BibTex RIS Kaynak Göster

Çeşitli Dondurma Yöntemlerinin Hep-2 Ve Tavşan Böbrek Hücrelerinin Kriyoprezervasyonunda Hücre Canlılığına Etkisi

Yıl 2001, Cilt: 58 Sayı: 2, 53 - 60, 01.06.2001

Öz

Bu çalışmada bovin serum albumininin, primer tavşan böbrek hücre kültürü ile HEp-2 devamlı hücre kültürlerininkriyoprezervasyonunda hücre canlılığı üzerindeki rolü araştırıldı. Öncelikle hücrelerin yavaş, orta hızlı ve hızlıdondurma metodlarıyla kriyoprezervasyonu yapıldı. Kriyoprotektan madde olarak dimetil sülfoksit, gliserol ve Rowekarışımı kullanıldı. Hücreler %5 ve %10’luk kriyoprotektan madde ve 0, 5, 10, 20 ve 30g/mL bovin serum albuminiçeren dondurma solüsyonları ile donduruldu. Deneylerde en yüksek hücre canlılığı yavaş dondurma metodundaelde edilirken, bu metotda dondurma solüsyonuna katılan bovin serum albuminin konsantrasyonuyla doğru orantılıolarak hem primer tavşan böbrek hem de HEp-2 devamlı hücrelerinin canlılığı üzerinde istatiksel olarak anlamlı birartış meydana getirdiği tespit edildi p0.05

Kaynakça

  • Fahy GM. The relevance of cryopretectant toxicity to cryobiology. Cryobiology 1991; 28: 467-73.
  • Isenberg HD. Clinical microbiology procedures handbook. ASM, USA, 1992; 8.19.1-8. 20. 12.
  • Doyle A, Griffiths JB, Newell DG. Cell and tissue culture. Laboratory procedures. England: John Wiley and Sons Ltd, 1995; 3A: 1.1 - 3C: 1.1.
  • Mazur P. Freezing of living cells. Mechanism and implication. Am J Physiol 1984; 247: 125-42.
  • Auwera Van Der I, Cornillie F. Cryopreservation of pronucleate mouse ova: slow versus ultrarapid freezing. Hum Reprod 1990; 5 (5): 619-21.
  • McGann LE. Optimal temparature ranges for control of coding rate. Cryobiology 1991; 28: 467-73.
  • Borderie VM, Lopez M, Lombet A, Carvajal GS, Cywiner C. Cryopreservation and culture of human corneal keratocytes. Invest Ophthalmol Vis Sci 1998; 39 (8): 1511-9.
  • Ollero M, Blanco TM, Lopez Perez MJ, Cebrian Perez JA. Surface changes associated with ram sperm cryopreservation revealed by counter-current distribution in an aqueous two-phase system. Effect of different cryoprotectants. J Chromatogr B Biomed Appl 1996; 680 (1-2): 154-64.
  • Shaw JM, Trounsen A. Effect of dimethyl sulfoxide and protein concentration on the viability of two-cell mouse embriyos frozen with a rapid freezing technique. Cryobiology 1989; 26 (5): 413-21
  • Gürtürk S. Viroloji. Ankara Üniversitesi Basımevi, Ankara, 1977; 64-73.
  • Wolfe J, Yan Z, Pope J. Hydration forces and membrane stresses. cryobiological implication and a new technique for measurement. Biophys Chem 1994; 49: 51-8.
  • Anchordoguy TJ, Cechini CA, Crowee JH, Crowee LM. Insights into the cryoprotective mechanism of dimethyl sulfoxide for phospholipid bilayer. Cryobiology 1991; 28: 467-73.
  • Rinkes IH, Toner M, Ezzel RM, Tompkins RG, Yarmush ML. Effect of dimethyl sulfoxide on cultured rat hepatocytes in sandwich configuration. Cryobiology 1992; 29 (4): 443-53.
  • Rowe AW, Cyster E, Kellner A: A liquid nitrogen preservation of red blood cells for transfusion. A low glycerol rapid freeze prosedure. Cryobiology 1968; 5: 119-28.
  • Anchordoguy TJ, Rudolp AS, Carpenter JF, Crowee JH. Modes of interaction of cryoprotectants with membrane phospholipids durings freezing. Cryobiology 1987; 24: 324-31.
  • Kearney JN. Cryopreservation of cultured skin cells. Burns 1991; 17 (5): 380-3.

