Biochemical and Histopathological Examination of Changes in Infected Capoeta trutta (Heckel, 1843) with Neoechinorhynchus rutili (Acanthocephala)

Abstract

In this study, the parasitological distribution of Neoechinorhynchus rutili (Acanthocephala) detected in 30 Capoeta trutta (Karabalık) obtained from the Murat River was examined. In addition, it was aimed to examine the intestinal tissues of parasitically infected fish in terms of biochemical and histopathology. Parasite prevalence was calculated as 66.6%, average density 38.5 and average abundance 25.66. This study was divided into three groups, respectively. Group 1 (control); fish that are not infected with parasites, group 2 (fish group that is less infected with parasites); fish less than 30 parasites, group 3 (very infected fish group with parasite); fish with more than 30 parasites. The enzyme activities of superoxide dismutase (SOD), catalase (CAT) and glutathione peroxidase (GPx) in intestinal tissue were lower in group 2 compared to groups 1 and 3 (p <0.05). Glutathione (GSH) level was found lower in group 1 than in infected fish groups. The level of malondialdehyde (MDA) was found to be higher in groups 2 and 3 compared to group 1 (p <0.05). Histopathologically, it was determined that pathological changes in the intestines of infected fish were more pronounced than the control group. According to the results of this study, biochemical and histopathological changes were observed in fish infected with N. rutili according to the parasite density.

Keywords

• Capoeta trutta,Neoechinorhynchus rutili,Biochemical changes,Histopathology

Neoechinorhynchus rutili (Acanthocephala) ile Enfekte Capoeta trutta (Heckel,1843)’daki Değişikliklerin Biyokimyasal ve Histopatolojik Olarak İncelenmesi

Öz

Bu çalışmada, Murat Nehri’nden temin edilen 30 adet Capoeta trutta’da (Karabalık) tespit edilen Neoechinorhynchus rutili’nin (Acanthocephala) parazitolojik olarak dağılımı incelendi. Ayrıca parazitle enfekte balıkların bağırsak dokularının biyokimyasal ve histopatolojik yönden incelenmesi amaçlandı. Parazit yaygınlığı % 66.6, ortalama yoğunluğu 38.5 ve ortalama bolluğu 25.66 olarak hesaplandı. Çalışmada; 1. Grup (Kontrol); parazitle enfekte olmayan balıklar, 2. Grup (parazitle az enfekte balık grubu); 30 parazitten az balıklar, 3. Grup (parazitle çok enfekte balık grubu); 30'dan fazla parazit olan balıklar olarak 3 gruba ayrıldı. Bağırsak dokusundaki süperoksit dismutaz (SOD) , katalaz (KAT) ve glutatyon peroksidaz (GPx) enzim aktiviteleri 1. ve 3. gruplar ile kıyaslandığında 2. Grupta daha düşük bulundu (p<0.05). Glutatyon (GSH) seviyesi enfekte balık gruplarına göre 1. Grupta daha düşük tespit edildi. Malondialdehit (MDA) seviyesinin 1. Grup ile kıyaslandığında, 2. ve 3. Gruplarda daha yüksek olduğu saptandı (p<0.05). Histopatolojik yönden yapılan incelemede kontrol grubuna göre enfekte balıkların bağırsaklarında patolojik değişikliklerin daha belirgin olduğu tespit edildi. Bu çalışmanın sonuçlarına göre N. rutili ile enfekte balıklarda parazit yoğunluğuna göre biyokimyasal ve histopatolojik değişimlerin olduğu gözlendi.

Anahtar Kelimeler

• Capoeta trutta,Neoechinorhynchus rutili,Biyokimyasal Değişiklikler,Histopatoloji

Kaynakça

1. [1] Arda M, Seçer S, Sarıeyyüpoğlu M. Balık Hastalıkları, Medisan Yayın Serisi: 61, II. Baskı Medisan Yayınevi, Ankara; 2005.
2. [2] Dezfuli BS. Cypria reptans (Crustacea: Ostracoda) as an intermediate host of Neoechinorhynchus rutili (Acanthocephala: Eoacanthocephala) in Italy. J Parasitol 1996; 82 (3): 503-5.
3. [3] Barata S, Dörücü M. Karakaya Baraj Gölü Kömürhan bölgesinden yakalanan bazı balıklarda endohelmintlerin araştırılması. Fırat Üniv Fen Bil Derg. 2014; 26(1): 59-68.
4. [4] Gül A, Türk C, İspir Ü, Kırıcı M, Taysı MR, Yonar ME. Murat Nehri’nde (Genç-Bingöl) Avlanan Bazı Cyprinid’lerde Neoechinorhynchus rutili (Müller, 1780) (Acanthocephala)’nin Araştırılması. Erciyes Üniv Vet Fak Derg. 2017; 14(3), 163-8.
5. [5] Dörücü M, İspir Ü. Keban Baraj Gölü’nden avlanabilen balık türlerinde iç paraziter hastalıkların incelenmesi. Fırat Üniv. Fen ve Müh Bil Derg. 2005; 17(2): 400-4.
6. [6] Sağlam N, Sarıeyyüpoğlu M. Capoeta trutta balığında rastlanan Neoechinorhynchus rutili (Acanthocephala)’nin incelenmesi. T Parazitol Derg. 2002; 26(3): 329-31.
7. [7] Aslan B. Ağrı ili Murat Nehri ile Erzurum ili Aras Nehri’nden yakalanan bazı balıkların endohelmintlerinin araştırılması, Yüksek Lisans Tezi, Atatürk Üniv. Fen Bil Enst, Erzurum; 2009.
8. [8] Geldiay R, Balık S. Türkiye Tatlısu Balıkları (Ders Kitabı). III. Baskı. Ege Üniv Su Ürünleri Fak. Yay. 2002.

