Research Article
BibTex RIS Cite

Depolanan Lale, Sümbül ve Nergis Soğanlarında Penicillium spp. Enfeksiyonlarının Değerlendirilmesi

Year 2020, Volume: 9 Issue: 2, 237 - 248, 24.12.2020

Abstract

Bu çalışma ile 2016-2017 yıllarında Konya ilinde depo ve market koşullarında bazı lale, nergis ve sümbül soğanlarında çürümelere sebep olan Penicillium spp. enfeksiyonları tespit edilmeye çalışılmıştır. Lale, nergis ve sümbül soğanları depoya alındıktan 1 ay sonra Penicillium spp. açısından değerlendirilmiş ve sayımlara devam edilerek enfekteli soğan oranları belirlenmiştir. Sayımlara, soğanlar marketlere pazarlandığı tarihlerde de devam edilmiştir. 2016 yılında 90 gün depolandıktan sonra yapılan sayımda lalelerde enfekteli soğan oranı %5.20 olarak belirlenmiştir. 30 gün depolanan sümbül ve nergislerde hastalık oranları sırasıyla %10.33 ve %1.67 olarak tespit edilmiştir. Market koşullarında 77 gün bekletilen lalelerde enfekteli soğan sayısı %96.02’ya, sümbüllerde %28.67’ye, nergislerde ise %6.5’e yükselmiştir. 2017 yılında 130 gün depolanan lalelerde enfekteli soğan sayısı %12.22 olarak belirlenmiştir. 1 ay depolanan nergis ve sümbüllerde enfekteli soğan oranı sırasıyla %2.0 ve %2.5 olarak tespit edilmiştir. Market koşullarında 36 gün bekletilen lale soğanlarında enfekteli soğan oranı %62.15 yükselirken, sümbüllerde enfekteli soğan oranı %12.5’e ulaşmıştır. Bu koşullarda nergis soğanlarında Penicillium spp. açısından önemli bir farklılık görülmemiştir.
Penicillium türlerini belirlemek amacıyla lale, sümbül ve nergis soğanlarından elde edilen Penicillium izolatları, hem morfolojik olarak hem de MALDI-TOF biyotipleme yoluyla karakterize edilmiştir. Lale izolatlarının Penicillium corymbiferum ve P. expansum, nergis izolatlarının P. corymbiferum, P. rugulosum ve P. funiculosum, sümbül izolatlarının ise P. corymbiferum, P. expansum ve P. olsonii türleri olduğu belirlenmiştir. Lale, nergis ve sümbülde en yaygın tür ise Penicillium corymbiferum olarak tespit edilmiştir.

