Researches on in Vitro Propagation of Tarragon (Artemisia dracunculus L.)

Year 2014, Volume: 24 Issue: 3, 300 - 308, 11.11.2014

Didem Türközü Fikret Yaşar , Ş. Ellialtıoğlu Bünyamin Yıldırım

https://doi.org/10.29133/yyutbd.236263

Cited By: 4

Abstract

Medicinal and aromatic plants, which are consumed as a dried or fresh tarragon plant (Artemisia dracunculus L.) through tissue culture propagation were studied. The tissue culture study on tarragon, explant type most suitable for in vitro propagation, carbonhydrate source, and sub-culture tried to determine the number. In this study, the optimal nutritional environment of different nutrient media tried and BA 1.8 µM, 0.3 µM NAA, 3 % sugar and 0.7 % agar supplemented Murashige and Skoog nutrient medium were determined. The highest growth rate of 92.0 % according to this value, 'Shoot tip x Granulated sugar' were obtained from the combination. Three times were sub-culture, sub-cultures rosette and albino plant formation was observed. Addition of GA₃ adversely affected the development. The longest roots were obtained from 0.5 mg /l IBA supplemented MS and ½ MS media (44±14.0 and 46±16.0 mm, respectively), hormone-free medium was determined to be shorter root lengths (34±11.0 and 35±08.0 mm ). Tarragon rooted plants were transferred to pots. Tarragon propagation by tissue culture was carried out successfully. Clonal micropropagation seen as a problem limiting the formation of albino plants and eliminate about it was that detailed studies should be performed.

Keywords

Tarragon (Artemisia dracunculus L.), Micropropagation, Medium, Shoot tip, Single node

TARHUN (Artemisia dracunculus L.) BİTKİSİNİN DOKU KÜLTÜRÜ YOLUYLA ÇOĞALTILMASI ÜZERİNDE ÇALIŞMALAR

Abstract

Tıbbi ve aromatik bir bitki olan, kurutulmuş veya taze olarak tüketilen tarhun bitkisinin (Artemisia dracunculus L.) doku kültürü yoluyla çoğaltımı üzerinde çalışılmıştır. Tarhun bitkisinde yapılan doku kültürü çalışmasında, in vitro koşullarda çoğaltım için en uygun eksplant tipi, karbonhidrat kaynağı, alt kültür sayısının belirlenmesi amaçlanmıştır. Yapılan çalışmada farklı besin ortamları denenmiş ve en uygun besin ortamının 1.8 µM BA, 0.3 µM NAA,  % 3 toz şeker ve % 0.7 agar ilave edilen Murashige ve Skoog besin ortamı olduğu tespit edilmiştir. En yüksek gelişme oranı % 92.0 değeriyle ‘Sürgün ucu x Toz şeker’ kombinasyonundan elde edilmiştir. Üç kere alt kültür yapılmış, alt kültürlerde rozetleşme ve albino bitki oluşumu gözlenmiştir. Besin ortamına GA₃ ilave edilmesi gelişmeyi olumsuz yönde etkilemiştir. En iyi durumda olan sürgünler ile köklendirme denemeleri kurulmuştur. Köklendirme aşamasında en uzun köklerin 0.5 mg/l IBA ilave edilen tam MS ve ½ MS ortamlarından elde edildiği (sırasıyla 44±14.0 ve 46±16.0 mm), hormonsuz ortamlardaki kök uzunluklarının daha kısa olarak belirlendiği görülmüştür (34±11.0 ve 35±08.0 mm). Köklenen tarhun bitkicikleri saksılara aktarılmıştır. Tarhunun doku kültürüyle çoğaltılması başarıyla gerçekleştirilmiştir. Klonal mikroçoğaltımı sınırlandıran bir sorun olarak görülen albino bitki oluşumu ve bunun giderilmesi konularında detaylı çalışmalar yapılması gerektiği ortaya konulmuştur.

