Adana Yöresi Atlarında Babesia equi ve Babesia caballi'nin Yayılışının Mikroskobik ve Serolojik (cELİSA) Yöntemlerle Araştırılması

Öz

Anahtar Kelimeler

• -

Adana Yöresi Atlarında Babesia equi ve Babesia caballi'nin Yayılışının Mikroskobik ve Serolojik (cELİSA) Yöntemlerle Araştırılması

Öz

Bu çalışma ile 2004 yılı Haziran-Ekim ayları arasında Adana’nın 8 ilçesinden (Merkez-Yüreğir, Kozan, Feke, Saimbeyli, Aladağ, Pozantı, Karaisalı ve Ceyhan) rastgele seçilen farklı yaş gruplarındaki 120 erkek ve 100 dişi olmak üzere toplam 220 atta serolojik (cELISA) ve mikroskobik yöntemlerle Babesia equi ve B. caballi’nin teşhisi ve bu türleri nakleden vektör kene türlerinin tespiti amaçlanmıştır. Çalışmanın materyalini atların kulak uçlarından ve vena jugularislerinden elde edilen kan örneklerinden hazırlanan froti ve serumlar oluşturmuştur. Sahada hazırlanan sürme kan frotileri metil alkolle tespit edildikten sonra Giemsa ile boyanmış ve mikroskopta B. equi ve B. caballi yönünden incelenmiştir. Ancak incelenen frotilerin hiçbirisinde B. equi ve B. caballi’nin piroplasm formlarına rastlanmamıştır. cELISA ile yapılan serolojik muayenede, ileri yaş grubundaki atlarda daha fazla olmak üzere %56.8 oranında B. equi antikorları saptanmış, B. caballi antikorları ise tespit edilememiştir. Muayene edilen atların üzerinden toplanan kenelerin, babesiosisin bilinen vektörleri olan Hyalomma marginatum ve Rhipicephalus turanicus oldukları anlaşılmıştır. Sonuç olarak Adana yöresinde atlarda subklinik ve kronik Babesia enfeksiyonlarının yaygın olduğu ve portör atların belirlenmesinde serolojik testlerin mikroskobik yöntemlerden daha duyarlı olduğu anlaşılmıştır

Anahtar Kelimeler

• Adana, Babesia equi, Babesia caballi, Froti, cELISA

Kaynakça

1. Avarzed A, De Wall DT, Igarashi I, Saito A, Oyamada T, Toyoda Y et al. (1997). Prevalance of equine piroplasmosis in central Mongolia, Onderstepoort. J Vet Res, 64,141-145.
2. Baldani CD, Machado RZ, Botteon PTL, Takakura FS, Massard CL (2004). An enzyme linked immunosorbent assay for the detection of IgG antibodies against Babesia equi in horses. Cienc Rural, 34, 1525- 1529.
3. Balkaya İ (2004). Türkiye’nin farklı bölgelerinde atlarda B. equi ve B. caballi’nin yayılışının mikroskobik ve serolojik yöntemlerle araştırılması. Fırat Üniversitesi Sağlık Bilimleri Enstitüsü.
4. Bashuriddin JB, Cama C, Rebelo E (1999). Molecular detection of Babesia equi and Babesia caballi in horses blood by PCR amplification of part of the 16S rRNA gen. Vet Parasitol, 84, 75-83.
5. Boldbaatar D, Xuan X, Battsetseg B, Igarashi I, Batur B, Batsukh Z et al. (2005). Epidemiological study of equine piroplasmosis in Mongolia. Vet Parasitol, 27, 35-38.
6. Brüning A, Phipps P, Posnett E (1997). Monoclonal antibodies against Babesia caballi and Babesia equi and their application in serodiagnosis. Vet Parasitol, 68, 11-26.
7. Edwards RZ, Moore H, LeRoy BE, Latimer KS (2011). Equine Babesiosis: http://www.vet.uga.edu/vpp/clerk/edwards/index.php
8. Farah AW, Hegazy NA, Romany MM, Soliman YA, Daoud AM (2003). Molecular detection of Babesia equi in infected and carrier horses by polymerase chain reaction. Egypt J Immunol,10, 73-79.

