Farklı Dozlarda Deniz Yosunu Uygulanmış Anadolu Adaçayı (Salvia fruticosa Mill.)’nda Fenolik Madde İçeriği, Antioksidan Kapasite ve Antioksidatif Yanıtlar

Yıl 2022, Cilt: 37 Sayı: 1, 203 - 217, 14.02.2022

Ruveyde Yılmaz Aysegul Akpınar , Asuman Cansev

https://doi.org/10.7161/omuanajas.999463

Öz

Doğal ve zengin besin içeriği nedeniyle tarımda deniz yosunu uygulamalarına olan ilgi gün geçtikçe artmaktadır. Bu nedenle deniz yosunu uygulamalarının kullanım alanı ve dozları ile ilgili çalışmaların yaygınlaştırılmasına ihtiyaç duyulmaktadır. Özellikle adaçayı gibi tıbbi ve aromatik bitkiler sınıfına giren bitki türlerinde doğal içerikli ürünlerin kullanımı önemlidir. Anadolu adaçayı (Salvia fruticosa Mill.), diğer adaçayı türleri içerisinde fenolik madde içeriği ve antioksidan kapasitesi yüksek olan türlerden biridir. Bu kapsamda çalışmamızda Anadolu adaçayı (Salvia fruticosa Mill.) bitkisinde farklı dozlarda (SW-1: 0.25 g/L, SW-2: 0.5 g/L, SW-3: 1 g/L ve SW-4: 2 g/L) deniz yosunu uygulamalarına bağlı olarak toplam fenolik madde içeriği, antioksidan kapasite ve antioksidatif enzim (SOD ve CAT) yanıtları incelenmiştir. Çalışma sonuçlarına göre 1 g/L deniz yosunu uygulamasının Anadolu adaçayı (Salvia fruticosa) bitkilerinde stres oluşturmadığı ve aynı zamanda toplam fenolik madde içeriği ve antioksidan kapasite bakımından istatistiksel olarak anlamlı sonuçlar verdiği gözlenmiştir. Bundan sonraki çalışmalarda, farklı deniz yosunu içeriklerinin Anadolu adaçayı (Salvia fruticosa) bitki türü üzerindeki etkileri, çeşitli dozlar ve uygulama şekilleri denenerek çalışmaların detaylandırılması önerilmiştir.

Anahtar Kelimeler

Deniz yosunu, Anadolu adaçayı, Antioksidatif metabolizma

Destekleyen Kurum

Bursa Uludağ Üniversitesi

Proje Numarası

FHZP-2021-499

Teşekkür

Bu çalışma Bursa Uludağ Üniversitesi BAP Koordinatörlüğü tarafından desteklenmiştir (Proje No: FHZP-2021-499) ve ‘Anadolu adaçayı (Salvia fruticosa Mill.) bitkisinde deniz yosunu uygulamalarının meydana getirdiği metabolik etkilerin belirlenmesi’ isimli yüksek lisans tez çalışmasının bir kısmını oluşturmaktadır.

