Hastane İçme ve Kullanma Sularının Mikrobiyolojik Analizi; Sakarya

Abstract

Amaç: Bu çalışmada hastane içme, kullanma suyu ve sürüntü örnekleri mikrobiyolojik yönden incelenerek, risk oluşturup oluşturmadığı araştırıldı.

Materyal ve Metot: Araştırmamızda 40 farklı içme ve kullanma suyu başlıklarından alınan su ve sürüntü örnekleri ayrı ayrı olarak farklı yöntemlerle incelendi. Su örneklerinin mikrobiyolojik analizleri için membran filtrasyon yöntemi ve sürüntü örnekleri için tek koloni düşürme ekim yöntemi kullanıldı. Ayrıca çalışmada kullanılan besiyerlerinde üreyen mikroorganizmalar MALDI-TOF MS ile identifiye edildi.

Bulgular: Alınan su ve sürüntü örneklerinin kültürü neticesinde; E. coli, diğer koliform grubu bakteriler, Enterokok ve Legionella spp. üremesi saptanmadı. Bunun dışındaki mikroorganizmaların sürüntü örneklerindeki üreme oranları; %22,5 Staphylococcus spp., %5 Bacillus spp., %10 M. luteus, %10 Küf ve maya ve %2,5 P. oryzihabitans’tır. İncelenen su örneklerindeki mikroorganizmaların üreme oranları sırasıyla; %15 Staphylococcus spp., %15 Bacillus spp. ve %5 Acinetobacter spp. şeklindedir.

Sonuç: Hastanelerde içme ve kullanma suyu sürüntü örneklerinde fırsatçı patojen bakterilerin izole edilmesi özellikle immünitesi zayıf hastalarda risk oluşturması açısından önemlidir. Bu çalışmada hastanemiz içme ve kullanma sularının Koliform grubu bakteriler, E. coli, Enterokok ve Legionella spp bakterileri açısından risk oluşturmadığı görülmüştür. Fakat hastanemizde yaptığımız analizde fırsatçı patojen bakterilerin izole edilmesi önem arz etmektedir. Bu fırsatçı patojenlerin özellikle immündüşkün hastalarda sağlık sorunlarına neden olabileceği göz ardı edilmemelidir.

ndüşkün hastalarda önemli sağlık sorunlarına neden olabileceği göz ardı edilmemelidir.

Keywords

• : E. coli
• Enterokok
• Hastane içme suyu
• Hastane kullanma suyu
• Koliform grubu bakteriler

Microbiological Analysis of Hospital Drinking and Usage Water; Sakarya

Abstract

Objective: In this study, the microbiological aspects of hospital water and swabs were examined and it was investigated whether they pose a risk.

Materials and Methods: Water and swabs from 40 different drinking water heads were used as materials in our research. Membrane filtration method for microbiological analysis of water samples and single colony dropping method for swab samples were used. In addition, microorganisms grown in medium used in the study were identified with MALDI-TOF MS.

Results: As a result of the culture of water and swab samples; production of coliform group bacteria, E.coli, Enterococcus spp. and Legionella spp. were not detected. Producing rates of microorganisms identified with MALDI-TOF MS in swab specimens were; 22.5% Staphylococcus spp., 5% Bacillus spp., 10% M. luteus and 10% mold&yeast. Reproduction rates in drinking water samples; 15% Staphylococcus spp., 15% Bacillus spp. and 5% Acinetobacter spp.

Conclusion: It can be said drinking water of hospital doesn’t pose risk for health workers and patients in terms of Coliform group bacteria, E.coli, Enterococcus and Legionella spp. However, it’s important to isolate opportunistic pathogenic bacteria in drinking water and swab samples of hospital. It shouldn’t be ignored that these opportunistic pathogens can pose a risk. 

Keywords

• Coliform group bacteria
• E. coli
• Enterococcus
• Hospital drinking water
• Hospital usage water

References

1. Ağaoğlu S, Ekici K, Alemdar S. Van ve yöresi kaynak sularının mikrobiyolojik, fiziksel ve kimyasal kaliteleri üzerine araştırmalar. Van Tıp Dergisi 1999;6(2):30-33.
2. Hapçıoğlu B, Yeğenoğlu Y, Erturan Z, Nakipoğlu Y. Bir hastanenin çeşitli birimlerine ait su dağıtım sistemlerinden izole edilen mikroorganizmalar. Türk Mikrobiyol. Cem. Derg. 2004;34(1):56-61.
3. Avcı S, Bakıcı ZM, Erendaç M. Tokat ilindeki içme sularının koliform grubu bakteriler yönünden araştırılması. C. Ü. Tıp Fakültesi Dergisi. 2006;28(4):107-112.
4. Alemdar S, Kahraman T, Ağaoğlu S, Alişarlı M. Bitlis ili içme sularının bazı mikrobiyolojik ve fizikokimyasal özellikleri. Ekoloji. 2009;19(73):29-38.
5. Anar Ş, Günşen U. Bursa il merkezindeki içme ve kullanma sularının hijyenik kalitesi. SDÜ Tıp Fakültesi Dergisi. 2000;77(1):31-33.
6. İnsani Tüketim Amaçlı Sular Hakkında Yönetmelik 2005. https://www.resmigazete.gov.tr./eskiler/2005/02/20050217-3.html. Erişim tarihi 15 Mart 2016.
7. Lejyoner hastalığı kontrol usul ve esasları hakkındaki yönetmelik 2015. https://www.resmigazete.gov.tr/eskiler/2015/05/20150513-4.html. Erişim tarihi 17 Mart 2016.
8. Ankara Halk Sağlığı Laboratuvarı. Su Analizi Numune Alma Rehberi 2019. http://www.ahsl.gov.tr/index.php/numune-alma-rehber.html. Erişim tarihi 23 Mart 2017.