9. [9] Brown LA. 1993. Anesthesia and Restraint. In: Fish Medicine M.K. Stoskopf ed. Philadelphia: WB Saunders Company; 79-90.
10. [10] Ekingen G. Tatlı Su Balık Parazitleri. Fırat Üniv. Su Ürünleri Y.O, Elazığ: Fırat Ü. Basımevi, 1983.
11. [11] Williams H, Jones A. Parasitic Worm of Fish. London and Bristol: Taylor & Francis, 1994.
12. [12] Sun Y, Larry WO, Ying L. A simple method for clinical assay of superoxide dismutase. Clin Chem. 1988;34(3):497–500.
13. [13] Aebi H. Catalase. In: Bergmeyer HU, ed. Methods in Enzymatic Analysis. New York: Academic Press; 1983: 276–86.
14. [14] Lawrence RA, Burk RF. Glutathione peroxidase activity in selenium-deficient rat liver. Biochem Biophys Res Commun. 1976;71:952–8.
15. [15] Sedlak J, Lindsay RHC. Estimation of total protein bound and nonprotein sulfhydryl groups in tissue with Ellmann’s reagent. Anal Biochem. 1968;25:192–205
16. [16] Placer ZA, Cushmanni LL, Johnson BC. Estimation of products of lipid peroxidation (as malondialdehyde) in biochemical systems. Anal Biochem. 1966;16:359–64.
17. [17] Lowry OH, Rosebrough NJ, Farr AL, Randall RJ. Protein measurement with the folin phenol reagent. J Biol Chem. 1951;193:265–75.
18. [18] Mousavi-Sabet H, Sattari M. First report of Neoechinorhynchus rutili in Cobitis faridpaki (Cobitidae) from the southern Caspian Sea Basin. Croatian J Fisheries. 2013; 71:170-5.
19. [19] Değer S, Değer Y, Ertekin A, Gül, A, Biçek K, Özdal N. Dictyocaulus viviparus ile Enfekte sığırlarda lipit peroksidasyon ve antioksidan durumunun saptanması. Türkiye Parazitol Derg. 2008;32(3):234-37.
20. [20] Kandemir FM, Küçükler S, Çağlayan C. Beneficial effects of silymarin and naringin against methotrexate-induced hepatotoxicity in rats. Atatürk Üniversitesi Vet Bil Derg. 2017;12(2):167-77.
21. [21] Martin HL, Teismann P. Glutathione—a review on its role and significance in Parkinson’s disease. The FASEB journal. 2009;23(10):3263-72.
22. [22] Özaslan MS, Demir Y, Küfrevioğlu OI, Çiftci M. Some metals inhibit the glutathione S‐transferase from Van Lake fish gills. J. Biochem. Mol. Toxic. 2017; 31(11), e21967.
23. [23] Özaslan MS, Demir Y, Aksoy M, Küfrevioğlu ÖI, Beydemir Ş. Inhibition effects of pesticides on glutathione‐S‐transferase enzyme activity of Van Lake fish liver. J. Biochem. Mol. Toxic. 2018; 32(9), e22196.
24. [24] Kandemir FM, Kucukler S, Eldutar E, Caglayan C, Gülçin I. Chrysin protects rat kidney from paracetamol-induced oxidative stress, inflammation, apoptosis, and autophagy: a multi-biomarker approach. Sci pharma. 2017;85(1): 4.
25. [25] Dede S, Deger Y, Deger S, Alkan M. Bazı endoparazitlerle (Fasciola sp.+ Trichostrongylidae sp.+ Eimeria sp.) enfekte koyunlarda lipit peroksidasyonu ve antioksidan durumunun saptanması. Türkiye Parazitol Derg. 2000;24(1):190-3.
26. [26] Kirici M, Turk C, Caglayan C, Kirici M. Toxic Effects of Copper Sulphate Pentahydrate on Antıoxıdant Enzyme Actıvıtıes and Lipid Peroxidation of Freshwater Fish Capoeta umbla (Heckel, 1843) Tissues. Appl. Ecol. Environ. Res. 2017;15(3):1685-96.
27. [27] Kaygusuzoğlu E, Caglayan C, Kandemir FM, Yıldırım S, Kucukler S, Kılınc MA, et al. Zingerone ameliorates cisplatin‐induced ovarian and uterine toxicity via suppression of sex hormone imbalances, oxidative stress, inflammation and apoptosis in female wistar rats. Biomed Pharmacother. 2018;102:517-30.