Kaynakça

• Acıbuca, V., Budak, D. 2018. Dünya ’ da ve Türkiye ’ de Tıbbi ve Aromatik Bitkilerin Yeri ve Önemi. Çukurova Tarım Gıda Bilimleri Dergisi, 33(1): 37–44.
• Apak, R., Güçlü, K., Özyürek, M., Çelik, S.E. 2008. Mechanism of antioxidant capacity assays and the CUPRAC (cupric ion reducing antioxidant capacity) assay. Microchim Acta, 160: 413–419
• Ardıç, M., Sekmen, A.H., Türkan, I., Tokur, S., Ozdemir, F. 2009. The Effects of Boron Toxicity on Root Antioxidant Systems of Two Chickpea (Cicer arietinum L.) Cultivars. Plant Soil, 314: 99-108.
• Beuchamp, C., Fridovich, I. 1971. Superoxide dismutase; improved assays and an assay applicable to acrylamide gels, Anal. Biochem., 44: 276-287.
• Boskou, G., Salta, F. N., Chrysostomou, S., Mylona, A., Chiou, A., Andrikopoulos, N. K. 2006. Antioxidant capacity and phenolic profile oftable olives from the Greek market. Food Chemistry, 94: 558-564.
• Bozan, B., Ozturk, N., Kosar, M., Tunalier, Z., Baser, K.H.C. 2002. Antioxidant and free radical scavenging activities of eight Salvia species, Chem. Nat. Compd., 38: 198-200.
• Bradford, M.M. 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding, Anal. Biochem., 72: 248-254.
• EL Boukhari, M. EL M., Barakate, M., Bouhia, Y., Lyamlouli, K. 2020. Trends in Seaweed Extract Based Biostimulants: Manufacturing Process and Beneficial Effect on Soil-Plant Systems. Plants, 9: 359
• Frioni, T., Sabbatini, P., Tombesi, S., Norrie,J., Poni, S., Gatti, M., Palliotti, A. 2018. Effects of a biostimulant derived from the brown seaweed Ascophyllum nodosum on ripening dynamics and fruit quality of grapevines. Scientia Horticulturae 232: 97-106.
• Huang D., Ou B., Prior R.L. 2005. The Chemistry Behind Antioxidant Capacity Assays, J. Agric. Food Chem., 53: 1841-1856.
• Karık, Ü., Sağlam A. C., Kürkçüoğlu, M. 2013. Güney Marmara Florasındaki Adaçayı (Salvia tomentosa Mill.) Populasyopnlarının Bazı Morfolojik ve Kalite Özellikleri. Anadolu, J. of AARI, 23 (2): 9-20.
• Kumar, N. A., Vanlalzarzova, B., Sridhar, S., Baluswami, M. 2012. Effect of liquid seaweed fertilizer of Sargassum wightii G. on the growth and biochemical content of green gram (Vigna radiata (L.) R. wilczek). Recent Research in Science and Technology, 4(4): 40-45.
• Lester, C., Moller, N., Hammerum, A. 2004. Conjugal Transfer of Aminoglycoside and Macrolide Resistance between Enterococcus faecium Isolates in The Intestine of Streptomycin-Treated Mice. Feems Microbiol. Lett, 235: 385-391
• Michalak, A. 2006. Phenolic Compounds and Their Antioxidant Activity in Plants Growing under Heavy Metal Stress. Polish J. of Environ. Stud., 15(4): 523-530
• Pellegrini, N., Serafini, M., Colombi, B., Del Rio, D., Salvatore, S., Bianchi, M., Brighenti, F. 2003. Total antioxidant capacity of plant foods, beverages and oils consumed in Italy assessed by three different in vitro assays, J. Nutr., 133: 2812–2819.
• Rathore, S.S., Chaudhary, D.R., Boricha, G.N., Ghosh, A., Bhatt, B.P., Zodape, S.T., Patolia, J.S. 2009. Effect of seaweed extract on the growth, yield and nutrient uptake of soybean (Glycine max) under rainfed conditions, South African Journal of Botany,75(2): 351-355.
• Scalzo, R.L. 2008. Organic acids influence on DPPH scavenging by ascorbic acid, Food Chem., 107: 40–43.
• Shafie, F., Bayat, H., Hossein Aminifard, M., Daghighi, S. 2021. Biostimulant Effects of Seaweed Extract and Amino Acids On Growth, Antioxidants, and Nutrient Content of Yarrow (Achilleamillefolium L.) In the Field and Greenhouse Conditions, Communications in Soil Science and Plant Analysis, 52(9): 964-975
• Shukla, P.S., Mantin, E.G., Adil, M., Bajpai, S., Critchley, A.T., Prithiviraj, B. 2019. Ascophyllum nodosum-Based Biostimulants: Sustainable Applications in Agriculture for the Stimulation of Plant Growth, Stress Tolerance, and Disease Management. Front. Plant Sci. 10, 655.
• Sindhi, V., Gupta, V., Sharma, K., Bhatnagar, S., Kumari, R., Dhaka, N. 2013. Potential applications of antioxidants – A review. Journal of Pharmacy Research, 7(9): 828–835.
• Somogyi, A., Rosta, K., Pusztai, P., Tulassay Z., Nagy, G. 2007. Antioxidant measurements, Physiol. Meas., 28: R41–R55.
• Şenol, F.S., Orhan, I., Celep, F., Kahraman, A., Doğan, M., Yılmaz, G., Şener, B. 2010. Survey of 55 Turkish Salvia taxa for their acetylcholinesterase inhibitory and antioxidant activities. Food Chemistry, 120(1); 34-43
• Tusevski, O., Kostovska, A., Iloska, A., Trajkovska, L., Gadzovska Simic, S. 2014. Phenolic production and antioxidant properties of some Macedonian medicinal plants. Cent. Eur. J. Biol. , 9(9), 888-900.
• Turkan, Ş., Malyer, H., Aydın, S.Ö., Tümen, G. 2006. Ordu İli ve Çevresinde Yetişen Bazı Bitkilerin Etnobotanik Özellikleri. Süleyman Demirel Üniversitesi, Fen Bilimleri Enstitüsü Dergisi., vol. 10, no. 2, p. 162-166.
• Xu, J., Wang, W., Yin, H., Liu, X., Sun, H., Mi, Q. 2010. Exogenous nitric oxide improves antioxidative capacity and reduces auxin degradation in roots of Medicago truncatula seedlings under cadmium stress. Plant and Soil, 321-326.
• Vitali, D., Vedrina Dragojevic, I., Sebecic, B. 2009. Effects of incorporation of integral raw materials and dietary fibre on the selected nutritional and functional properties of biscuits. Food Chemistry, 114: 1462-1469.