The Effect Of The Various Freezing Methods On The Cell Viability Of Cryopreserved Hep-2 And Rabbit Kidney Cells

Yıl 2001, Cilt: 58 Sayı: 2, 53 - 60, 01.06.2001

Öz

In this study, the role of bovine serum albumin on the viability of cryo-preserved primary rabbit kidney cell- andHEp-2 continuous cell cultures was studied. Firstly, the cryopreservations of cells were done via slow, intermediateand rapid freezing methods. Dimethyl sulfoxide, glycerol and Rowe mix were used as cryoprotectant agents. Thecells were frozen with the solutions containing 5% and 10% cryoprotectant agents and 0, 5, 10, 20, 30g/mL bovineserum albumin, separately. While the highest cell viability was obtained with slow freezing method, in this method, ithas been determined that the concentration of bovine serum albumin in the freezing solution proportionally increasedthe cell viability both on primary rabbit kidney cells and HEp-2 continuous cells p0.05

Kaynakça

  • Fahy GM. The relevance of cryopretectant toxicity to cryobiology. Cryobiology 1991; 28: 467-73.
  • Isenberg HD. Clinical microbiology procedures handbook. ASM, USA, 1992; 8.19.1-8. 20. 12.
  • Doyle A, Griffiths JB, Newell DG. Cell and tissue culture. Laboratory procedures. England: John Wiley and Sons Ltd, 1995; 3A: 1.1 - 3C: 1.1.
  • Mazur P. Freezing of living cells. Mechanism and implication. Am J Physiol 1984; 247: 125-42.
  • Auwera Van Der I, Cornillie F. Cryopreservation of pronucleate mouse ova: slow versus ultrarapid freezing. Hum Reprod 1990; 5 (5): 619-21.
  • McGann LE. Optimal temparature ranges for control of coding rate. Cryobiology 1991; 28: 467-73.
  • Borderie VM, Lopez M, Lombet A, Carvajal GS, Cywiner C. Cryopreservation and culture of human corneal keratocytes. Invest Ophthalmol Vis Sci 1998; 39 (8): 1511-9.
  • Ollero M, Blanco TM, Lopez Perez MJ, Cebrian Perez JA. Surface changes associated with ram sperm cryopreservation revealed by counter-current distribution in an aqueous two-phase system. Effect of different cryoprotectants. J Chromatogr B Biomed Appl 1996; 680 (1-2): 154-64.
  • Shaw JM, Trounsen A. Effect of dimethyl sulfoxide and protein concentration on the viability of two-cell mouse embriyos frozen with a rapid freezing technique. Cryobiology 1989; 26 (5): 413-21
  • Gürtürk S. Viroloji. Ankara Üniversitesi Basımevi, Ankara, 1977; 64-73.
  • Wolfe J, Yan Z, Pope J. Hydration forces and membrane stresses. cryobiological implication and a new technique for measurement. Biophys Chem 1994; 49: 51-8.
  • Anchordoguy TJ, Cechini CA, Crowee JH, Crowee LM. Insights into the cryoprotective mechanism of dimethyl sulfoxide for phospholipid bilayer. Cryobiology 1991; 28: 467-73.
  • Rinkes IH, Toner M, Ezzel RM, Tompkins RG, Yarmush ML. Effect of dimethyl sulfoxide on cultured rat hepatocytes in sandwich configuration. Cryobiology 1992; 29 (4): 443-53.
  • Rowe AW, Cyster E, Kellner A: A liquid nitrogen preservation of red blood cells for transfusion. A low glycerol rapid freeze prosedure. Cryobiology 1968; 5: 119-28.
  • Anchordoguy TJ, Rudolp AS, Carpenter JF, Crowee JH. Modes of interaction of cryoprotectants with membrane phospholipids durings freezing. Cryobiology 1987; 24: 324-31.
  • Kearney JN. Cryopreservation of cultured skin cells. Burns 1991; 17 (5): 380-3.
Toplam 16 adet kaynakça vardır.

