EFFECTS ON ESCHERICHIA COLI OF SOLUTIONS CONTAINING PROPOLIS AND POTASSIUM TITANIUM PHOSPHATE LASER IN ROOT CANAL IRRIGATION

Year 2011, Volume: 2011 Issue: 1, 15 - 21, 01.01.2011

Doç.dr. İhsan Hubbezoğlu Dr.dt. Ülkü Özan Prof.dr. Zeynep Sümer

Abstract

-

Keywords

-

KÖK KANAL İRRİGASYONUNDA PROPOLİS İÇERİKLİ SOLÜSYONLAR İLE POTASYUM TİTANYUM FOSFAT LAZERİN ESCHERİCHİA COLİ ÜZERİNE ETKİLERİ

Abstract

Amaç: Kök kanal irrigasyonunda, farklı konsantrasyonlarda hazırlanmış propolis solüsyonlarının (PS) Escherichia coliüzerine antimikrobiyel etkinliğinin karşılaştırılmasıdır. Ayrıca Potasyum Titanyum Fosfat (KTP) lazerin kök kanalında irrigasyon solüsyonlarından sonra uygulanmasının E. coliüzerine antimikrobiyel etkinliğinin değerlendirilmesi amaçlandı. Gereç ve Yöntem: Çalışmada, 40 adet yeni çekilmiş tek köklü mandibular küçük azı insan dişi kullanıldı. Beş farklı gruplara ayrıldı; Grup 1 serum fizyolojik (pozitif kontrol) Grup 2 PS %5, Grup 3 PS %10, Grup 4 PS %20, Grup 5 NaOCl %2,5 (negatif kontrol).Çalışma boyutları hesaplanan dişler lastik kapaklı cam şişelere yerleştirildi.ProTaper kök kanal aletleri ile crown-down tekniği kullanılarak prepare edildi. Etilen oksitle steril edilen cam şişelerdeki dişler laminar air flow’da E. coli ile kontamine edildi. Her diş için 2 ml irrigasyon solusyonu kullanıldı. 24 saat sonra bulanıklıklarına bakılarak sonuçlar değerlendirildi. Son aşama olarak tüm gruplara kök kanallarına KTP lazer uygulandı ve mikrobiyal üreme olup olmadığı belirlendi. Veriler istatistiksel olarak Kruskal Wallis testi, Mann Whitney-U testi, Ki-kare, Friedman testi ve Wilcoxon testleri ile değerlendirildi. Bulgular: Propolis %10 ve %20’lik solüsyonlarının etkinliği istatistiksel olarak önemli bulunurken (p0,05). Tüm propolis solüsyonlarından sonra KTP lazer kullanıldığında istatistiksel olarak önemsiz bulundu (p>0,05). Sonuç: Propolis yüksek konsantrasyonlarda kök kanallarında E. coli üzerine antibakteriyel etkinlik gösterebilir. KTP lazer, kök kanallarına irrigasyon solüsyonlarından sonra uygulandığında E. coli ’yekarşı yeterli antimikrobiyel etki gösteremedi

