Lethal effects of Lecanicillium psalliotae (Hypocreales: Cordycipitaceae) on Myzus persicae (Sulzer) and Aphis fabae Scopoli (Hemiptera: Aphididae)

Öz

In this study, the pathogenic efficacy of the entomopathogenic fungus Lecanicillium psalliotae was evaluated against the green peach aphid Myzus persicae (Sulzer) and the black bean aphid Aphis fabae Scopoli (Hemiptera: Aphididae) under laboratory conditions. Second-instar nymphs of the both aphid species were treated with fungal suspensions at concentrations of 106, 107, and 108 conidia/ml. Mortality was recorded on the 3rd, 6th, and 9th days, post-inoculation. Results demonstrated that mortality rates increased with higher conidial concentrations in both aphid species. In M. persicae, the highest mortality rate (95%) was observed at 108 conidia/ml after nine days. Similarly, A. fabae, exhibited 100% mortalityunder the same treatment conditions. The findings suggest that both conidial concentration and incubation period are key factors affecting the pathogenicity of L. Psalliotae, highlighting its potential as a promising biological control agent for aphid management.

Anahtar Kelimeler

• Entomopathogenic fungi
• Myzus persicae
• Aphis fabae
• Lecanicillium psalliotae
• Biological control

Lecanicillium psalliotae (Hypocreales: Cordycipitaceae)’nin Myzus persicae (Sulzer) ve Aphis fabae Scopoli (Hemiptera: Aphididae) üzerindeki öldürücü etkileri

Öz

Bu çalışmada, entomopatojen fungus Lecanicillium psalliotae’nin yeşil şeftali yaprakbiti Myzus persicae, (Sulzer) (Hemiptera: Aphididae) ve bakla yaprakbiti Aphis fabae Scopoli (Hemiptera: Aphididae) üzerindeki patojenik etkinliği laboratuvar koşullarında araştırılmıştır. Fungusun 106, 107, 108 konidi/ml konsantrasyonları yaprakbitlerinin 2. dönemine inoküle edilmiştir. Entomopatojen fungus inoküle edilen yaprakbitleri 3., 6., ve 9. günlerde kontrol edilerek ölü bireyler sayılmıştır. Konsantrasyon yoğunluğu arttıkça her iki yaprakbiti türü için de ölüm oranlarının arttığı belirlenmiştir. Myzus persicae nimflerinde en yüksek ölüm oranı, %95 ile 108 konidi/ml spor yoğunluğu ve 9 günlük inkübasyon süresinde elde edilmiştir. Benzer şekilde, A. fabae'de de aynı konsantrasyon ve inkübasyon periyodunda %100 ölüm oranıyla en etkili sonuç elde edilmiştir. Elde edilen bulgular, spor yoğunluğu ve inkübasyon süresinin L. psalliotae’nin entomopatojenik etkinliğinde belirleyici olduğunu göstermekte ve bu entomopatojen fungusun biyolojik mücadele açısından potansiyelini desteklemektedir.

Anahtar Kelimeler

• Entomopatojen fungus
• Myzus persicae
• Aphis fabae
• Lecanicillium psalliotae
• Biyolojik mücadele

