Bitki Büyümesini Teşvik Eden Mikroorganizmaların 41B Asma Anacı Çeliklerinde Köklenme ve Sürgün Gelişmesine Etkileri

Abstract

Bağcılıkta verim ve kalitede iyileşmenin sağlanması ve sürdürülebilir bir bağcılık uygulaması için çevre üzerine olumsuz etkileri olan üretim girdileri yerine asma anaçları ve üzüm çeşitleri ile başarılı simbiyotik ilişkiler kurabilen mikroorganizmaların tespiti ve pratikte uygulamaya konulmaları giderek daha önemli hale gelmektedir. Kullanılan mikroorganizmaların etkinlikleri türler ve suşlar düzeyinde ve uygulandıkları bitkisel materyale göre farklılıklar göstermektedir. 41B asma anacı, kirece dayanımının yüksek, vejetasyon süresinin nispeten kısa ve erkenciliği teşvik etmesi gibi özelliklerinin yanı sıra köklenme ve aşı başarısındaki düşüklük gibi nitelikleriyle bilinmektedir. Bu çalışmada, 41B asma anacı çeliklerinin farklı bakteri [OSU142 (Bacillus subtilis) 10⁹ CFU ml⁻¹, A18 (Agrobacterium rubi) 10⁹ CFU ml⁻¹] ve mantar [Simderma (Trichoderma harzianum) 10⁸ CFU ml⁻¹] uygulamalarının köklenme (kök yaş ağırlığı, kök kuru ağırlığı) ve sürgün gelişimi (sürgün boğum sayısı, sürgün çapı, sürgün uzunluğu, sürgün yaş ağırlığı, sürgün kuru ağırlığı) üzerine etkileri incelenmiştir. Mikroorganizma uygulamalarının 41B asma anacının vejetatif gelişmesini teşvik ettiği tespit edilmiştir. Sürgün boğum sayısı (10.60 adet/bitki) ve sürgün çapı (2.77 mm) değerlerinde OSU-142, sürgün uzunluğu (28.53 cm) ve klorofil içeriğinde (21.50 SPAD) A 18’in daha üstün değerler verdikleri belirlenmiştir. Asma fidan kalitesinin iyileştirilmesinde mikroorganizmalardan faydalanılabileceği gösterilmiştir.

Keywords

• Bağ
• çelik
• köklendirme
• Bacillus subtilis
• Agrobacterium rubi
• Trichoderma harzianum

Effects of Plant Growth Promoting Microorganisms on Rooting and Shoot Growth of 41B Rootstock Cuttings

Abstract

It is becoming increasingly important to determination of microorganisms capable of establishing successful symbiotic relationships with vine rootstocks and grape varieties instead of production inputs which have negative impacts on the environment for yield and quality improvement in viticulture and a sustainable vineyard application. The activities of the microorganisms used vary according to the species and strain level and the plant material they are applied to. 41B rootstock is known for its high limestone resistance, promoting earliness and relatively short of the vegetation period, and low rooting and grafting success. This study was conducted to investigate the effects of different bacteria [OSU142 (Bacillus subtilis) 10⁹ CFU ml⁻¹, A18 (Agrobacterium rubi) 10⁹ CFU ml⁻¹] and fungus [Simderma (Trichoderma harzianum) 10⁸ CFU ml⁻¹] applications on 41B grapevine rootstock for the effects of the applications on the rooting (fresh weights of roots and dry weights) and shoot development (shoot node number, shoot diameter, shoot length, fresh weights of shoots and dry weights of the shoots were measured. It has been determined that the application of microorganisms promoted the vegetative growth of 41B grape rootstock. The highest shoot node numbers (10.60 number/plant) and shoot diameter (2.77 mm) were obtained from OSU-142, and the highest shoot length (28.53 cm) and chlorophyll content (21.50 SPAD) were obtained from A18. It has been shown that microorganisms can be used to improve the quality of grapevine saplings.