Ayrıntılar

Birincil Dil Türkçe
Bölüm Araştırma Makalesi
Yazarlar

Nizami Duran Bu kişi benim

Fügen Yarkın Bu kişi benim

Adil M. Allahverdiyev Bu kişi benim

Yayımlanma Tarihi 1 Haziran 2001
Yayımlandığı Sayı Yıl 2001 Cilt: 58 Sayı: 2

Kaynak Göster

APA Duran, N., Yarkın, F., & Allahverdiyev, A. M. (2001). Çeşitli Dondurma Yöntemlerinin Hep-2 Ve Tavşan Böbrek Hücrelerinin Kriyoprezervasyonunda Hücre Canlılığına Etkisi. Türk Hijyen Ve Deneysel Biyoloji Dergisi, 58(2), 53-60.
AMA Duran N, Yarkın F, Allahverdiyev AM. Çeşitli Dondurma Yöntemlerinin Hep-2 Ve Tavşan Böbrek Hücrelerinin Kriyoprezervasyonunda Hücre Canlılığına Etkisi. Turk Hij Den Biyol Derg. Haziran 2001;58(2):53-60.
Chicago Duran, Nizami, Fügen Yarkın, ve Adil M. Allahverdiyev. “Çeşitli Dondurma Yöntemlerinin Hep-2 Ve Tavşan Böbrek Hücrelerinin Kriyoprezervasyonunda Hücre Canlılığına Etkisi”. Türk Hijyen Ve Deneysel Biyoloji Dergisi 58, sy. 2 (Haziran 2001): 53-60.
EndNote Duran N, Yarkın F, Allahverdiyev AM (01 Haziran 2001) Çeşitli Dondurma Yöntemlerinin Hep-2 Ve Tavşan Böbrek Hücrelerinin Kriyoprezervasyonunda Hücre Canlılığına Etkisi. Türk Hijyen ve Deneysel Biyoloji Dergisi 58 2 53–60.
IEEE N. Duran, F. Yarkın, ve A. M. Allahverdiyev, “Çeşitli Dondurma Yöntemlerinin Hep-2 Ve Tavşan Böbrek Hücrelerinin Kriyoprezervasyonunda Hücre Canlılığına Etkisi”, Turk Hij Den Biyol Derg, c. 58, sy. 2, ss. 53–60, 2001.
ISNAD Duran, Nizami vd. “Çeşitli Dondurma Yöntemlerinin Hep-2 Ve Tavşan Böbrek Hücrelerinin Kriyoprezervasyonunda Hücre Canlılığına Etkisi”. Türk Hijyen ve Deneysel Biyoloji Dergisi 58/2 (Haziran 2001), 53-60.
JAMA Duran N, Yarkın F, Allahverdiyev AM. Çeşitli Dondurma Yöntemlerinin Hep-2 Ve Tavşan Böbrek Hücrelerinin Kriyoprezervasyonunda Hücre Canlılığına Etkisi. Turk Hij Den Biyol Derg. 2001;58:53–60.
MLA Duran, Nizami vd. “Çeşitli Dondurma Yöntemlerinin Hep-2 Ve Tavşan Böbrek Hücrelerinin Kriyoprezervasyonunda Hücre Canlılığına Etkisi”. Türk Hijyen Ve Deneysel Biyoloji Dergisi, c. 58, sy. 2, 2001, ss. 53-60.
Vancouver Duran N, Yarkın F, Allahverdiyev AM. Çeşitli Dondurma Yöntemlerinin Hep-2 Ve Tavşan Böbrek Hücrelerinin Kriyoprezervasyonunda Hücre Canlılığına Etkisi. Turk Hij Den Biyol Derg. 2001;58(2):53-60.