Bacterial Infections and Antibiogram Results of Farm, Pet and Other Some Animals in the Aegean Region

Abstract

In this work, bacterial agents and anitibotic susceptibility patterns isolated from samples belonging to cattle, sheep, goats, avian species, fish, cat, dog and alternative species (deer, ibex etc. ) sent to the laboratory from different provinces of Aegean region for diagnostic purposes between 2013 and 2014 are reported. Various Gram positive and negative bacteria were isolated and florfenicol was determined to be the most effective antibiotic for bacterial infections in many animal species. Bacterial isolates were found to be least susceptible to oxytetracycline and sulfamethoxazole+trimethoprim. 

Keywords

• Farm animals,cats,dogs,bacterial infections,disc diffusion method

References

1. Anonim 1: Antibiotic-resistant infections cost the US healthcare system in excess of $20 billion annually [press release]. Boston, MA: Alliance for the Prudent Use of Antibiotics and bioMérieux; October 19, 2009. http://www.prnewswire.com/news-releases/antibiotic-resistant-infections-cost-the-us-healthcare-system-in-excess-of-20-billion-annually-64727562.html. Accessed February 14, 2011.
2. Anonim 2. Gıda Tarım ve Hayvancılık Bakanlığı. Ruhsatlı veteriner ürünleri: http://www.gkgm.gov.tr/vtu/emliste.aspx Erişim tarihi: 09.01. 2015
3. Arda M, Minbay A, Aydın N (1982). Özel Mikrobiyoloji, bakteriyel infeksiyöz hastalıklar, A.O. Basımevi, AU Vet Fak Yayın No. 386, Ankara.
4. Akan M, Kökçü L, Öncel T, Eken HS (2001): Mastitislerden izole edilen stafilokok suşlarının beta laktamaz aktivitesi ve bazı antibiyotiklere duyarlılıkları. Vet. Hek. Mikrobiyol. Derg. 1(2): 31-34.
5. Akayli T, Ürkü Ç, Çanak Ö (2013). "Kültür Gökkuşağı Alabalıklar (Oncorhynchus Mykiss, Walbaum 1792)’ından İzole Edilen Gram-Negatif Bakterilerin Antibiyotik Duyarlılığı", Biyoloji Bilimleri Araştırma Dergisi, 6: 11-15.
6. Akşit D, Kum C (2008). Gökkuşağı alabalıkları (Oncorhynchus mykiss, walbaum 1792)’nda sık görülen patojen mikroorganizmaların tespiti ve antibiyotik duyarlılık düzeylerinin belirlenmesi, YYÜ Vet Fak Derg (2008) 19(1): 1-7
7. Alderman DJ, Smith P (2001). Development of draft protocols of standard reference methods for antimicrobial agent susceptibility testing of bacteria associated with fish diseases. Aquaculture, 196: 211-243.
8. Austin B, Austin DA (2012).Bacterial Fish Pathogens: Disease of farmed and wild fish, 5th edition Springer, New York, 978-94-007-4884-2pp.

