Preimplantasyon Sürecindeki Keçilerin Dişi Genital Kanal Organlarında Plazma Hücresi ve Alfa Naftil Asetat Esteraz Pozitif Lenfositlerin Dağılımı

Öz

Anahtar Kelimeler

• -

Preimplantasyon Sürecindeki Keçilerin Dişi Genital Kanal Organlarında Plazma Hücresi ve Alfa Naftil Asetat Esteraz Pozitif Lenfositlerin Dağılımı

Öz

Bu çalışmada, keçilerde preimplantasyonun 6. gününde (Deneme grubu) ve anöstrusde (Kontrol grubu) dişi genital kanal organlarında plazma hücreleri ile alfa-naftil asetat esteraz (ANAE) (+) lenfositlerin dağılımının belirlenmesi amaçlandı. Çalışmada 2-4 yaşlarında, 12 adet renkli tiftik keçisi kullanıldı ve 2 eşit gruba ayrıldı. Keçilerden alınan doku örneklerinden bir kısmından kriyostat kesitler hazırlanarak ANAE (+) lenfositleri belirlemek için ANAE enzim demostrasyonu yapıldı. Doku örneklerinin diğer yarısı formol-alkol ile tespit edilerek plazma hücrelerinin belirlenmesi için rutin parafin kesitler hazırlandı. Kontrol grubuna göre preimplantasyon (deneme) grubunda hem ANAE (+) lenfositlerin hem de plazma hücrelerinin sayısının azaldığı belirlendi. Bununla birlikte, plazma hücrelerinin sayısının deneme grubunda korpus uteri, kornu uteri ve tuba uterinada, kontrol grubuna göre istatistiksel olarak anlamlı derecede azaldığı belirlendi (p < 0.05). ANAE (+) lenfositlerin deneme grubunda en yoğun olarak kornu uteride, en az olarak da serviks uteri ve tuba uterinalarda tespit edildi. Sonuç olarak, preimplantasyon sürecinde keçi genital kanal organlarında, plazma hücreleri ile ANAE (+) lenfositlerin sayısal dağılımlarının fizyolojik değişimlere bağlı olarak değiştiği belirlendi

Anahtar Kelimeler

• Preimplantasyon, Plazma hücresi, Lenfosit, Keçi

Kaynakça

1. Aştı RN, Alabay B, Kurtdede N, Altunay H, Ergün L (1996). Farklı hayvan türlerinin perifer kan lökositlerinde alfa naftil asetat esteraz aktivitesinin belirlenmesi. AÜ Vet Fak Derg, 43, 129–133.
2. Aştı RN, Tanyolaç A, Kurtdede N, Özen A (1997). T ve B Lenfositlerin Ankara Keçilerinin Lenfoid Dokularındaki Dağılımı. Tr J Vet Anim Sci, 21, 99-105.
3. Banks WJ (1993). Applied Veterinary Histology, Third Edition, Mosby Year Book, Missouri.
4. Bankroft JD, Cook HC (1984). Manuel of Histological Techniques, Churchill Livingstone, New York.
5. Başaran A (2005). Tıbbi Biyoloji, Genişletilmiş 7. Baskı, Güneş ve Nobel Tıp Kitapevleri, İstanbul.
6. Bonatz G, Hansman L, Buchholz F, Mettler L, Radzun JH, Semm K (1992). Macrophage and lymphocyte subtypes in the endometrium during different phases of the ovarian cycle. Int Gynecol Obstet, 37, 29-36.
7. Böck P (1989). Romeis Mikroskopische Tecknik, 17. Aufl., Urban und Schwarzenberg, Munchen, Wien, Baltimore.
8. Bulmer JN, Longfellow M, Ritson A (1991). Leukocytes and Resident Blood Cells in Endometrium. Ann NY Acad Sci, 622, 57-68.

9. De M, Choudhuri R, Wood GW (1991). Determination of the number and distribution of macrophages, lymphocytes, and granulocytes in the mouse uterus from mating through implantation. J Leukoc Biol, 50(3): 252-262.
10. De M, Sanford T, Wood GW (1993). Relationship between macrophage colony-stimulating factor production by uterine epithelial cells and accumulation and distribution of macrophages in the uterus of pregnant mice. J Leukoc Biol, 53, 240-248.
11. Demir R (2006). Histoloji ve Hücre Biyolojisi, Palme Yayıncılık, Ankara.
12. Engelhard H, Croy BA, King GJ (2002). Conceptuses influence the distribution of uterine leukocytes during early porcine pregnancy. Biol Reprod, 66, 1875-1880.
13. Fubara ES, Freter R (1973). Protection against enteric bacterial infection by secretory IgA antibodies. J Immunol, 111, 395-403.
14. Hawk HW, Brinsfield TH, Turner GD, Whitemore GW, Norcross, MA (1964). Effect of ovarian status on induced acute inflammatory responses in cattle uteri. Am J Vet Res, 25, 362–366.
15. Hussein AM, Newby TJ, Bourne FJ (1983). Immunohistochemical studies of the local immune system in the reproductive tract of the sow. J Reprod Immunol, 5(1): 1-15.
16. Inoue M, Yamamato H, Hirara H (1991). Ultrastructural cytochemical characterization of alpha-naphtyl acetate esterase in chicken monocytic cell lines. J Vet Med Sci, 53, 415-418.
17. Karaca T, Arıkan Ş, Kalender H, Yörük M (2007). Distribution and quantitative patterns of T lymphocytes in the female reproductive tract and ovary throughout the oestrus cycle of Angora Goats. Medycna Wet, 63(11): 1320-1323.
18. Karaca T, Cemek M, Kanter M (2006). Lipid peroxidation and antioxidant levels and alpha naphthyl acetate esterase activity of peripheral blood lymphocytes in mallard, Muscovy and Pekin ducks. Acta Vet Brno, 75, 33–38.
19. King A, Wellings V, Gardner L, Loke WY (1989). Immunocytochemical characterization of the unusuallarge granular lymphocytes in human endometrium throughout the menstrual cycle. Hum Immunol, 24, 195-205.
20. Koç A (1999). Sıçanlarda implantasyonda endometriyum dokusunun humoral ve hücresel savunma sistemi hücreleri üzerine histokimyasal ve histometrik araştırmalar. Doktora Tezi, YYÜ Sağ Bil Enst, Van.
21. Martinez MP, Luna J, Mena R, Romano, MC (2002). Lymphocytes and T lymphocyte subsets are regionally distributed in the female goat reproductive tract: Influence of the stage of the oestrus cycle, Res Vet Sci, 72, 115-121.
22. Martinez CM, Buendia AJ, Sanchez J, Navarro JA (2005). Immunophenotypical subpopulations of the uterus of non-pregnant and pregnant goats. Anat Histol Embryol, 34(4): 240-246. of lymphocyte