PATATES Y VİRÜSÜ PATOTİPLERİNİN KIRMIZIBİBERİN VERİM VE FOTOSENTEZ KAPASİTESİ ÜZERİNE ETKİLERİ

Year 2016, Volume: 11 Issue: 3, 11 - 18, 14.07.2016

Bekir Bülent Arpacı Nihal Buzkan AYHAN Ak KERİM Karataş FAİKA Yaralı , MEHMET Koç

Abstract

Bu çalışmada Potyviridae familyasına dâhil Patates Y Virüsü (PVY) nün dünyada yaygınlık gösteren (0), (0,1) ve (0,1,2) patotiplerinin Maraş 1 ve Sena kırmızıbiber çeşitlerinin bitki verim ve fotosentez kapasitesi üzerine etkileri araştırılmıştır. Virüs izolatları Maraş 1 ve Sena kırmızıbiber çeşitlerine fide döneminde, mekanik inokülasyon yolu ile bulaştırılmıştır. Deneme sera koşullarında yaprak bitlerinin geçemediği izole örtü materyalleri altında yürütülmüştür. Virüs izolatlarının biber bitkilerinin meyve ağırlığını, meyve verimini ve bitkideki meyve sayısını önemli ölçüde etkilediği görülmüştür. Buna karşın izolatlar, biberde meyve genişliği, meyve uzunluğu ve meyve eti kalınlığı değerlerini etkilememiştir. PVY inokülasyonu yaprak net fotosentez oranını (P_N) değiştirmemiş, stoma direncini (g_s), hücreler arası CO₂ konsantrasyonunu (Ci) ve transpirasyon oranını (E) arttırmıştır. Biber bitkilerinin fotosentez oranını koruyabilmek için bitkinin savunma mekanizması olarak stoma direncini, hücreler arası CO₂ konsantrasyonunu ve transpirasyon oranını arttırdığı tespit edilmiştir.

Keywords

Patates Y Virüsü, Verim, Fotosentez, Stoma Direnci, Biber

References

• Rahoutei, J., Garcia-Luque, I. and Baron, M., (2000). Inhibition of photosynthesis by viral infection: Effect on PSII structure and function. Physiol. Plant. 110:286-292.
• Hamalainen, J.H., Watanabe, K.N. Valkonen, J.P.T., Arihara, A., Plaisted, R.L., Pehu, E., Miller, L., and Slack, S.A., (1997). Mapping and marker- assisted selection of a gene for extreme resistance to potato virüs. Y. Theor. Appl. Genet. 94: 192-197.
• Boonham, N. and Barker, I., (1998). Strain specific recombinant antibodies to potato virüs Y potyvirus. J. Virol Methods, 74:193-199.
• Web-1: http://faostat3.fao.org/download/Q/QC/E, consulted 10 June 2013.
• Moury, B., Pflieger, S., Blattes, A., Lefebvre, V., and Palloix, A., (2000). A CAPS marker to assist selection of tomato spotted wilt virus (TSWV) resistance in pepper. Genome, 43(1), 137-142.
• Agranovsky, A.A., (1993). Virus diseases of pepper (Capsicum annuum L.) in Ethiopia. Journal of Phytopathology, 138(2), 89-97.
• Budnik, K., Laing, M.D., and Da Graca, J.V., (1996). Reduction of yield losses in pepper crops caused by Potato Virus Y in KwaZulu-Natal, South Africa, using plastic mulch and yellow sticky traps. Phytoparasitica, 24(2), 119-124.
• Tsedaley, B., (2015). A Review Paper on Potato Virus Y (PVY) Biology, Economic Importance and its Managements Journal of Biology, Agriculture and Healthcare, 5(9):110
• McDonald, S.A., (2001). Epidemiology, aphid vectors, impact and management of tobacco etch potyvirus in hot peppers in Jamaica. Ph. D. Dissertation. Blacksburg, VA, Virginia Tech.
• Avilla, C., Collar, J.L., Duque, M., and Fereres, A., (1997). Yield of bell pepper (Capsicum annuum) inoculated with CMV and/or PVY at different time intervals. Zeitschrift für Pflanzenkrankheiten und Pflanzenschutz, 104(1):1-8.
• Dombrovsky, A., Glanz, E., Pearlsman, M., Lachman, O., and Antignus, Y., (2010). Characterization of Pepper yellow leaf curl virus, a tentative new Polerovirus species causing a yellowing disease of pepper. Phytoparasitica, 38(5):477-486.
• Ryšlavá, H., Müller, K., Semorádová, Š., Synková, H., and Čeřovská, N., (2003). Photosynthesis and activity of phosphoenolpyruvate carboxylase in Nicotiana tabacum L. leaves infected by Potato virus A and Potato virus Y.Photosynthetica, 41(3):357-363.
• Zhou, Y.H., Peng, Y.H., and Lei, J.L., (2004). Effects of Potato Virus YNTN Infection on Gas Exchange and Photosystem 2 Function in Leaves of Solanum tuberosum L. Photosynthetica, 42(3):417-423.
• Chia, T.F. and He, J., (1999). Photosynthetic capacity in Oncidium (Orchidaceae) plants after virus eradication. Environmental and Experimental Botany, 42(1):11-16.
• Guo, D.P., Guo, Y.P., Zhao, J.P., Liu, H., Peng, Y., Wang, Q.M., Chen, J.S., and Rao, G.Z., (2005). Photosynthetic rate and chlorophyll fluorescence in leaves of stem mustard (Brassica juncea var. tsatsai) after turnip mosaic virus infection.Plant Science, 168(1):57-63.
• Ara, N., Yang, J., Zhongyuan, H.U., and Zhang, M., (2013). Determination of heat tolerance of interspecific (Cucurbita maxima x Cucurbita moschata) inbred line of squash ‘maxchata’ and its parents through photosynthetic response. J. Agri Sci. 19, 188–197.
• Goodman, R.N., Kiraly, Z., and Wood, K.R., (1989). The biochemistry and physiology of plant disease. University of Missouri Press, Columbia, pp 433, ISBN: 0-8262-0349-3.
• Caemmerer, S.V. and Farquhar, G.D., (1981). Some relations between the biochemistry of photosynthesis and the gas exchange of leaves. Planta, 153:376-387.
• Melotto, M., Underwood, W., and He, S.Y., (2008). Role of stomata in plant innate immunity and foliar bacterial diseases. Annual Review of Phytopathology, 46, 101–122.
• Chamnongpol, S., Willekens, H., Moeder, W., Langebartels, C., Sandermann, H.Jr., Van Montagu, M., Inze´ D., and Van Camp, W., (1998). Defense activation and enhanced pathogen tolerance induced by H2O2 in transgenic plants. Proceedings of the National Academy of Sciences, USA 95, 5818–5823.