Ayvada Kahverengi Çürüklük (Monilinia fructigena Honey in Whetzel) Hastalığının Propolis Etanol Ekstraktı İle Kontrolü

Yıl 2018, Cilt: 35 Sayı: Ek Sayı, 108 - 113, 01.10.2018

Çiğdem Özyiğit Yusuf Yanar Dürdane Yanar Abdurrahman Onaran

https://doi.org/10.13002/jafag4515

Cited By: 2

Öz

Propolis, insanlar tarafından bin yıldır antimikrobiyal ve farmasötik özellikleri için kullanılmaktadır. Bununla birlikte, tarımsal alanda antimikrobial ajan olarak kullanımı son yıllarda ele alınmaya başlamıştır. Bu çalışmada Tokat ve Ankara’dan getirilen propolisin etanolik ekstraktının (PEE) ayva kahverengi çürüklük hastalığı (Monilinia fructigena Honey in Whetzel)'nın kontrolünde kullanılabilirliği araştırılmıştır. PEE'nin antifungal aktivitesi, propolis ekstraktı içeren Patates Dekstroz Agar ortamı ve meyve kaplama yöntemleri ile test edilmiştir. Çalışmada PEE üç farklı konsantrasyonu (%1, 3 ve 5) kullanılmıştır. Elde edilen sonuçlar doğrultusunda PEE konsantrasyonu artıkça etkinliğinde paralel olarak artığı görülmüştür. Tokat ve Ankara PEE %3 konsantrasyonuda M. fructigena’nın miselyum gelişimini %100 oranında engellemiştir. Tokat ve Ankara PEE %1 konsantrasyonuda patojenlerin gelişimini sırasıyla %84.2 ve %85.6 arasında değişen oranlarda engellemiştir. Ankara ve Tokat PEE, %5 konsantrasyonda patojenlerin gelişimini tamamen (%100) durdurmuştur. Benzer sonuçlar, in vivo çalışmada da elde edilmiştir. Her iki PEE %5 konsantrasyonunda, meyve enfeksiyonları tamamen engellenmiştir. Elde edilen sonuçlar, propolisin etanolik ekstraktlarının (PEE) %3 ve %5 lik konsantrasyonlarının, hasat sonrası ayva kahverengi çürüklük hastalığı (Monilinia fructigena)'nın kontrolü için ayvada yenilebilir kaplama olarak kullanılabileceğini göstermiştir

