Enfektif hastalarda F-18 FDG ile lökosit işaretlemede insülinin ve glukagonun bağlanma etkinliği üzerindeki etkisi
Abstract
Amaç: Enfeksiyon tanısında
F-18 FDG ile lökosit işaretleme yaparak PET/BT cihazında görüntüleme henüz
rutin pratiğe girmemekle birlikte üzerinde bir süredir çalışılmaktadır. Ancak F-18
FDG ile lökositlerin bağlanma etkinliği düşük düzeyde kalmaktadır. Biz
çalışmamızda, enfeksiyon ön tanılı hastalarda insülin ve glukagon kullanımının
F-18 FDG ile lökosit işaretleme üzerindeki etkisini belirlemeyi amaçladık.
Gereç ve Yöntem: Enfeksiyon
ön tanısı ile başvuran 7 gönüllü çalışmaya dahil edildi. Gönüllülerin açlık kan şekeri 80-120 mg/dl arasında idi. Gönüllülerden alınan 20 ml
venöz kandan lökositler izole edildi. Oda ısısında inkübe edilen ve 2 mCi F-18
FDG ile işaretlenen 3 grup oluşturuldu. Grupların birine 10 IU kristalize
insülin, ikincisine 0,1 mg glukagon ilave edildi. Son gruba ise herhangi bir
şey eklenmedi. Her grup için elde edilen materyal santrifüj edilerek bağlı
lökositlerin çökmesi sağlandı. Bağlı olan ve bağlı olmayan komponent
aktiviteleri ayrı ayrı ölçülerek total aktivite elde edildi. Bağlı komponent
aktivitesi total aktiviteye bölünerek bağlanma yüzdesi hesaplandı. Elde edilen veriler, SPSS 25.0 (IBM SPSS Statistics 25
software Armonk, NY: IBM Corp.)
paket programıyla analiz edildi. Değişkenlerin ortalama±standart
deviasyon, ortanca (minimum-maksimum) değerleri elde edildi. (p<0,05) değerler istatistiksel olarak anlamlı
olarak değerlendirildi.
Bulgular: F-18 FDG işaretli lökosit bağlanma yüzdeleri
insülinli, glukagonlu ve hiç birşey eklenmeyen gruplarda sırasıyla %31.57(±%5,9), %30(±%6,2) ve %27.57(±%4,3) olarak bulundu. Her 3
grubun bağlanma yüzdeleri arasında istatistiksel açıdan anlamlı fark saptanmadı
(p=0,418).
Sonuç: F-18 FDG ile lökosit işaretleme,
enfeksiyon tanısında kullanılması mümkün olan bir yöntem olup, invitro
işaretleme esnasında insülin ve glukagon kullanımı bağlanma etkinliğini
değiştirmemektedir.
References
- 1. Becker W, Meller J. The role of nuclear medicine in infection and inflammation. Lancet Infect Dis 2001;1:326-333.2. Jamar F, Buscombe J, Chiti A, et al. EANM/ SNMMI guideline for 18F-FDG use in inflammation and infection. J Nucl Med 2013;54:647-658.3. Sugawara Y, Gutowski TD, Fisher SJ, Brown RS, Wahl RL. Uptake of positron emission tomography tracers in experimental bacterial infections: a comparative biodistribution study of radiolabeled FDG, thymidine, L-methionine, 67Ga citrate and 125I-HSA. Eur J Nucl Med 1999;26:333–341.4. Bleeker-Rovers CP, de Kleijn EM, Corstens FH, van der Meer JW, Oyen WJ. Clinical value of FDG PET in patients with fever of unknown origin and patients suspected of focal infection or inflammation. Eur J Nucl Med Mol Imaging 2004;31:29–37.5. Osman S, Danpure HJ. The use of 2-[18F]Fluoro-2-deoxyD-glucose as a potential in vitro agent for labelling human granulocytes for clinical studies by positron emission tomography. Int J Rad Appl Instrum B 1992;19:183-190. 6. Lehmann K, Meller J, Behe M, Becker W. F-18-FDG uptake in granulocytes: basis of F-18-FDG scintigraphy [abstract]. Nuklearmedizin 2001;40:168.7. Bhargava KK, Gupta RK, Nichols KJ, Palestro CJ. In vitro human leukocyte labeling with (64)Cu:an intraindividual comparison with (111)In-oxine and (18)F-FDG. Nucl Med Biol 2009;36:545–549.8. Forstrom LA, Dunn WL, Mullan BP, Hung JC, Lowe VJ, Thorson LM. Biodistribution and dosimetry of [18F] fluorodeoxyglucose labeled leukocytes in normal human subjects. Nucl Med Commun 2002;23:721–725.9. Maratou E, Dimitriadis G, Kollias A, et al. Glucose transporter expression on the plasma membrane of resting and activated white blood cells. Eur J Clin Invest 2007;37:282-290.10. Gotthardt M, Bleeker-Rovers CP, Boerman OC, Oyen WJ. Imaging of inflammation by PET, conventional scintigraphy, and other imaging techniques. J Nucl Med Technol 2013;41:157-169.11. Jamar F, Buscombe J, Chiti A, et al. EANM/ SNMMI guideline for 18F-FDG use in inflammation and infection. J Nucl Med 2013;54:647-658.12. Williamson MK, Coombes N, Juszczak F, et al. Upregulation of glucose uptake and hexokinase activity of primary human CD4+ T cells in response to infection with HIV-1. Viruses 2018;10:114.13. Paik JY, Lee KH, Byun SS, Choe YS, Kim BT. Use of insulin to improve [18F] fluorodeoxyglucose labelling and retention for in vivo positron emission tomography imaging of monocyte trafficking. Nucl Med Commun 2002;23:551-557.14. Forstrom LA, Mullan BP, Hung JC, Lowe VJ, Thorson LM. 18-FDG labeling of human leukocytes. Nucl Med Commun 2000;21:691-694.15. Moon SH, Lee HY, Eo JS, et al. Use of granulocyte colony-stimulating factor for fluorine-18-fluorodeoxyglucose labeling in human leukocytes. Nucl Med Commun 2011;32:186-191.