9. Avsever ML, Ün C (2014). Ege bölgesi’nde kültürü yapılan deniz balıklarından edilen lıstonella anguıllarum izolatlarının fenotipik özellikleri ve antibiyotik duyarlılıkları Bornova Vet. Bil. Derg.,36 (50): 1-8.
10. Aydın F, Umur Ş, Gökçe G, Genç O, Güler MA (2001). Kars yöresindeki ishalli buzağılardan bakteriyel ve paraziter etkenlerin izolasyonu ve identifikasyonu. Kafkas Ünv. Vet. Fak. Derg. 7(1): 7-4.
11. Babacan O, Akan M, İzgür M (2011). Kedi ve köpeklerin ürogenital sistem infeksiyonlarından izole edilen Escherichia coli suşlarının antibiyotik duyarlılıklarının belirlenmesi. Vet Hekim Derg 82(1): 43-48.
12. Baydan E, Yurdakök B, Aydın FG (2012). Balıklarda antibiyotik kullanımı antibiotic use in fish.Jvet Sci;3(3):45-52
13. Boynukara B, Ekin İH, Aksakal A, Gulhan T (2002). Isolation and antibiotic susceptibility of enterococci from human, dog and cat faeces. Vet Hek Mikrobiyol Derg. 2 (1): 37-42.
14. Dégı J, Imre K. Herman V (2012). Frequency And Characterızatıon Of Streptococcus Canıs Straıns Isolated From Dog And Cat. Bulletin Usamv, 69(1-2): 1843-5262.
15. Dinç G, Cengiz S, Söğüt M (2013). Tüketime Sunulan Alabalıklarda Aeromonas hydrophila Varlığı ve Antibakteriyel Duyarlılıklarının Saptanması. Mersin Üniversitesi Sağlık Bilimleri Dergisi. 6:2
16. Erbaş G, Kaya O. (2008). Aydın ve izmir bölgesindeki sığırlardan pasteurella multocıda’nın izolasyonu, tiplendirilmesi ve antibiyotiklere duyarlılıkları Bornova Vet. Kont. Araşt. Enst. Derg., 30 (44): 7-14.
17. Ergün Y, Aslantaş Ö, Doğru E, Kireçci E, Sarıbay MK, Ateş CT, Ülkü A, Demir C (2009). “Prevalence and etiology of subclinical mastitis in Awassi dairy ewes in southern Turkey” Turk. J. Vet. Anim. Sci. 33(6): 477-483
18. Gifford GA, Andrew A, Potter A, Babiuk A (1988): Clinical and pathological evaluation of sulbaktam/ampicillin for treatment of experimental bovine pneumonic pasteurellosis. Can. Vet. J. 29, 142–148
19. Gökçe E, Ünver A, Erdoğan HM (2010). İshalli neonatal kuzularda enterik patojenlerin belirlenmesi. Kafkas Univ Vet Fak Derg.16 (5): 717-722
20. Gökçe G, Şahin M, Genç O, Sural E (1997). Buzağı pneumonilerinin tedavisinde tilmicosin ve danofloxacinin etkileri üzerinde karşılaştırmalı araştırmalar. Kafkas Üniv Vet Fak Derg, 3(2):151-155.
21. Guler L, Gunduz K, Sarısahın AS (2013). Capsular Typing and Antimicrobial Susceptibility of Pasteurella multocida Isolated from Different Hosts. Kafkas Univ Vet Fak Derg. 19 (5): 843-849
22. Gümüssoy KS (2013). Phenotypic and Genotypic Determination of Antibiotic Resistant and Biofilm Forming Staphylococcus aureus Isolated in Erzincan Tulum Cheese.KafkasVet.Fak:Derg. 19 (3), 517-521 Hong GE, Kim DG, Bae JY, Ahn SH, Bai SC, Kong IS ( 2007). Species-Specific Pcr Detection Of The Fish Pathogen, Vibrio Anguillarum, Using The Amib Gene, Which Encodes N-Acetylmuramoyl-L-Alanine Amidase. Source Department Of Biotechnology And Bioengineering, Pukyong National University, Busan, Korea, 608-737pp.
23. Kaya S, Çetin ES, Arıkan A, Tetik T, Kesbiç H, Yakar S (2007). Tavuklardan izole edilen E coli. Klebsiella ve enterokoklarda antibiotik duyarlılık durumları S.D.Ü. Tıp Fak. Derg. 14 (2) / 24-27. Keyes K, Hudson C, Maurer JJ, Thayer S, Whıte DG, Lee MD (2000). Detection of Florfenicol Resistance Genes in Escherichia coli Isolated from Sick Chickens. Antımıcrobıal Agents and Chemotherapy 44(2): 421–424.