Anahtar Kelimeler

Ayva kahverengi çürüklük, Monilinia fructigena, propolis, ekstrakt

Kaynakça

• Ayhan T, Mumcu AS, Tuylu AO, Sorkun K and Salih B (2013). Antifungal activity of propolis samples collected from different geographical regions of turkey against two Food-related molds, Aspergillus versicolor and Penicillium aurantiogriseum. Gıda, 38: 135-142.
• Bakeer AT, Elbanna K and Elnaggar SA (2015). Impact of Pre- and Post-harvest applications of natural products on apple and pear soft rot disease. Int. J. Phytopathol. 04 (03): 105-11.
• Bankova V (2005). Recent trends and important developments in propolis research. Evid. Based Complement Alternat. Med., 2: 29-32.
• Conway WS, Leverentz B, Janisiewicz VJ, Blodgett AB, Saftner RA and Camp MJ (2004). Integrating heat treatment, biocontrol and sodium bicarbonate to reduce postharvest decay of apple caused by Colletotrichum acutatum and Penicillium expansum. Postharvest Biol. Technol. 34:11–20.
• Çandir EE, Ozdemir AE, Soylu EM, Sahinler N and Gul A (2009). Effects of propolis on storage of sweet cherry cultivar Aksehir Napolyon. Asian J. Chem., 21: 2659-2666.
• Darweesh AS (2010). Antifungal Activity of Propolis Ethanol Extract Against Botrytis cinerea, Alternaria sp. Which Caused Many Plant Diseases. Ibn Al- Haıtham J. For Pure & Appl. Scı. VOL.23 (1) 68-80.
• Deans SG, Sobada KP (1990). Antimicrobial Properties of Marjoram (Origanum marjorana L.) Volatile Oil, Flavour Fragr. J. S. 197-190.
• El-Badawy HE, Baiea MH and Eman AA (2012). Efficacy of propolis and wax coatings in improving fruit quality of Washington navel orange under cold storage. Res. J. Agric. Biol. Sci., 8: 420-428.
• Ertürk Ö, Güler N (2013). Halk İlaçlarında Propolisin Tarihi Kullanımı ile Onun Biyolojik Aktivitesi ve Kimyasal Kompozisyonu. Uludağ Arıcılık Dergisi.13(1):33-40.
• Fulton CE, Van Leeuwen GCM and Brown AE (1999). Genetic variation among and within Monilinia speciescausing brown rot of stone and pome fruits. European Journal of Plant Pathology, 105, 495–500.
• Gastavsson J, Cederberg C, Sonesson U (2011). Global Food Losses and Food Waste. Food and Agriculture Organization (FAO) of the United Nations, Rome. Güler P, Sorkun K, Salih B (2003). Effect of some Turkish propolis on the product quantity of Agaricus bisporus (Lange.) Sýng. Pak. J. Botany, 35(3): 439-447.
• Hegazi A, Abdou AM and Abd-Allah F (2014). Egyptian propolis 11: Its antimicrobial activity with comparison with different localities. Int. J. Curr. Microbiol. Applied Sci., 3: 530-538.
• Karabulut OA, Cohen L, Wiess B, Daus A, Lurie S, Droby S (2002). Control of Brown rot and blue mold of peach and nectarine by short hot water brushing and yeast antagonists. Postharvest Biol. Technol. 24,103e111.
• Karabulut OA, Baykal N (2004). Integrated control of postharvest diseases of peaches with a yeast antagonist, hot water and modified atmosphere pack- aging. Crop Prot. 23, 431e435.
• Kartal M, Yildiz S, Kaya S, Kurucu S, Topçu G (2003). Antimicrobial activity of propolis samples from two different regions of Anatolia. J. Ethnopharmacol, 86, 69–73.
• Kujumgiev A, Tsvetkova I, Serkedjieva Y, Bankova V, Christov R and Popov S (1999). Antibacterial, antifungal and antiviral activity of propolis of different geographic origin. J Ethnopharmacol. 64: 235- 240.
• Kumova U, Korkmaz A, Avcı BC, Ceyran G (2002). Önemli Bir Arı Ürünü : Propolis. Uludağ Arıcılık Dergisi. 2(2) :10-24.
• Kurt Ş, Şahinler N (2003). Propolis Ekstraktının Bitki Patojeni Funguslara Karşı Antifungal Aktivitesi.Uludağ Bee Journal, 2. 35-37.
• Lee SH, Chang KS, Su MS, Huang YS and Jang HD (2007). Effects of some Chinese medicinal plant extracts on five different fungi. Food Contr. 18:1547–1554.
• Lougheed EC, Murr DP, Berard L (1978). Low pressure storage for horticultural crops. HortScience 13, 21–27
• Ma Z, Michael A, Yoshimura MA, Michailides TJ (2003). Identification and characterization of benzimidazole resistance in Monilinia fructicola from stone fruit orchards in California. Appl. Environ. Microbiol. 69, 7145-7152.
• Matny ON, Abdul-Karim EK, Naemah RA and Al-Ani RA (2014). Activity of propolis and Boswellia sp. resins extract against Sclerotinia sclerotiorum causative agent of white rot disease of Phaseolus vulgaris and Daucus carota under storage conditions. J. Exp. Biol. Agric. Sci., 2: 65-71.
• Matny ON (2015). Efficacy Evaluation of Iraqi Propolis Against Gray Mold of Stored OrangeCaused by Penicillium digitatum. Plant Pathology Journal 14 (3): 153-157
• Ogawa J M, English H (1991). Fungal Diseases of Stone Fruits. Diseases of Temperate Zone Tree Fruit and Nut Crops. University of California, Division of Agriculture and Natural Resources. Publication 3345.
• Ozcan M, Unver A, Ceylan DA and Yetisir R (2004). Inhibitory effect of pollen and propolis extracts. Nahrung, 48: 188-194.
• Ozdemir AE, Candir EE, Kaplankiran M, Soylu EM, Sahinler N and Gul A (2010). The effects of ethanol-dissolved propolis on the storage of grapefruit cv. Star ruby. Turk. J. Agric. For., 34: 155-162.
• Prytzyk E, Dantas A P, Salom OK, Pereira AS, Bankova VS, De Castro SL and Neto FR (2003). Flavonoids and trypanocidal activity of Bulgarian propolis. J. Ethnopharmacol. 88: 189-193.
• Ragsdale NN and Sisler HD (1994). Social and political implications of managing plant diseases with decreased availability of fungicides in the United States. Annu. Rev. Phytopathol. 32:545–557
• Thompson DP (1989). Fungitoxic activity of essential oil components on food storage fungi. Mycologia 81:151-153.
• Tripathi P, Dubey NK, Banerji R and Chansouria JPN (2004). Evaluation of some essential oils as botanical fungi toxicants in management of post-harvest rotting of citrus fruits.World Journal of Microbiology and Biotechnology 20:317-321.
• Tripathi P and Dubey NK (2004). Exploitation of natural products as an alternative strategy to control postharvest fungal rotting of fruit and vegetables. Postharvest Biol. Technol. 32:235–24.
• Yanar Y, Yanar D, Arslan S (2005). Antifungal Activity of Turkish Propolis Against Phytophthora Species. Plant Pathology Journal. 4 58-60.
• Zhang HY, Zheng XD,Yu T 2007. Biological control of postharvest diseases of peach with Cryptococcus laurentii. Food Contr. 18:287–291.