Farklı Bitki Türlerinden Bitki Doku Kültürü Teknikleriyle Flavonoidlerin Üretimi

Yıl 2017, Cilt: 7 Sayı: 2, 665 - 673, 01.06.2017

Tayfun Aktaş Hatice Çölgeçen

Öz

Flavonoidler sağlık ve gıda alanlarında kullanılan fenolik bileşiklerdir. Bitkilerdeki flavonoidlerin üretimi bitki doku kültürü çalışmalarıyla arttırılmaktadır. Bu çalışmada, flavonoidlerin tanımı, önemi ve çeşitleri hakkında kısaca bilgi verilmiştir. Ayrıca bitki doku kültürü teknikleriyle flavonoidlerin üretimi örneklerle açıklanmıştır. Kallus kültürü, hücre süspansiyon kültürü, saçak kök kültürü ve biyoreaktörle flavonoidlerin üretimi çalışmalarından bahsedilmiştir

Anahtar Kelimeler

Bitki doku kültürü, Fabaceae, Flavonoid

Production of Flavonoids by Plant Tissue Culture Techniques in From Different Plant Species

Öz

Flavonoidler sağlık ve gıda sanayisinde yoğun talep gören fenolik bileşiklerdir. Bitkilerdeki flavonoidlerin çok miktarda üretimi bitki doku kültürü çalışmalarıyla sağlanmaktadır. Bu çalışmada, flavonoidlerin tanımı, önemi ve çeşitleri hakkında kısaca bilgi verilmiştir. Ayrıca bitki doku kültürü teknikleriyle flavonoidlerin üretimi örneklerle açıklanmıştır. Kallus kültürü, hücre süspansiyon kültürü, saçak kök kültürü ve biyoreaktörle flavonoidlerin üretimi çalışmalarından bahsedilmiştir.

Anahtar Kelimeler

Flavonoid, Bitki doku kültürü, Fabaceae

Kaynakça

• Akçam-Oluk, E. 2006. Bitki Hücre Süspansiyon Kültürleri ve Sekonder Metabolit Üretimi. Anadolu Üni. Bil. ve Tek. Der., 7(2): 303-310.
• Ames, TT., Worden, RM. 1997. Continuous Production of Daidzein and Genistein from Soybean in a Magnetofluidized Bed Bioreactor. Biotechnol. Prog, 13: 336-339.
• Asada, Y., Li, W., Yoshikawa, T. 1997. Isoprenylated Flavonoids From Hairy Root Cultures of Glycyrrhıza glabra. Phytoche., 47(3): 389-392
• Begum, AA., Leibovitch, S., Migner, P., Zhang, F. 2001. Specific flavonoids induced nod gene expression and pre-activeted nod genes of rhizobium leguminosarum increased pea ( pisum sativum L.) and lentil (Lens culinaris L.) nodulation in controlled growth chamber environments. Jour. of Exper. Bot., 52 (360): 1537-1543.
• Beninger, CW., Hosfield, GL. 2003. Antioxidant Activity of Extracts, Condensed Tannin Fractions, and Pure Flavonoids from Phaseolus vulgaris L. Seed Coat Color Genotypes. J. Agricultural Food Chem., 51: 7879-7883.
• Bharati, AJ., Bansal, YK. 2014. In Vitro Production of Flavonoids: A Review. World J. Pharmacy Pharmaceutical Sci., 3(6): 508- 533.
• Birman H. 2012. Bitkisel Flavonoid Bileşiklerinin Biyoaktiviteleri ve Muhtemel Etki Mekanizmaları. İst. Tıp Fak. Derg., 75: 3.
• Boss, PK., Davies, C., Robinson, SP. 1996. Expression of anthocyanin biosynthesis pathway genes in red and white grapes. Plant Mol. Bio., 32(3): 565-569.
• Colliver, SP., Morris, P., Robbins, MP. 1997. Differential modification of flavonoid and isoflavonoid biosynthesis with an antisense chalcone synthase construct in transgenic Lotus corniculatus. Plant Mol. Bio., 35: 509–522.
• Çölgeçen, H., Koca, Çalışkan, U., Kartal, M., Büyükkartal, HN. 2013. Comprehensive evaluation of phytoestrogen accumulation in plants and in vitro cultures of Medicago sativa L. ‘Elçi’ and natural tetraploid Trifolium pratense L. Turkish J. Biol., 38: 619-627.
• El-Beltagi, HS., Ahmeda, OK., El-Desouky, W. 2011. Effect of low doses y-irradiation on oxidative stres and secondary metabolites production of rosemary (Rosmarinus officinalis L.) callus culture. Radiation Phy. Chem., 80: 968–976.
• Farag, MA., Huhman, DV., Lei, Z., Sumner, LW. 2007. Metabolic profiling and systematic identification of flavonoids and isoflavonoids in roots and cell suspension cultures of Medicago truncatula using HPLC–UV–ESI–MS and GC– MS. Phytochemistry, 68: 342–354.
• Fritzemeier, KH., Rolfs, CH., Pfau, J., Kindlt, H. 1987. Action of ultraviolet-C on stilbene formation in callus of Arachis bypogaea. Planta, 172:238-244.
• Rolfs, CH., Schon, H., Steffens, M., Kindl, H. 1987. Cell- suspension culture of Arachis hypogaea L.: model system of specific enzyme induction in secondary metabolism. Planta, 172:238-244.
• Segev, A., Badani, H., Kapulnik, Y., Shomer, I., Oren- Shamir, M., Galili, S. 2010. Determination of Polyphenols, Flavonoids, and Antioxidant Capacity in Colored Chickpea (Cicer arietinum L.). J. Food Sci., 75(2): 115-119.
• Sharma, V., Goyal, S., Ramawat, KG. 2009. Scale up production of isoflavonoids in cell suspension cultures of Pueraria tuberosa grown in shake flasks and bioreactor. Eng. Life Sci., 9(3): 267– 271.
• Takeya, K., Itokawa, H. 1981. Isoflavonoids and the Other Constituents in Callus Tissues of Pueraria lobata. Tokyo College Phar., 30: 1496-1499.
• Tumova, L., Tuma, J. 2011. The effect of UV light on isoflavonoid production in Genista tinctoria culture in vitro. Acta Phys. Plant, 33: 635–640.
• Topçu, Ş., Çölgeçen, H. 2015. Bitki Sekonder Metabolitlerinin Biyoreaktörlerde Üretilmesi. Türk Bilimsel Derl. Der., 8 (2): 09-29.
• Upman, S., Sarin, R. 2011. Production of flavonoids from Indigofera cordifolia and I. linnaei in vivo and in vitro tissue cultures. Int. J. Nat. Products Res., 1 (1): 4-8.
• Vierstra, RD., John, TR., Msu-doe, KLP. 1982. Kaempferol 3-0-Galactoside, 7-0-Rhamnoside is the Major Green Fluorescing Compound in the Epidermis of Vicia faba. Plant Phy., 69: 522-525.
• Zhang, HC., Liu, JM., Lu, HY., Gao, SL. 2009. Enhanced flavonoid production in hairy root cultures of Glycyrrhiza uralensis Fisch by combining the over-expression of chalcone isomerase gene with the elicitation treatment. Plant Cell Rep., 28: 1205–1213.