Keywords

propolis, irrigasyon, lazer, E. coli

References

• Fabricius L, Dahlén G, Sundqvist G, Happonen RP, Möller AJR. Influence of residual bacteria on periapical tissue healing after chemomechanical treatment and root filling of experimentally infected monkey teeth. Eur J Oral Sci 2006; 114 : 278-85.
• Sjögren U, Figdor D, Persson S, Sundqvist G. Influence of infection at the time of root filling on the outcome of endodontic treatment of teeth with apical periodontitis. Int Endod J 1997; 30: 297-306.
• Farber PA, Seltzer S. Endodotnic microbiology, I. Etiology. J Endod 1988; 14: 363-71.
• Küçükay K, Küçükay S. Endodontik mikrobiyoloji. Oral 1992; 9(97): 6-10.
• Harrison JW, Wagner GW, Henry CA. Comparison of the antimicrobial effectiveness of reguar and fresh scent Clorox. J Endod 1990; 16: 328-30.
• Hepşen İ F, Tilgen F, Er H. Propolis: Tıbbi özellikleri ve oftalmolojik kullanımı. Turgut Özal Merkezi Tıp Dergisi 1996; 3: 386-91. on dental caries in rats. Caries Res 1991; 25: 347-51.
• Koo H, Rosalen PL, Cury JA, Park YK, Ikegaki M, Sattler A. Effect of Apis mellifera propolis from two Brazilian regions on caries development in desalivated rats. Caries Res 1999; 33: 393-400.
• Bretz WA, Chiego DJ, Marducci MC, Cunha I, Custódio A, Shneider LGZ. Preliminary report on the effects of propolis on wound healing in the dental pulp. Naturforsch 1998; 53: 1045-8.
• Özan Ü, İ. Hubbezoğlu, Z. Sümer. Sodyum hipoklorit, klorheksidin ve propolis içerikli solüsyonların potasyum titanyum fosfat lazer ile birlikte kullanımlarının Candida albicans üzerine etkinliklerinin incelenmesi. Cumhuriyet Üniversitesi Dişhekimliği Fakültesi Dergisi 2009; 12(1): 33-38.
• Kustarci A, Sumer Z, Altunbas D, Kosum S. Bactericidal effect of KTP laser irradiation against Enterococcus faecalis compared with gaseous ozone: an ex vivo study. Oral Surgery, Oral Medicine, Oral Pathology, Oral Radiology, and Endodontology 2009; 107(5): 73-9.
• Schoop U, Kluger W, Dervisbegovic S, Goharkhay K, Wernisch J, Georgopoulos A, Sperr W, Moritz A. Innovative Wavelengths in Endodontic Treatment. Lasers Surg Med 1996; 38: 624–30.
• Hubbezoğlu İ, Özan Ü, Sümer Z. Sodyum hipoklorit, klorheksidin ve propolis içerikli solüsyonların potasyum titanyum fosfat lazer ile birlikte kullanımlarının streptococcus mutans üzerine etkinliklerinin incelenmesi. Selçuk Üniversitesi Diş Hekimliği Fakültesi Dergisi 2009; 18(3): 281-287.
• Kapdan A. Farklı kavite dezenfeksiyon yöntemlerinin etkinliklerinin değerlendirilmesi ve kompomer restorasyonlarının mikrosızıntı ve bağlanma kuvvetlerine etkileri, Doktora Tezi, Cumhuriyet Üniversitesi, Sağlık Bilimleri Enstitüsü, Sivas, 2009.
• Koo H, Gomes BPFA, Rosalen PL, Ambrosano GMB, Park YK, Cury JA. In vitro antimicrobial activity of propolis and arnica montana against oral pathogens. Arch Oral Biol 2000; 45: 141-8.
• Koo H, Vacca Smith AM, Bowen WH, Rosalen PL, Cury JA, Park YK. Effects of apis mellifera propolis on the activities of streptococcal glucosyltransferases in solution and adsorbed onto saliva-coated hydroxyapatite. Caries Res 2000; 34: 418-26.
• Koo H, Rosalen PL, Cury JA, Ambrosano GM, Murata RM, Yatsuda R, Ikegaki M, Alencar SM, Park YK. Effect of a new variety of Apis mellifera propolis on mutans streptococci. Curr Microbiol 2000; 41: 192–6.
• Park YK, Koo H, Abreu JA, Ikegaki M, Cury JA, Rosalen PL. Antimicrobial activity of propolis on oral microorganisms. Curr Microbiol 1998; 36: 24–8.
• Koo H, Pearson SK, Scott-Anne K, Abranches J, Cury JA, Rosalen PL, Park YK, Marquis RE, Bowen WH. Effects of apigenin and tt-farnesol on glucosyltransferase activity, biofilm viability and caries development in rats. Oral Microbiol Immunol 2002; 17: 337–43.
