sayı Yıl 2021 Cilt: 16 Sayı: 1

Kaynak Göster

AMA Şenol A, Özer Balın Ş. Yoğun Bakım Ünitelerinde Sık Görülen Enfeksiyonlar, Gram-negatif Mikroorganizmalar, Antibiyotik Direnci. KSÜ Tıp Fak Der. Şubat 2021;16(1):35-39. doi:10.17517/ksutfd.671762