Kaynakça

1. Anonymous 2025. Koppert “Lecanicillium muscarium”. https://www.koppert.com/crop-protection/biological-pest-control/beneficial-microorganisms/lecanicillium-muscarium/ (Accessed: 2 May 2025).
2. Arıcı Ş. E., İ. Gülmez, H. Demirekin, H. Zahmekıran & İ. Karaca 2012. Entomopatojen Fusarium subglutinans ın bakla yaprakbiti, Aphis fabae Scopoli (Hemiptera: Aphididae) üzerine etkisi. Türkiye Biyolojik Mücadele Dergisi, 3(1): 89-96.
3. Ay R., B. Yaşar, O. Demirözer, B. Aslan, S. Yorulmaz, M. Kaya & İ. Karaca 2007. Isparta İli elma bahçelerinde yaygın kullanılan bazı ilaçların kalıntı düzeylerinin belirlenmesi. Turkish Journal of Entomology, 31(4): 297-306.
4. Barnea O., M. Mustata, G.H. Mustata & E. Simon 2005. The parasitoids complex which control the Aphis fabae Scop. colonies installed on different crop species and spontaneous plants. Lucrariles impozionului “Entomofagii si rolul lor ın pastrarea echilibrului natural” Al. I. Cuza” din Iasi, 99-110.
5. Berber G. & A.K. Birgücü 2020. Entomopatojen fungus, Beauveria bassiana (Balsamo)’nın iki farklı izolatının Myzus persicae üzerine ölümcül etkileri. Mehmet Akif Ersoy Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü Dergisi, 11(1): 266-272.
6. Blackman R.L. & V.F. Eastop 1984. Aphids on the world's crops. Identification and information guide. John Wiley & Sons, London, 476 p.
7. Eken C. & E. Demirci 1997. Fungusların biyolojik mücadelede kullanımı. Atatürk Üniversitesi Ziraat Fakültesi Dergisi, 28(1):138–152.
8. Gan Z., J. Yang, N. Tao, L. Liang, Q. Mi, J. Li & K.Q. Zhang 2007. Cloning of the gene Lecanicillium psalliotae chitinase Lpchi1 and identification of its potential role in the biocontrol of root-knot nematode Meloidogyne incognita. Applied Microbiology and Biotechnology, 76: 1309-1317.

9. Garzo E. I., Duque M. & A. Fereres, 2004. Transmission efficiency of different non-persistent viruses infecting melon by four aphid species. Spanish Journal of Agricultural Research 2 (3): 369-376.
10. Gurulingappa P., P.A. McGee & G. Sword 2011. Endophytic Lecanicillium lecanii and Beauveria bassiana reduce the survival and fecundity of Aphis gossypii following contact with conidia and secondary metabolites. Crop protection, 30(3): 349-353.
11. Jung, H.S., H.B. Lee, K. Kim & E.Y. Lee 2006. Selection of Lecanicillium strains for aphid (Myzus persicae) control. The Korean Journal of Mycology, 34(2): 112-118.
12. Metcalfe J.L. 1989. Biological water quality assessment of running waters based on macroinvertebrate communities: history and present status in Europe. Environmental pollution, 60(1-2): 101-139.
13. Özçelik N., G. Bal, F. Demirci & M. Muştu 2013. Isaria farinosa ve Purpureocillium lilacinum un yeşil şeftali yaprakbiti, Myzus persicae (Sulzer) (Hemiptera: Aphididae) üzerine etkileri. Türkiye Biyolojik Mücadele Dergisi, 4(1): 23-29.
14. Özdemir I. & S. Toros 1997. Ankara parklarında mevsimlik süs bitkilerinde zararlı Aphidoidea (Homoptera) türleri. Türkiye Entomoloji Dergisi, 21(4): 283-298.
15. Özdemir S.N. & S.Y. Salman 2021. Relationship between resistance against neonicotinoids and esterase enzyme for Myzus persicae (Sulzer) (Hemiptera: Aphididae) populations in South of Turkey. Journal of Agricultural Sciences, 27(1): 26-31.
16. Pérez-Anzúrez G., P. Mendoza-de Gives, M.Á. Alonso-Díaz, E. von Son-de Fernex, A. Paz-Silva, M.E. López-Arellano & A. Olmedo-Juárez 2024. Lecanicillium psalliotae (Hypocreales: Cordycipitaceae) Exerts Ovicidal and Larvicidal Effects against the Sheep Blood-Feeding Nematode Haemonchus contortus through Its Liquid Culture Filtrates. Pathogens, 13(7): 588.
17. Senthil Kumar C.M., T.K. Jacob, S. Devasahayam, S. D’Silva & N.K. Krishna Kumar 2015. Isolation and characterization of a Lecanicillium psalliotae isolate infecting cardamom thrips (Sciothrips cardamomi) in India. BioControl, 60 (3): 363-373.
18. Shannag H.K. 2007. Effect of black bean aphid, Aphis fabae, on transpiration, stomatal conductance and crude protein content of faba bean. Annals of Applied Biology, 151(2): 183-188.
19. Wainwright M., R.P. Betts & D.M. Teale 1986. Antibiotic activity of oosporein from Verticillium psalliotae. Transactions of the British Mycological Society, 86(1): 168-17.