Sazan Balığı (Cyprinus carpio) Yüzgeçlerindeki Bazı Hücrelerin Glikokonjugat İçerikleri

Yıl 2013, Cilt: 32 Sayı: 1, 1 - 6, 01.06.2013

Kenan Çınar Seval Türk Öznur Önal

Öz

This study was aimed to determined glycoconjugate contens of mucus, club, granular and epithelial surface cells in the fin (dorsal, pectoral, pelvic, anal and caudal) of carp (Cyprinus carpio). The samples were fixed in 10% formaldehyde solution for two nights. The samples which were excised and processed with routine histologic tissue methods were blocked in paraffin. Paraffin blocks were applied histochemical staining methods for determining the properties glycoconjugate and hematoxylin-eosin for histological determination of the overall structure were taken from 6–7μm thick sections. The observed results, club cells were detected that iclude only asidic glycoconjugate in pelvic, pectoral, anal and dorsal fins, as for not include this glycoconjugate in caudaul fin. Also, granular cells were determined that include generally neutral glycoconjugate all of fin.

Anahtar Kelimeler

Carp, Fin, Glycoconjugate.

Sazan Balığı (Cyprinus carpio) Yüzgeçlerindeki Bazı Hücrelerin Glikokonjugat İçerikleri

Öz

Bu çalışmada Sazan balığı (Cyprinus carpio) yüzgeçlerindeki (dorsal, pektoral, pelvik, anal ve kaudal) mukus, club, granular, yüzey epitel hücrelerin glikokonjugat içeriklerinin belirlenmesi amaçlandı. Dokular %10’luk formaldehit solüsyonunda iki gece tespit edildi. dokular rutin histolojik takipten geçirilerek parafinde bloklandı. Parafin bloklardan 6–7μm kalınlığında alınan kesitlere genel histolojik yapının belirlenmesi için Hematoksilen-Eosin ve gikokonjugat özelliklerinin belirlenmesi için histokimyasal boyama yöntemleri uygulandı. Gözlenen sonuçlar club hücrelerin pelvik, pektoral, anal ve dorsal yüzgeçlerde sadece asidik glikokonjugat içerdiği, kaudal yüzgeçte ise herhangi bir boyama yöntemine karşı reaksiyon göstermediği tespit edildi. Granular hücrelerin de bütün yüzgeçlerde genellikle nötral glikokonjugat içerdiği belirlendi.

Anahtar Kelimeler

Sazan, Yüzgeç, Glikokonjugat.

Kaynakça

• Demir, N. 2006. İhtiyoloji (Karataş, M.). Nobel Yayın Dağıtım, Ankara, pp. 195-204.
• Bat, L., Erdem, Y., Ustaoğlu Tırıl, S., Yardım, Ö., 2008. Balık Sistematiği. Balıkta deri. Nobel Yayın Dağıtım. Ankara, pp. 26-27.
• Whitear, M., 1986. The skin of fishes including cyclostomes. In “Biology of the integument. Vol. 2 Vertebrates” (J. Bereiter-Hahn, A.G. Matoltsy and K.S.Richards, eds), Springer-Verlag, Berlin, pp. 8-64.
• Buchman, K., 1998. Histochemical characteritics of Gyrodactylus derjavini parasitizing the fins of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Folia Parasitologica, 45, 312–318.
• Zaccone, G., Kapoor, B.G., Fasulo, S., Ainis, L., 200 Structural, Histochemical and Functional Aspects of the Epidermis of Fishes. Advances in Marine Biology, pp. 40. Zaccone, G., 1983. Histochemical studies of acid proteoglycans and glycoproteins and activities of hydrolytic and oxidoreductive enzymes in the skin epidermis of the fish Blennius sanguinolentus pallas. Histochem Cell Bio, 78, 2, 163-175.
• Ekingen, G., 2001. Balık anatomisi. Mersin Üniversitesi Su Ürünleri Fakültesi Yayınları, No: 1, Mersin, pp. 254.
• Demir, N., 2009. İhtiyoloji (Karataş, M.). 4. Baskı, Nobel Yayın Dağıtım, Ankara, pp. 424.
• Sarıhan, E., Cengizler, İ., 2006. Temel balık anatomisi ve fizyolojisi. Çukurova Üniversitesi Su Ürünleri Fakültesi, Nobel kitabevi, Adana, pp. 1
• Timur, G., 2008. Balık anatomisi. Nobel yayınevi, Ankara, pp. 112.
• Culling, C.F.A., Reid, P.E., Dunn, W.L., 1976. A new histochemical method for the identification and visualization of both side chain acylated and non-acylated sialic acids. Journal of Histochemistry and Cytochemistry, 24, 1225–1230.
• McManus, J.F.A., 1948. Histological and histochemical uses of periodic acid. Stain Technology, 23, 99-108.
• Lev, R., Spicer, S.S., 1964. Specific staining of sulphate groups with alcian blue at low pH. Journal of Histochemical Cytochemical, 12, 309.
• Mowry, R.W., 1956. Alcian blue tecniques for the histochemical study of acidic carbohydrates. Journal of Histochemical Cytochemical, 4, 407– 40
• Gomari, G., 1952. Gomari’s aldehyde fuchsin stain. In: Cellular Pathology Tecnique (C.F.A. Culling, R.T. Allison and W.T. Barr, eds), Butterworths, London, p. 238.
• Spicer, S.S., Mayer, D.R., 1960. Aldehyde fuchsin/Alcian blue. In: Cellular Pathology Tecnique (C.F.A. Culling, R.T. Allison and W.T. Barr, eds), Butterworths, London, pp. 233.
• Eastman, J.T., Hikida, R.S., 1991. Skin structure and vascularization in the Antarctic Nototheniois fish Gymnodraco acuticeps. Journal of Morphology, 208, 347–365.
• Kelek, S., Çınar, K., Çimenoğlu, N., 2010. Kadife balığı (Tinca tinca L. 1758)’nın bazı yüzgeçlerindeki mukus hücrelerinin histokimyasal karakterleri. MAKUFEBED, 2, 97-110
• Mari-Beffa, M., Santamaria, J.A., FernandezLiebrez, P., Becerra, J., 1996. Histochemically defined cell states during tail fin regeneration in teleost fishes, Differentiation, 60,3, 139-149.
• Buchmann, K., Bresciani, J., Jappe, C., 2004. Effects of formalin treatment on epithelial structure and mucous cell densities in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum), skin. Journal of Fish Diseases, 27, 99-104.