Abstract
References
- 1. Becker W, Meller J. The role of nuclear medicine in infection and inflammation. Lancet Infect Dis 2001;1:326-333.2. Jamar F, Buscombe J, Chiti A, et al. EANM/ SNMMI guideline for 18F-FDG use in inflammation and infection. J Nucl Med 2013;54:647-658.3. Sugawara Y, Gutowski TD, Fisher SJ, Brown RS, Wahl RL. Uptake of positron emission tomography tracers in experimental bacterial infections: a comparative biodistribution study of radiolabeled FDG, thymidine, L-methionine, 67Ga citrate and 125I-HSA. Eur J Nucl Med 1999;26:333–341.4. Bleeker-Rovers CP, de Kleijn EM, Corstens FH, van der Meer JW, Oyen WJ. Clinical value of FDG PET in patients with fever of unknown origin and patients suspected of focal infection or inflammation. Eur J Nucl Med Mol Imaging 2004;31:29–37.5. Osman S, Danpure HJ. The use of 2-[18F]Fluoro-2-deoxyD-glucose as a potential in vitro agent for labelling human granulocytes for clinical studies by positron emission tomography. Int J Rad Appl Instrum B 1992;19:183-190. 6. Lehmann K, Meller J, Behe M, Becker W. F-18-FDG uptake in granulocytes: basis of F-18-FDG scintigraphy [abstract]. Nuklearmedizin 2001;40:168.7. Bhargava KK, Gupta RK, Nichols KJ, Palestro CJ. In vitro human leukocyte labeling with (64)Cu:an intraindividual comparison with (111)In-oxine and (18)F-FDG. Nucl Med Biol 2009;36:545–549.8. Forstrom LA, Dunn WL, Mullan BP, Hung JC, Lowe VJ, Thorson LM. Biodistribution and dosimetry of [18F] fluorodeoxyglucose labeled leukocytes in normal human subjects. Nucl Med Commun 2002;23:721–725.9. Maratou E, Dimitriadis G, Kollias A, et al. Glucose transporter expression on the plasma membrane of resting and activated white blood cells. Eur J Clin Invest 2007;37:282-290.10. Gotthardt M, Bleeker-Rovers CP, Boerman OC, Oyen WJ. Imaging of inflammation by PET, conventional scintigraphy, and other imaging techniques. J Nucl Med Technol 2013;41:157-169.11. Jamar F, Buscombe J, Chiti A, et al. EANM/ SNMMI guideline for 18F-FDG use in inflammation and infection. J Nucl Med 2013;54:647-658.12. Williamson MK, Coombes N, Juszczak F, et al. Upregulation of glucose uptake and hexokinase activity of primary human CD4+ T cells in response to infection with HIV-1. Viruses 2018;10:114.13. Paik JY, Lee KH, Byun SS, Choe YS, Kim BT. Use of insulin to improve [18F] fluorodeoxyglucose labelling and retention for in vivo positron emission tomography imaging of monocyte trafficking. Nucl Med Commun 2002;23:551-557.14. Forstrom LA, Mullan BP, Hung JC, Lowe VJ, Thorson LM. 18-FDG labeling of human leukocytes. Nucl Med Commun 2000;21:691-694.15. Moon SH, Lee HY, Eo JS, et al. Use of granulocyte colony-stimulating factor for fluorine-18-fluorodeoxyglucose labeling in human leukocytes. Nucl Med Commun 2011;32:186-191.
Details
| Primary Language | Turkish |
|---|---|
| Subjects | Radiology and Organ Imaging |
| Journal Section | Research Article |
| Authors | |
| Publication Date | September 30, 2019 |
| Submission Date | July 28, 2019 |
| Acceptance Date | August 22, 2019 |
| Published in Issue | Year 2019 Volume: 12 Issue: 3 |
Cite