References

  • Agrios, G. N. (2005). Plant Pathology (5th edition). San Diego, CA, Elsevier- Academic Press, p.556-557.
  • Anonim, (2011). Iğdır Ovası’nda Yeni Bir Fırsat: Kesme Çiçekcilik. Serhat Kalkınma Ajansı, 28 s. Kars.
  • http://www.serka.gov.tr/store/file/common/5c7c6690c86e447f48209103e9ccc5d0.pdf.
  • Anonim, (2015). Türkiye’nin Laleleri Konya’da Yetişiyor. https://www.haberfark.net/turkiyenin-laleleri-konyada-yetisiyor-34570h.htm.
  • Anonim, (2019). Süs Bitkileri Sektör Raporu. SÜSBİR, http://susbir.org.tr/yeni/belgeler/raporlar/susbir-sektor-raporu-2019.pdf.
  • Anonymous, (2013). Blue Mold Rot. Purdue University, Botany and Plant Pathology. https://ag.purdue.edu/btny/ppdl/Pages/POTW_old/4-15-13.html.
  • Başkent, A. (2008). Ring (yüzük) kültüründe farklı katı ortamların lale soğanı oluşumu ve özelliklerine etkileri. (Yüksek lisans tezi), Ankara Üniversitesi, Fen Bilimleri Enstitüsü, Ankara.
  • Bertolini, P., Tian, S. (1996). Low-temperature biology and pathogenicity of Penicillium hirsutum on garlic in storage. Postharvest Biology and Technology, 7(1-2), 83-89. DOI: 10.1016/0925-5214(95)00025-9.
  • Cardoso, P. G., de Queiroz, M. V., Pereira, O. L., de Araújo, E. F. (2007). Morphological and molecular differentiation of the pectinase producing fungi Penicillium expansum and Penicillium griseoroseum. Brazilian Journal of Microbiology, 38(1), 71-77. DOI: 10.1590/S1517-83822007000100015.
  • Chauhan, S., Saaltink, G. (1969). A Penicillium attack on hyacinth bulbs as affected by temperature and humidity. Netherlands Journal of Plant Pathology, 75(3), 197-204.
  • Drissner, D., Freimoser, F. M. (2017). MALDI-TOF mass spectroscopy of yeasts and filamentous fungi for research and diagnostics in the agricultural value chain. Chemical and Biological Technologies in Agriculture, 4: 13. DOI: DOI 10.1186/s40538-017-0095-7.
  • Dugan, F., Lupien, S., Vahling-Armstrong, C., Chastagner, G., Schroeder, B. (2017). Host ranges of Penicillium species causing blue mold of bulb crops in Washington State and Idaho. Crop Protection, 96: 265-272. DOI: 10.1016/j.cropro.2017.03.002.
  • Fang, J., Tsao, P. (1995). Efficacy of Penicillium funiculosum as a biological control agent against Phytophthora root rots of azalea and citrus. Phytopathology, 85(8), 871-878.
  • Gould, C. J. (1950). Diseases of bulbous iris. Extension Bulletin, 424, 27-29.
  • Gümrükçü, E., Gölükçü, Ş. B. (2014). Fungal and bacterial diseases on ornamental plants. DergiPark Akademik, 22(2), 10-19.
  • HemaMoorthy, T., Prakasam, V. (2013). First report of Penicillium expansum causing bulb rot of lilium in India. American-Eurasian Journal of Agricultural & Environmental Sciences, 13(3), 293-295.
  • Jonston, A., Booth, C. (1983). Plant Pathologist’s Pocketbook. Second Edition. Common Wealth Mycologial Institute, England, 439 p.
  • Karagüzel, Ö., Aydınşakir, K., Kaya, A. S. (2007). Dünyada ve Türkiye’de çiçek soğanları sektörünün durumu. Derim, 24(1), 1-10.
  • Kılıç, T., Okay, Y., Kazaz, S. (2013). Yükselen Değer: Soğanlı Kesme Çiçekler. V. Süs Bitkileri Kongresi, Yalova, Bildiriler, Cilt II, ss. 537-543.
  • Kurt, Ş. (2013). Bitki Fungal Hastalıkları. Akademisyen Kitap Evi. ISBN, 978-605.
  • Lim, W. (1983). Penicillium funiculosum isolates associated with fruit blemishes of pineapple (cv masmerah) in Peninsular Malaysia. MARDI Research Bulletin, 11.
  • Overy, D. P., Karlshøj, K., Due, M. (2005). Low temperature growth and enzyme production in Penicillium ser. corymbifera species, casual agents of blue mold storage rot in bulbs. Journal of Plant Pathology, 87(1), 57-63.
  • Pitt, J., Hocking, A., Beuchat, L. R. (1998). Fungi and food spoilage (2nd ed.). Trends in Food Science and Technology, 9(2), 89.
  • Prince, T., Stephens, C., Herner, R. (1988). Pathogenicity, fungicide resistance, and ethylene production of Penicillium spp. isolated from tulip bulbs. Phytopathology, 78(6), 682-686.
  • Ramirez, C. (1982). Manual and Atlas of the Pecillia. Elsevier Biomedical Press. 15-17, Amsterdam.
  • Schneider, J. H. M. (1998). Rhizoctonia disease of tulip: characterization and dynamics of the pathogens. Schneider, (Phd thesis). Wagenigen, p.13.
  • Visagie, C., Houbraken, J., Frisvad, J. C., Hong, S.-B., Klaassen, C., Perrone, G., Seifert, K., Varga, J., Yaguchi, T., Samson, R. (2014). Identification and nomenclature of the genus Penicillium. Studies in mycology, 78: 343-371. DOI: 10.1016/j.simyco.2014.09.001.
  • Yaşar, A., Boyraz, N. (2004). Konya koşullarında yetiştirilen değişik lale soğanlarında Penicillium spp. enfeksiyonu ve kimyasal mücadelesi üzerine bir araştırma. S.Ü. Ziraat Fakültesi Dergisi, 18(34), 87-93.