24. Kim EH Aoki T. (1996). Sequence analysis of the florfenicol resistance gene encoded in the transferable r-plasmid of a fish pathogen, pasteurella piscisida. Microbiol Immunol. 40:665–669.
25. Koneman EW, Allen SD, Janda WM, Schreckenber PC, Winn WC (1997). Color Atlas of Diagnostic Microbiology, fifth ed. Lippincott.
26. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS) (2000).Methods For Dilution Antimicrobial Susceptibility Tests For Bacteria That Grow Aerobically- Fifth Edition: Approved Standard M7-A5, Nccls, Wayne, Pa, Usa. Önat K, Kahya S, Çarlı KT (2010). Frequency and antibiotic susceptibility of pasteurella multocida and mannheimia haemolytica isolates from nasal cavities of cattle. Turk. J. Vet. Anim Sci. 34(1): 91-94Özcan M, Sarıeyyüpoğlu M (2013). Elazığ yılındaki bazı alabalık işletmelerinde izole edilen Flavobacterium psychrphilum'un antibakteriyel duyarlıkıllarının incelenmesi. Yunus Araştırma Bülteni (2): 11-19
27. Özkanlar YE, Şahal M, Kibar M, Özkök S. (2005). Köpeklerde Escherichia coli ve proteus mirabilis ile oluşturulan aşağı üriner sistem enfeksiyonu ve vezikoüreteral refluksla ilişkisi Ankara Üniv Vet Fak Derg, 52, 171-178.
28. Öztürk D, Çorlu M (2006). Pnömonili kovun akcigerlerinden izole edilen bakteriler ve antibivotik duvarlılıklar bacteria ısolated from lungs of sheep with pneumonia and antibiotic susceptibilities. Vet. Bil. Derg. 22, 1-2: 59•63
29. Rajan PR, Lin JH, Ho MS, Yang H (2003). Simple and rapid detection of photobacterium damselae ssp. piscicida by a pcr technique and plating method. J. Appl. Microbiol., 95: 1375-1380.
30. Shin SJ, Kang SG, Nabin R , Kang ML, Yoo HS (2005). Evaluation of the antimicrobial activity of florfenicol against bacteria isolated from bovine and porcine respiratory disease. Vet Microbiol; 106 (1-2):73-7
31. Tel OY, Keskin O. (2010).Koyun Akciğerlerinden Pasteurella multocida ve Mannheimia haemolytica İzolasyonu ve Antibiyotiklere Duyarlılığı. YYU Veteriner Fakultesi Dergisi, 21 (1), 31-34
32. Tenover FC, Hughes JM (1996). The challenges of emerging infectious diseases: development and spread of multiply resistant bacterial pathogens. JAMA, 275:300-4.
33. Toyama T, Kita TK, Wakabayashi H (1996). Identification of flexibacter maritimus, flavobacterium branchiophilum and cytophaga columnaris by pcr targeted 16s ribosomal dna. Fish pathology, 31(1): 25-31.
34. Ülker H, Küçük D, Cantekin Z, Solmaz H (2012). Hatay yöresinde kesimhanede kesilen sığır akciğerlerinden Pasteurella multocida ve Mannheimia haemolytica izolasyonu ve antibiyotiklere duyarlılığı. Ankara VKAE Derg. 2 (2): 10-14.
35. Versalovic J, Koeuth T, Lupski R (1991). Distribution of repetitive DNA sequences in eubacteria and application to fingerprinting of bacterial genomes. Nucleic Acids Res. 19(24), 6823-6831.
36. Yeşilmen S, Özyurtlu N, Bademkıran S (2012). Diyarbakır yöresinde subklinik mastitisli ineklerde etken izolasyonu ve duyarlı antibiyotiklerin belirlenmesi. Dicle Üniv Vet Fak Derg. 1 (4):24-29.
37. Zhao GB, Ge J, De Villena R, Sudler E, Yeh S, Zhao, DG, White D, Wagner J (2001). Prevalence of Campylobacter spp., Escherichia coli, and Salmonella serovars in retail chicken, turkey, pork, and beef from the greater Washington, D.C., Area. Appl. Environ. Microbiol. 67:5431-5436
38. Zlotkin A, Eldar A, Ghittino C, Bercovier H (1998). Identification of Lactococcus garvieae by PCR. J Clin Microbiol. ;36:983–985