Keywords

Tarhun (Artemisia dracunculus L.), Mikro çoğaltım, Ortam, Sürgün ucu, Tek boğum

References

• Anonim (2009a). http://www.alternatif-tip.net/. Erişim Tarihi: 15.09.2007.
• Anonim (2009b). http://www.superbherbs.net/ Frenchtarragon.htm. Erişim Tarihi: 21.10. 2009.
• Ardiana H. K., Joko B. S. (1998). Callus induction of Artemisia (Artemisia vulgaris L.) by in vitro culture. Agris Record, 6 (2), p. 135-141.
• Arrebola ML., Socorro O., Barcelo MA., Simon PE., Pliego AF (1997). Micropropagation of Satureja obovata Lag.s, Hort Science, 32 (7), 1278-1280.
• Asımgil A (1997). Şifalı Bitkiler. Timaş Yayınları-176 s: 276. İstanbul.
• Ceylan A (1996). Tıbbi Bitkiler II (Uçucu Yağ Bitkileri), Ege Üniversitesi, Ziraat Fakültesi Yayını, No:481, Bornova/İzmir.
• Ćellárová E (1992). Micropropagation Mentha L., Biotechnology in Agriculture And Forestry 19, High Tech. and Micropropagation II, Bajaj, Y. P. S. (eds.) Springer-Verlag, pp. 262-276.
• Ellialtıoğlu Ş., Özcan S., Demir K., Tepe Ş (1998). Nanenin (Mentha sp.) Doku Kültürü ile Çoğaltma Olanakları. III. Ulusal Biyoteknoloji Sempozyumu, Biyoteknolojide Üniversite-Sanayi İşbirliği, 23-24 Ekim, Eskişehir.
• Erzen-Vodenik M., Baricevic D (1996). Tissue propagation of medicinal and aromatic plants, Novi izzivi v poljedelstvu 96, Zbornik simpozija, Ljubljana, Sloveria, 9-10 decembra, 201-206.
• Fernandez-Lizarazo JC., Mosquera-Vasquez T (2012). Efficient Micropropagation of French Tarragon (Artemisia dracunculus L.). Agron. colomb. [online]. 30(3): 335-344.
• Garland P., Stoltz LP (1980). In vitro Propagation of Tarragon. Hortscience, 15 (6) : 739.
• Gülpınar Y (2012). Tarhun Bitkisinin (Artemisia dracunculus L.) Wistar Albino Ratlarda Oluşturulmuş Akut Karaciğer Toksik Hasarına Karşı Koruyucu ve Tedavi Edici Etkisinin Araştırılması. Gaziantep Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü Biyoloji Bölümü, Yüksek Lisans Tezi, 48, Gaziantep.
• Gümüş C (2009). Batı Karadeniz Bölgesi'nde Salep Elde Edilmesinde Kullanılan Bazı Orkide Türlerinin (Orchidaceae) Çoğaltım Yöntemleri Üzerinde Araştırmalar. Ankara Üniversitesi Fen Bil. Enst. Doktora Tezi, 205, Ankara.
• Kumari N., Saradhi PP (1992). Regeneration of plants from callus cultures of Origanum vulgare L., Plant Cell Rep., 11 (9), 476-479.
• Le CL., Julmi C., Tschuy F (2007). In vitro micropropagation of wormwood (Artemisia absinthium L.). Agris Record, 39 (4), p. 263-267.
• Liu CZ., Murch SJ., El-Demerdash M., Saxena PK (2003). Regeneration of the Egyptian Medicinal plant Artemisia judaica L. Plant Cell Reports, 21 (6), p. 525-530.
• Mackay WA., Kitto SL (1987). Rapid propagation of French Tarragon using in vitro techniques. ISHS Acta Horticulturae 208: 251-261.
• Mackay WA., Kitto SL (1988). Factors affecting in vitro shoot proliferation of French Tarragon. Journal of The American Society for Horticultural Science, 113 (2): 282-287
• Minas GJ (2007). A protocol for in vitro rapid micro propagation of French Tarragon starting from apical meristem. ISHS Acta Horticulturae 741: I International Symsposium on Fresh Food Quality Standards: Beter Food by Quality and Assurance.
• Miyoshi K., Mii M (1995). Phytohormone pre-treatment for the enhancement of seed germination and protocorm formation by the terrestrial orchid, Calanthe discolor (Orchidaceae), in asymbiotic culture. Scientia Hort., 63:263-267.
• Murashige T., Skoog F (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tabacco tissue cultures. Physiol. Plantarum, 15, 473-497.
• Nathan VN., Yatoo GM (2014). Micropropagation of an Antidiabetic Medicinal Plant, Artemisia pallans. Turkish J. of Botany. 38: 1-8.
• Nin S., Morosi E., Schiff S., Bennici A (1996). Callus cultures of Artemisia absinthium L.: initiation, growth optimization and organogenesis. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 45 (1): 67-72.
• Pace L., Pacioni G., Spano L (2004). In vitro propagation of Artemisia petrosa ssp. eriantha: potential for the preservation of an endangered species. Plant Biosystems- An International Dealing with all Aspects of Plant Biology, 138 (3): 291-294.
• Pedroza J (2008). Aplicaciones del cultivo de tejidos en condiciones in vitro. Universidad Distrital Francisco José de Caldas, Bogota.
• Piatczak E., Wielanek M., Wysokinska H (2005). Liquid culture system for shoot multiplication and secoiridoid production in micropropagated plants of Centaurium erythrae Rafn. Plant Science, 168: 431-437.
• Sujatha G., Kumari RBD (2007). Effect of phytohormones on micropropagation of Artemisia vulgaris L. Acta Physioloigiae Plantarum, 29 (3): 189-195.
• Sutton S., Humphries C., Hopkinson J (1985). Tarragon. Garden, Uk 110 (5) : 237-240.
• Tang F., Wei J., Jiang Y., Jiang S., Huang N., Wei X (2008). Rapid propagation and germplasm conservation in vitro of Artemisia annua L. Journal of Tropical and Subtropical Botany, 20080
• Werbrouck SPO., Debergh PC (1994). Applied aspects of plant regeneration (micropropagation). Plant Cell Culture-A pratical Approach, Dixon, R. A and Gonzales, R. A. (eds.) Oxford Üni. Pres., New York, pp. 127-135.
• Yatoo GM (2010). Callogenesis and direct organogenesis from aseptic plant of Artemisia absinthium L. growing wild in Kashmir. J. Ind. Bot.Soc., 89: 248-252.
• Yürekli AK., Baba B (1995). Ekonomik Öneme Sahip Endemiklerin Doku Kültürü Teknikleri ile Çoğaltılması. TBAG-1190, 61s.