Keywords

• Vineyard
• cutting
• rooting
• Bacillus subtilis
• Agrobacterium rubi
• Trichoderma harzianum

References

1. Afzal, A. and A. Bano, 2008. Rhizobium and Phosphate Solubilizing Bacteria Improve the Yield and Phosphorus Uptake in Wheat (Triticum aestivum). Int. J. Agric. Biol. 10: 85-88.
2. Alleweldt, G. and J.V. Possingham, 1988. Progress in Grapevine Breeding. Theoretical and Applied Genetics. 75: 669−673.
3. Aslantaş, R., R. Çakmakçı and F. Şahin, 2007. Effect of Plant Growth Promoting Rhizobacteria on Young Apple Trees Growth and Fruit Yield under Orchard Conditions. Scientia Horticulture, 111: 371-377.
4. Aslantaş, R., H. Karakurt, M. Köse, G. Özkan ve R. Çakmakçı, 2009. Bazı Bakteri Irklarının Çilekte Fide Üretimine Etkileri. 3. Ulusal Üzümsü Meyveler Sempozyumu, Kahramanmaraş, 50-58.
5. Benitez, T., A.M. Rincon, M.C. Limon and A.C. Codon, 2004. Biocontrol Mechanisms of Trichoderma Strains. Int. Microbiol, 7: 249-260.
6. Carrozza, G.P., 2011. Effects of Azospirillum Brasilense Sp245 on Grapevine Propagation. PhD dissertation Università di Pisa, 89p.
7. Çakmakçı, R., F. Kantar and F. Şahin, 2001. Effect of N₂ Fixing Bacterial Inoculations on Yield of Sugar Beet and Barley. Journal of Plant Nutrition and Soil Science, 164: 5, 527-531.
8. Çelik, H. ve S. Ağaoğlu, 1981. Aşılı köklü asma fidanı üretiminde farklı “çeşit/anaç” kombinasyonlarının aşıda başarı ile fidan verimi ve kalitesi üzerine etkileri. Ankara Üniversitesi Ziraat Fakültesi, Yayın No: 766, 19s.

