Scilla siberica subsp. armena Yaprak Sapından İn Vitro Çoklu Sürgün Rejenerasyonu

Öz

Scilla siberica subsp. armena çok yıllık, mavi çiçekli soğanlı bir bitkidir. Bu çalışmada Scilla siberica subsp. armena’nın yaprak sapı kullanılarak; 0.25, 0.50, 1, 2 mg/L TDZ ve 0.1, 0.2 mg/L NAA içeren (8 kombinasyon) MS besin ortamında etkili bir çoklu sürgün rejenerasyon sistemi geliştirmek amaçlanmıştır. Maksimum ortalama rejenere sürgün yüzdesi 2 mg/L TDZ + 0.1 mg/L NAA içeren MS besin ortamında kaydedilmiştir. Maksimum eksplant başına düşen ortalama sürgün sayısı 2 mg/L TDZ + 0.2 mg/L NAA içeren MS besin ortamında raporlanmıştır. Maksimum ortalama sürgün uzunluğu 0.25 mg/L TDZ + 0.2 mg/L NAA ilave edilen MS besin ortamından elde edilmiştir. Gelişen sürgünler 1 mg/L IBA içeren MS besin ortamında köklendirilmiştir.

In Vitro Multiple Shoot Regeneration from Scilla siberica subsp. armena Petiole

Abstract

Scilla siberica subsp. armena is a perennial blue flowered bulbous plant. This study aimed to develop an efficient multiple shoot regeneration system for S. siberica subsp. armena using petiole on MS medium containing 0.25, 0.50, 1, 2 mg L^-1 TDZ and 0.1, 0.2 mg L^-1 NAA (8 combinations). Maximum mean shoot regeneration percentage was noted in MS medium containing 2 mg L^-1 TDZ + 0.1 mg L^-1 NAA, maximum mean number of shoot per explant was recorded in MS medium containing 2 mg L^-1 TDZ + 0.2 mg L^-1 NAA, maximum mean number of shoot length was recorded in MS medium supplemented with 0.25 mg L^-1 TDZ + 0.2 mg L^-1 NAA. Well developed micro propagated shoots were rooted on MS medium containing 1 mg L^-1 IBA.

References

1. Arslan N, Gurbuz B, Gumuscu A, Ozcan S, Mirici S, Khawar KM, 2002. Cultivation of Sternbergia fischeriana (Herbert) Rupr. and a study on its morphological characteristics. Pakistan Journal of Botany, 34: 411–418.
2. Baytop T, Mathew B, 1984. The Bulbus Plants of Turkey, Batsford ltd. London
3. Davis PH, 1984. Flora of Turkey and East Aegean Islands, University Press, Edinburgh: 8
4. Ekim T, Koyuncu M, Güner A, 1991. Türkiye’nin ekonomik değer taşıyan geofitleri üzerinde taksonomik ve ekolojik araştırmalar, T.C. Tarım Orman ve Köyisleri Bakanlığı Orman Genel Müdürlüğü, Sıra no:669, Seri no:65, Ankara.
5. Erzincanlıoglu A, 2001. Porsuk vadisi ( Kütahya) florası. Dumlupınar Üniversitesi, Fen Bilimleri Enstitüsü, Kütahya.
6. Fırat Havzası Tıbbi ve Endüstriyel Bitkiler Sempozyumu 6 -8 Ekim 1986 Elazığ Bildiriler Fırat Üniversitesi Elazığ, 1991
7. Ipek A, Çöçü S, Uranbey S, Kaya D, Gürbüz B, Aslan N, Sancak C, Özcan S, 2009. In vitro bulblet production from immature embryos of ornamental plant Ornithogalum platyphyllum Boiss. Research Journal of Biotechnology 4:21-25.
8. Kizil S, Khawar KM, Altuntas C, Saglam S. 2014. Direct bulblet regeneration from Sternbergia fischeriana (Herb.) Rupr. bulb scale explants. Propagation of Ornamental Plants. 14(2):68-75.

9. Koyuncu M, Ekim T, 1984. Türkiye’nin ihraç ettiği geofitler ve bunların ekonomik önemi. V. Bitkisel İlaç Hammaddeleri Toplantısı Tebliği, Ankara.
10. Langens-Gerrits M, Albers M, De Klerk GJ, 1998. Hot water treatment before tissue culture reduces initial contamination in Lilium and Acer. Plant Cell Tissue and Organ Culture. 52: 75–77.
11. Malabadi RB, Van Staden J, 2004. Regeneration of Ornithogalum in vitro. South African Journal of Botany.70: 618-621.
12. Murashige T, Skoog F, 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum. 15: 473–497.
13. Nasircilar A, Mirici S, Karagüzel Ö, Eren Ö, Baktir I, 2011. In vitro propagation of endemic and endangered Muscari mirum from different explant types. Turkish Journal of Botany 35:37–43.
14. Ozdemir FA, Yildirim MU, Pourali Kahriz M, 2014. Efficient micropropagation of highly economic, medicinal and ornamental plant Lallemantia iberica (Bieb.) Fisch. and C. A. Mey. BioMed. Research International. 2014: ID 476346. doi:10.1155/2014/476346.
15. Ozdemir FA, Yildirim MU, Pourali Kahriz P, 2015. Micropropagation of endemic Scutellaria orientalis L. subsp. bicolor using modified MS medium & TDZ. Emirates Journal of Food and Agriculture. 27: 1-7.
16. Ozel CA, Khawar KM, Unal F, 2015. Factors affecting efficient in vitro micropropagation of Muscari muscarimi Medikus using twin bulb scale. Saudi Journal of Biological Sciences. 22:132–138.
17. Suh J, Lee W, Lee A, 2005. New plantlet proliferation and bulbing promotion in vitro cultures of Ornithogalum hybrid. Acta Horticulturae. 683:155-163.
18. Yildirim MU, (2013). Micropropagation of Origanum acutidens (Hand.- Mazz.) Ietswaart using stem node explants. Scientific World Journal. 2013: ID 276464. doi:10.1155/2013/276464.
19. Ziv M, Lillien-Kipnis H, 2000. Bud regeneration from inflorescence explants for rapid propagation of geophytes in vitro. Plant Cell Reports.19:845–850.