• Garedewa A, Schmolza E, Lamprechtb I. Microbiological and calorimetric investigations on the antimicrobial actions of different propolis extracts: an in vitro approach. Thermochimica Acta 2004; 422: 115–24.
• Marcucci MC. Propolis: Chemical composition, biological properties and therapeutic activity. Apidologie 1995; 26: 76–81.
• Kujumgiev A, Tsvetkova I, Serkedjieva Yu, Bankova V, Christov R, Popov S. Antibacterial, antifungal and antiviral activity of propolis of different geographic origin. J Ethnopharmacol 1999; 64: 235-40.
• Santos VR, Pimenta FJGS, Aguiar MCF, Carmo MAV, Naves MD, Mesquita RA. Oral Candidiasis treatment with brazilian ethanol propolis extract. Phytotherapy Research 2005; 19, 652-4.
• Aliyazıcıoğlu Y, Değer O, Ovali E, Barlak Y, Hosver I, Tekelipğlu Y, Karahan SC. Effects of Turkish pollen and propolis extracts on respiratory burst for K-562 cell lines. Int Immunopharmacol 2005; 5: 1652–7.
• Al-Shader A, Wallace J, Agarwal S, Bretz W, Baugh D. Effect of propolis on human fibroblasts from the pulp and periodontal ligament. J Endod 2004; 30: 359–61.
• Ayhan H, Sultan N, Cirak M, Ruhi MZ, Bodur H. Antimicrobial effects of various endodontic irrigants on selected microorganisms. Int Endod J 1999; 32: 99-102.
• D'Arcangelo C, Varvara G, De Fazio P. An evaluation of the action of different root canal irrigants on facultative aerobic-anaerobic, obligate anaerobic, and microaerophilic bacteria. J Endod 1999; 25: 351-3.
• Sassone LM, Fidel R, Fidel S, Vieira M, Hirata R . The influence of organic load on the antimicrobial activity of different concentrations of NaOCl and chlorhexidine in vitro. Int Endod J 2003; 36 (12): 848-52.
• Sassone LM, Fidel RA, Fidel SR, Dias M, Hirata RJ. Antimicrobial activity of different concentrations of NaOCl and chlorhexidine using a contact test. Braz Dent J 2003; 14 (2): 99-102.
• Kujumgiev A, Tsvetkova I, Serkedjieva Yu, Bankova V, Christov R, Popov S. Antibacterial, antifungal and antiviral activity of propolis of different geographic origin. J Ethnopharma 1999; 64: 235-40.
• Bankova V, Christov R, Popov S. Antibacterial activity of essential oils from Brazilian propolis, Fitoterapia 1999; 70: 190-3.
• Silici S. Propolisin bazı antimikrobiyel ve farmakolojik aktiviteleri üzerine bir araştırma. Zootekni Anabilim Dalı, Çukurova Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü, 2003, Adana.
• Moreno MI, Isla MI, Sampietro AR, Vattuone MA. Comparison of the free radical-scavenging activity of propolis from several regions of Argentina. J Ethnopharmacol 2000; 71:109-14.
• Sforcin JM, Fernandes JR A, Lopes CAM, Bankova V, Funarı SRC. Seasonal effect on Brazilian propolis antibacterial activity. J Ethnopharmacol 2000; 73: 243-9.
• Kartal M, Yıldız S, Kaya S, Kurucu S, Topçu G. Antimicrobial activity of propolis samples from two different regions of Anatolia. J Ethnopharmacol 2003; 86: 69-73.
• Stepanović S, Antić N, Dakić I, Švabić-Vlahović M. In vitro antimicrobial activity of propolis and synergism between propolis and antimicrobial drugs. Microbiol Res 2003; 158: 353-7.
• Kimura Y, Arrastia-Jitosho AMA, Wilder-Smith P. Thermal, microstructural and physicochemical effects of nanosecond pulsed Nd: YAG laser irradiation on dentin. Laser Life Sci 1998;8: 37– 50.
• Kimura Y, Wilder-Smith P, Arrastia-Jitosho AMA, Liaw L-HL, Matsumoto K, Berns MW. Effects of nanosecond pulsed Nd: YAG laser irradiation on dentin resistance to artificial caries-like lesions. Lasers Surg Med 1997;20: 15–21.