9. Çelik, S., 1998. Bağcılık (Ampeloloji). Cilt: 1 Trakya Üniversitesi Ziraat Fakültesi, 246.s.
10. De Freitas, J.R., M.R. Banerjee and J.J. Germida, 1997. Phosphate Solubilizing Rhizobacteria Enhance the Growth and Yield but No Phosphorus Uptake of Canola (Brassica napus L.). Biol. Fert. Soils, 24: 358-364.
11. Dobbelaere, S., J. Vanderleyden, Y. Okon, 2003. Plant Growth promoting Effects of Diazotrophs in the Rhizosphere. Crit Rev Plant Sci., 22: 107-149.
12. Esitken, A., L. Pirlak, M. Turan and F. Sahin, 2006. Effects of Floral and Foliar Application of Plant Growth Promoting Rhizobacteria (PGPR) on Yield, Growth and Nutrition of Sweet Cherry. Sci Hort., 110: 324-327.
13. Eşitken, A., S. Ercişli, İ. Sevik, F. Şahin, 2003. Effect of Indole-3-Butyric Acid and Different Strains of Agrobacterium Rubi on Adventive Root Formation from Softwood and Semi-Hardwood Wild Sour Cherry Cuttings. Turkish Journal of Agriculture & Forestry, 37-42 TUBİTAK.
14. FAOSTAT, 2017. Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO). (http://www.fao.org/faostat/en/#data/qc) (Erişim: 10.08.2017).
15. Gholami, A., S. Shahsavani and S. Nezarat, 2009. The Effect of Plant Growth Promoting Rhizobacteria (PGPR) on Germination, Seedling Growth and Yield of Maize. Int J Biol Life Sci 1: 35-40.
16. Howel, C.R., 2003. Mechanisms Employed by Trichoderma Species in the of Biological Control Disease the History and Evolution Current Concepts. Plant Dis. 87: 4-10.
17. Kara, Z. and A. Sabır, 2010. Effects of Herbagreen Application on Vegetative Development of Some Grapevine Rootstock during Nursery Propagation in Glasshouse. 2. International Symposium on Sustainable Development, 127-132.
18. Kara, Z., 1990. Tokat Yöresinde Yetiştirilen Üzüm Çeşitlerinin Ampelografik Özelliklerinin Belirlenmesi Üzerinde Araştırmalar. Ankara Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü, 318.
19. Kara, Z., 2014. Konya’nın Üzümleri. Merhaba Gazetesi Akademik Sayfalar 14(18): 274-288.
20. Kara, Z. ve M.B. Atasever, 2016. Aşılı Asma Fidanlarının Vejetatif Büyümesi ve Bazı Mikroorganizmalar ile Bitki Büyüme Aktivatörlerinin Etkileri. Bahçe (Özel Sayı) 612-617.
21. Kara, Z., A. Sabır, K. Yazar and A. Akçay, 2016. Klinoptilolitik Mikronize Zeolit Uygulamalarının Asma Anacı Fidanlarının Vejetatif Gelişme ve Kalitesine Etkileri. Selçuk Tar. Bilimleri Der. 3(2): 253-260.
22. Kleifeld, O. and I. Chet, 1992. Trichoderma harzianum Interaction with Plants Effect on Growth Response. Plant Soil, 144: 267-272.
23. Köse, C., M. Guleryuz, F. Sahin and İ. Demirtas, 2003. Effects of Some Plant Growth Promoting Rhizobacteria (Pgpr) on Rooting of Grapevine Rootstocks. Acta Agrobotanica, 56(1/2): 47-52.
24. Köse, C., M. Guleryuz, F. Sahin and İ. Demirtas, 2005. Effects of Some Plant Growth Promoting Rhizobacteria (Pgpr) on Graft Union of Grapevine. Journal of Sustainable Agriculture, 26(2): 139-147.
25. Orhan, E., A. Esitken, S. Ercisli, M. Turan and F. Sahin, 2006. Effects of Plant Growth Promoting Rhizobacteria (PGPR) on Yield, Growth and Nutrient Contents in Organically Growing Raspberry. Sci Hort., 111: 38-43.
26. Rosenblueth, M., E. Martínez Romero, 2006. Bacterial Endophytes and Their Interaction with Hosts. Molecular Plant Microbe Interactions, 19: 827e837.
27. Sabır, A., H. Bilir Ekbiç, H. Erdem and S. Tangolar, 2010. Response of Four Grapevine (Vitis spp.) Genotypes to Director Bicarbonate-Induced Iron Deficiency, Sjar, 8(3): 823-829.
28. Sabır, A. ve Z. Kara, 2004. Bazı Amerikan Asma Anaçlarının Yeşil Aşı Tekniğinde Başarı ve Performansları. Alatarım 3(1): 28-32.
29. Sabır, A., M.A. Yazıcı, Z. Kara and F. Şahin, 2012. Growth and Mineral Acquisition Response of Grapevine Rootstocks (Vitis spp.) to Inoculation with Different Strains of Plant Growth Promoting Rhizobacteria (PGPR). J. Sci. Food Agric. 92: 2148-2153.
30. Salomon, M.V., R. Bottini, G.A. de Souza Filho, A.C. Cohen, D. Moreno, M. Gil, and P. Piccoli, 2014. Bacteria Isolated from Roots and Rhizosphere of Vitis vinifera Retard Water Losses, Induce Abscisic Acid Accumulation and Synthesis of Defense-Related Terpenes in in vitro Cultured Grapevine. Physiol Plant 151(4): 359-374.
31. Sudhakar, P., G.N. Chattopadhyay, S.K. Gangwar and J.K. Ghosh, 2000. Effect of Foliar Application of Azotobacter, Azospirillum and Beijerinckia on Leaf Yield and Quality of Mulberry (Morus alba). J Agric Sci., 134: 227-234.
32. Şahin, F., R. Cakmakci and F. Kantar, 2004. Sugar Beet and Barley Yields in Relation to Inoculation with N₂ Fixing and Phosphate Solubilizing Bacteria. Plant and Soil, 265: 123-129.
33. Yılma, P. ve F. Odabaş, 2002. Doğrudan Fidanlığa Dikilen Aşılı Asma Çelikleriyle Fidan Üretiminde Başarı Üzerine Aşılama Zamanı ve Yetiştirme Sistemlerinin Etkileri. Türkiye 5. Bağcılık ve Şarapçılık Sempozyumu, 05-09.10.2002 Nevşehir, 457-463.