9. Çelik H, Ötgün SN, Topal S. Lejyoner Hastalığı Kontrol Programı Rehberi Türkiye Halk Sağlığı Kurumu. Sağlık Bakanlığı Yayını, Ankara; 2016.
10. Alişarlı M, Ağaoğlu S, Alemdar S. Van bölgesi içme ve kullanma sularının mikrobiyolojik kalitesinin halk sağlığı yönünden incelenmesi, Yüzüncü Yıl Üniversitesi Veterinerlik Fakültesi Dergisi. 2007;18(1):67-77.
11. Türk Standardı. Su kalitesi-E. coli ve Koliform bakterilerin tespiti ve sayımı-Bölüm1: Membranla süzme yöntemi 2005. https://intweb.tse.org.tr/Standard/. Erişim tarihi 20 Mart 2016.
12. Nishiyama M, Iguchi A, Suzuki, Y. Identification of Enterococcus faecium and Enterococcus faecalis as vanC-type vancomycin-resistant enterococci (VRE) from sewage and river water in the provincial city of Miyazaki, Japan. Journal of Environmental Science and Health, Part A. 2015;50(1):16-25.
13. Delgado-Viscogliosi P, Simonart T, Parent V, et al. Rapid method for enumeration of viable Legionella pneumophila and other Legionella spp. in water. Applied and Environmental Microbiology. 2005;71(7):4086-4096.
14. Yılmaz S, Duyan S, Artuk C, Diktaş H. Mikrobiyolojik tanımlamada MALDI-TOF MS uygulamaları. TAF Prev Med Bull. 2004;13(5):421-426.
15. Önal EA, Gürtekin B, Ayvaz Ö, ve ark. Hastane mutfaklarında hava, su ve çalışanların dışkılarının mikrobiyolojik incelenmesi. İst Tıp Fak Derg. 2013;76(4):61-71.
16. Anaissie EJ, Penzak SR, Dignani MC. The hospital water supply as a source of nosocomial infections: a plea for action. Arch Intern Med. 2002;162:1483-1492.
17. Yaslianifard S, Mobarez AM, Fatolahzadeh B, Feizabadi MM. Colonization of hospital water systems by Legionella pneumophila, Pseudomonas aeroginosa, and Acinetobacter spp. in ICU wards of Tehran hospitals. Indian J Pathol Microbiol. 2012;55(3):352-356.
18. Baghal AF, Nikaeen M, Mirhendi H. Rapid monitoring of Pseudomonas aeruginosa in hospital water systems: a key priority in prevention of nosocomial infection. FEMS Microbiol Lett. 2013;343(1):77-81.
19. Ferranti, Marchesi I, Favale M, Borella P, Bargellini A. Aetiology, source and prevention of waterborne healthcare-associated infections: A review. J Med Microbiol. 2014;63(10):1247-1259.
20. Palmore TN, Stock F, White M et al. A cluster of cases of nosocomial legionnaires disease linked to a contaminated hospital decorative water fountain. Infect Control Hosp Epidemiol. 2009;30(8):764-768.
21. Chien ST, Hsueh JC, Lin HH et al. Epidemiological investigation of a case of nosocomial Legionnaires' disease in Taiwan: İmplications for routine environmental surveillance. Clin Microbiol Infect. 2010;16(6):761-763.
22. Chaudhry R, Sreenath K, Arvind V, Vinayaraj EV, Tanu S. Legionella pneumophila serogroup 1 in the water facilities of a tertiary healthcare center, India. Emerg Infect Dis. 2017;23(11):1924-1925.
23. Center Disease Control and Prevention. https://www.cdc.gov/legionella/about/history.html. Erişim tarihi 28 Haziran 2018.
24. Woo KS, Choi JL, Kim BR, et al. Outbreak of Pseudomonas oryzihabitans pseudobacteremia related to contaminated equipment in an emergency room of a tertiary hospital in Korea. Infect Chemother. 2014;46(1):42–44.
25. Bilgin H, Sarmis A, Tigen E, ve ark. Delftia acidovorans: A rare pathogen in immunocompetent and immunocompromised patients. Can J Infect Dis Med Microbiol. 2015;26(5):277–279.
26. Dortet L, Legrand P, Soussy CJ, Cattoir V. Bacterial identification, clinical significance, and antimicrobial susceptibilities of Acinetobacter ursingii and Acinetobacter schindleri, two frequently misidentified opportunistic pathogens. J. Clin. Microbiol. 2006;44(12):4471-4478.
27. Tian S, Ali M, Xie L, Li L. Genome-sequence analysis of Acinetobacter johnsonii MB44 reveals potential nematode-virulent factors. Springerplus. 2016;5(1):986. doi:10.1186/s40064-016-2668-5
28. Montana S, Schramm STJ, Traglia GM, et al. The genetic analysis of an Acinetobacter johnsonii clinical strain evidenced the presence of horizontal genetic transfer. PLoS One. 2016;11(8):e0161528. doi:10.1371/journal.pone.0161528
29. Montana S, Palombarani S, Carulla M, et al. First case of bacteraemia due to Acinetobacter schindleri harbouring blaNDM-1 in an immunocompromised patient. New Microbes New Infect. 2018;21:28–30.
30. Riegel P, Heller R, Prevost G, Jehl F, Monteil H. Corynebacterium durum from human clinical specimens. International Journal of Systematic Bacteriology. 1997;47(4):1107-1111.