9. Guimaraes AM, Lima JD, Ribeiro MFB (2003). Ultrastructure of Babesia equi trophozoites isolated in minas gerais, brazil. Pesq Vet Bras, 23,101-104.
10. Karaer Z, Yukarı BA, Aydın L (1997). Türkiye Keneleri ve Vektörlükleri İçinde: Parazitoloji'de Artropod Hastalıkları ve Vektörler, Özcel MA, Daldal N (Ed), 363-433, Ege Üniversitesi Basımevi, İzmir.
11. Kaufmann J (1996). Parasitic Infections of Domestic Animals: A Diagnostic Manual. Birkhauser Verlag, Berlin.
12. Kumar S, Kumar Y, Malhotra DV, Dhar S, Nichani AK (2003). Standardization and comparison of serial dilution and single dilution elisa using different antigenic preparations of the Babesia equi parasite. Vet Res, 34, 71-83.
13. Martin R (1999). Equine piroplasmosis: the temporary importation of seropositive horses into Australia. Aust Vet J, 7, 308-309.
14. Merdivenci A (1969). Türkiye Keneleri Üzerine Araştırmalar, İstanbul Üniversitesi Cerrahpaşa Tıp Fak Yayınları, İstanbul.
15. Rampersad J, Cesar E, Camphell MD, Samlal M, Ammons D (2003). A field evaluation of PCR for the routine detection of Babesia equi in horses. Vet Parasitol, 114, 81-87.
16. Sarı B, Kırmızıgül AH, Deniz A, Taşçı GT (2010). Kars ve Ardahan yöresinde kış mevsiminde atlarda Babesia caballi ve Theileria equi ’nin seroprevalansı. Kafkas Univ Vet Fak Derg, 16, 657-661.
17. Sevinç F, Maden M, Kumaş C, Sevinç M, Ekici ÖD (2008). A comparative study on the prevalence of Theileria equi and Babesia caballi infections in horse sub-populations in Turkey. Vet Parasitol; 156, 173-177.
18. Shkap V, Cohen I, Leibovitz B, Savitsky, Pipano E, Avni G et al (1998). Seropravalance of Babesia equi among horses in Israel using competitive inhibition ELISA and IFA assays. Vet Parasitol, 76, 251- 259.
19. Tanaka T, Xuan X, Ikadai H, Nagasawa H, Fujisaki K, Mikami T et al (1999). Expression of Babesia equi merozoite antigen- 2 by recombinant Baculovirus and its use in the ELISA. Int J Parasitol, 29, 1803-1808.
20. Xu Y, Zhang S, Huang X, Bayin C, Xuan X, Igarashi I et al (2003). Seroepidemiologic studies on Babesia equi and Babesia caballi infections in horses in jilin province of China. J Vet Med Sci, 65, 1015- 1017.
21. Xuan X, Igarashi I, Avarzed A, Ikadai N, Inoue N, Nagasawa H et al (1998). Diagnosis of Babesia caballi infection in horses by polymerase chain reaction. J Protozool Res, 8, 85-89.
22. Xuan X, Nagai A, Battsetseg B, Fukumoto S, Makala LH, Inoue N et al (2001a). Diagnosis of equine piroplasmosis in Brazil by serodiagnostic methods with recombinant antigens. J Vet Med Sci, 63, 1159-1160.
23. Xuan X, Larsen A, Ikadai H, Tanaka T, Igarashı I, Nagasawa H et al (2001b). Expression of Babesia equi merozoite antigen 1 in insect cells by recombinant Baculovirus and evaluation of its diagnostic potential ELISA. J Clinic Microb, 39, 705-709.