Assessment of Penicillium spp. Infectious in Stored Tulip, Narcissus and Hyacinth Bulbs

Year 2020, Volume: 9 Issue: 2, 237 - 248, 24.12.2020

Abstract

In this study, Penicillium spp. infections causing decay in some tulips, narcissus and hyacinth bulbs in the storage and market conditions in Konya province in 2016-2017 were tried to be determined. Tulip, narcissus and hyacinth bulbs were evaluated in terms of Penicillium spp. 30 days after they were taken out of storage and counts were continued every 10 days to determine infected bulb ratios. Counts continued on dates when bulbs were marketed. After 90 days of storage in 2016, the rate of infected bulbs was 5.20%. The disease rates in hyacinths and narcissus stored for 30 days were 10.33% and 1.67%, respectively. In the market conditions, the number of infected bulbs increased to 96.02%, hyacinths to 28.67% and narcissus to 6.5%. In tulips stored for 130 days in 2017, the number of infected bulbs was determined as 12.22%. The number of infected bulbs of narcissus and hyacinths stored for 1 month were determined as 2.0% and 2.5%, respectively. The rate of infected bulbs in tulip bulbs which were kept in market conditions for 36 days increased to 62.15%, while the percentage of infected bulbs in hyacinths is reached 12.5%. In these conditions, there was no significant difference in the narcissus bulbs in terms of Penicillium spp.
Penicillium isolates obtained from tulips, hyacinths and narcissus bulbs to characterize Penicillium species were characterized both morphologically and by MALDI-TOF biotyping. Penicillium corymbiferum and P. expansum in tulip isolates, P. corymbiferum, P. rugulosum and P. funiculosum in narcissus isolates, P. corymbiferum, P. expansum and P. olsonii species in hyacinth isolates were determined. The most common species in tulips, narcissus and hyacinths was identified as Penicillium corymbiferum.

References

  • Agrios, G. N. (2005). Plant Pathology (5th edition). San Diego, CA, Elsevier- Academic Press, p.556-557.
  • Anonim, (2011). Iğdır Ovası’nda Yeni Bir Fırsat: Kesme Çiçekcilik. Serhat Kalkınma Ajansı, 28 s. Kars.
  • http://www.serka.gov.tr/store/file/common/5c7c6690c86e447f48209103e9ccc5d0.pdf.
  • Anonim, (2015). Türkiye’nin Laleleri Konya’da Yetişiyor. https://www.haberfark.net/turkiyenin-laleleri-konyada-yetisiyor-34570h.htm.
  • Anonim, (2019). Süs Bitkileri Sektör Raporu. SÜSBİR, http://susbir.org.tr/yeni/belgeler/raporlar/susbir-sektor-raporu-2019.pdf.
  • Anonymous, (2013). Blue Mold Rot. Purdue University, Botany and Plant Pathology. https://ag.purdue.edu/btny/ppdl/Pages/POTW_old/4-15-13.html.
  • Başkent, A. (2008). Ring (yüzük) kültüründe farklı katı ortamların lale soğanı oluşumu ve özelliklerine etkileri. (Yüksek lisans tezi), Ankara Üniversitesi, Fen Bilimleri Enstitüsü, Ankara.
  • Bertolini, P., Tian, S. (1996). Low-temperature biology and pathogenicity of Penicillium hirsutum on garlic in storage. Postharvest Biology and Technology, 7(1-2), 83-89. DOI: 10.1016/0925-5214(95)00025-9.
  • Cardoso, P. G., de Queiroz, M. V., Pereira, O. L., de Araújo, E. F. (2007). Morphological and molecular differentiation of the pectinase producing fungi Penicillium expansum and Penicillium griseoroseum. Brazilian Journal of Microbiology, 38(1), 71-77. DOI: 10.1590/S1517-83822007000100015.
  • Chauhan, S., Saaltink, G. (1969). A Penicillium attack on hyacinth bulbs as affected by temperature and humidity. Netherlands Journal of Plant Pathology, 75(3), 197-204.
  • Drissner, D., Freimoser, F. M. (2017). MALDI-TOF mass spectroscopy of yeasts and filamentous fungi for research and diagnostics in the agricultural value chain. Chemical and Biological Technologies in Agriculture, 4: 13. DOI: DOI 10.1186/s40538-017-0095-7.
  • Dugan, F., Lupien, S., Vahling-Armstrong, C., Chastagner, G., Schroeder, B. (2017). Host ranges of Penicillium species causing blue mold of bulb crops in Washington State and Idaho. Crop Protection, 96: 265-272. DOI: 10.1016/j.cropro.2017.03.002.
  • Fang, J., Tsao, P. (1995). Efficacy of Penicillium funiculosum as a biological control agent against Phytophthora root rots of azalea and citrus. Phytopathology, 85(8), 871-878.
  • Gould, C. J. (1950). Diseases of bulbous iris. Extension Bulletin, 424, 27-29.
  • Gümrükçü, E., Gölükçü, Ş. B. (2014). Fungal and bacterial diseases on ornamental plants. DergiPark Akademik, 22(2), 10-19.
  • HemaMoorthy, T., Prakasam, V. (2013). First report of Penicillium expansum causing bulb rot of lilium in India. American-Eurasian Journal of Agricultural & Environmental Sciences, 13(3), 293-295.
  • Jonston, A., Booth, C. (1983). Plant Pathologist’s Pocketbook. Second Edition. Common Wealth Mycologial Institute, England, 439 p.
  • Karagüzel, Ö., Aydınşakir, K., Kaya, A. S. (2007). Dünyada ve Türkiye’de çiçek soğanları sektörünün durumu. Derim, 24(1), 1-10.
  • Kılıç, T., Okay, Y., Kazaz, S. (2013). Yükselen Değer: Soğanlı Kesme Çiçekler. V. Süs Bitkileri Kongresi, Yalova, Bildiriler, Cilt II, ss. 537-543.
  • Kurt, Ş. (2013). Bitki Fungal Hastalıkları. Akademisyen Kitap Evi. ISBN, 978-605.
  • Lim, W. (1983). Penicillium funiculosum isolates associated with fruit blemishes of pineapple (cv masmerah) in Peninsular Malaysia. MARDI Research Bulletin, 11.
  • Overy, D. P., Karlshøj, K., Due, M. (2005). Low temperature growth and enzyme production in Penicillium ser. corymbifera species, casual agents of blue mold storage rot in bulbs. Journal of Plant Pathology, 87(1), 57-63.
  • Pitt, J., Hocking, A., Beuchat, L. R. (1998). Fungi and food spoilage (2nd ed.). Trends in Food Science and Technology, 9(2), 89.
  • Prince, T., Stephens, C., Herner, R. (1988). Pathogenicity, fungicide resistance, and ethylene production of Penicillium spp. isolated from tulip bulbs. Phytopathology, 78(6), 682-686.
  • Ramirez, C. (1982). Manual and Atlas of the Pecillia. Elsevier Biomedical Press. 15-17, Amsterdam.
  • Schneider, J. H. M. (1998). Rhizoctonia disease of tulip: characterization and dynamics of the pathogens. Schneider, (Phd thesis). Wagenigen, p.13.
  • Visagie, C., Houbraken, J., Frisvad, J. C., Hong, S.-B., Klaassen, C., Perrone, G., Seifert, K., Varga, J., Yaguchi, T., Samson, R. (2014). Identification and nomenclature of the genus Penicillium. Studies in mycology, 78: 343-371. DOI: 10.1016/j.simyco.2014.09.001.
  • Yaşar, A., Boyraz, N. (2004). Konya koşullarında yetiştirilen değişik lale soğanlarında Penicillium spp. enfeksiyonu ve kimyasal mücadelesi üzerine bir araştırma. S.Ü. Ziraat Fakültesi Dergisi, 18(34), 87-93.
There are 28 citations in total.

Details

Primary Language Turkish
Subjects Agricultural, Veterinary and Food Sciences
Journal Section Research
Authors

Özden Salman This is me 0000-0002-7871-4105

Nuh Boyraz This is me 0000-0001-6822-9360

Publication Date December 24, 2020
Published in Issue Year 2020 Volume: 9 Issue: 2

Cite

APA Salman, Ö., & Boyraz, N. (2020). Depolanan Lale, Sümbül ve Nergis Soğanlarında Penicillium spp. Enfeksiyonlarının Değerlendirilmesi. Bahri Dağdaş Bitkisel Araştırma Dergisi, 9(2), 237-248.