Şanlıurfa İli Çevresinde Yetişen Papatya (Matricaria chamomilla (L.)) Türlerinde Enzim Miktar Tayini

Year 2021, , 345 - 350, 20.08.2021

Mahmut Doğan , Yağmur Sedetaltun , Ceren Odabaşıoğlu , Mehmet İlhan Odabaşıoğlu

https://doi.org/10.19113/sdufenbed.845112

Abstract

Ülkemiz, iklim koşulları açısından papatya bitkisinin doğal olarak yetiştirilmesi için elverişli bir coğrafik konuma sahiptir. Papatya, gerek tıbbi olarak gerek aromatik olarak güncel tedavilerde yoğun olarak kullanılan ve modern tıp tarafından da yoğun olarak ilgi gösterilen bir bitkidir. Halk tıbbında da geniş ve kadim bir kullanımı ve karşılığı olan bu bitki, ülkemizde geniş bir alanda yayılım göstermektedir. Bu çalışmamızda tıbbi papatya olarak kullanılan Matricaria chamomilla (L.) bitkisi, 6 farklı bölgeden (Merkez, Siverek, Bozova, Birecik, Halfeti ve Viranşehir) toplanmış ve klorofil, malondiaaldehit (MDA), prolin, antisiyonin miktarları ile enzim (katalaz, glutatyon redüktaz, askorbat peroksidaz ve süperoksit dismutaz) analizleri yapılmıştır. Analizler toplu olarak değerlendirildiğinde Birecik yöresi örneklerinde katalaz, glutatyon redüktaz ve askorbat peroksidaz enzim aktivite miktarı ile klorofil, prolin ve antosiyaninin en yüksek; süperoksit dismutaz aktivitesinin en az olduğu tespit edilmiştir.

Keywords

Şanlıurfa, Papatya, Enzim

Determination of Enzyme Activity in Chamomile (Matricaria chamomilla (L.)) Species Growing in Sanliurfa Province

Abstract

Our country has a favorable geographical location for naturally growing chamomile plants in terms of climatic conditions. Chamomile is a plant that is use dextensively in current treatments, both medicinally and aromatically, and has shown great interest in modern medicine. This plant, which has a wide and ancient uses and equivalent in folk medicine, is grown in a widearea in our country. In this study, Matricari achamomilla (L.) plant, used as a medicinal chamomile, was collected from 6 different regions (Merkez, Siverek, Bozova, Birecik, Halfeti and Viranşehir), and the amount of chlorophyll, malondiaaldehyde (MDA), proline, antisionine and enzyme (catalase, glutathione reductase, ascorbate peroxidase and superoxide dismutase) analyzes were performed. When the analyzes were evaluated collectively, in the samples of Birecik region it was determined that the amount of catalase, glutathione reductase and ascorbate peroxidase enzyme activity and chlorophyll, proline and anthocyanin were the highest; superoxide dismutase activity was least.

Keywords

Sanliurfa, Chamomile, Enzyme

References

• [1] Çalikoğlu, E., Kıralan, M., Bayrak, A. 2006. Uçucu yağ nedir, nasıl üretilir ve Türkiye'deki durumuna genel bir bakış. Türkiye 9. Gıda Kongresi Bildiriler Kitabı, 24-26 Mayıs, Bolu, 569-570.
• [2] Arslan, D. 2012. Yalova ekolojik koşullarında mayıs papatyası (Matricaria recutita L.) çeşitlerinde farklı ekim zamanları ve ekim mesafelerinin verim ve kalite özelliklerine etkisi, Ege üniversitesi, Fen Bilimleri Enstitüsü, Doktora Tezi, 175s, İzmir.
• [3] Amıragaı, M. E., Koç, A. 2016. Ekim Zamanı ve Azot Uygulamalarının Mayıs Papatyasının (Matricariac hamomilla L.) Verim ve Uçucu Yağ Üretimine Etkileri. Atatürk Üniversitesi Ziraat Fakültesi Dergisi, 47 (1): 31-34.
• [4] Haşimi, N., Kızıl, S., Tolan, V. 2015. Rezene ve Adaçayı Uçucu Yağlarının Anti mikrobiyal aktivitesi üzerine bir araştırma. Batman Üniversitesi Yaşam Bilimleri Dergisi, 5(2), 227-35.
• [5] İlkimen, H., Gülbandılar, A. 2018. Lavanta, ada çayı, kekik ve papatya ekstrelerinin anti mikrobiyal etkilerinin araştırılması. Türk Mikrobiyol Cemiyeti Dergisi, 48(4), 241-246.
• [6] Ren, W., Qiao, Z., Wang, H., Zhu, L., Zhang, L. 2003. Flavonoids: promising anticancer agents. Medicinal Research Reviews, 23, 519-34.
• [7] Yiğit, N., Benli, M. 2005. Ülkemizde yaygın kullanımı olan kekik (Thymus vulgaris) bitkisinin anti mikrobiyal aktivitesi. Orlab On-Line Mikrobiyoloji Dergisi, 3(8), 1-8.
• [8] Hussain, T., Arshad, M., Khan, S., Satar, H., Qureshi, M. S. 2011. In vitros creening of methanol plant extracts for their antibacterial activity. Pakistan Journal of Botany, 43, 531-538.
• [9] Kaya, D., Ergönül, P. G. 2015. Obtaining methods of volatileoils. GIDA-Journal of Food, 40(5), 303-310.
• [10] Jackson, F. 1993. Antihelmintic resistance-thestate of play. British Veterinary Journal, 149(2), 123-138.
• [11] Kırbağ, S., Bağcı, E. 2000. Picea abies (L.) Karst. ve Picea orientalis (L.) link uçucu yağlarının antimikrobiyal aktivitesi üzerine bir araştırma, Journal of Qafqaz University, 3(1), 183-190.
• [12] Dash, B. K., Sultana, S., Sultana, N. 2011. Antibacterial activities of methanol and acetone extracts of fenugreek (Trigonella foenum) and coriander (Coriandrum sativum). International Journal of Life Science and Medical Research, 27, 1-8.
• [13] Shanthi, Sree, K. S., Yasodamma, N., Parama Geetham, C. H. 2010. Phytoc hemical screening and ın vitro antibacterial activity of the methanolic leaf extract: sebastianiac hamaelea müell arg. The Bioscan, 5, 173-175.
• [14] İlhan, A., Gürel, A., Armutçu, F., Kamışlı, S., İraz, M. 2005. Antiepileptogenic and antioxidant effects of nigellasativa oil against pentylenetetrazol-inducedkindling in mice. Neuro pharmacology, 49(4), 456-464.
• [15] Kırbağ S., Zengin, F. 2006. Elazığ yöresindeki bazı tıbbi bitkilerin antimikrobiyal aktiviteleri. Yüzüncü Yıl Üniversitesi Ziraat Fakültesi Tarım Bilimleri Dergisi, 16(2), 77-80.
• [16] Erecevit, P. 2007. Tıbbi amaçlar için kullanılan bazı bitki türlerinin antimikrobiyal aktivitelerinin araştırılması. Yüksek Lisans Tezi, Fırat Üniversitesi, Fen Bilimleri Enstitüsü, 30s. Elazığ.
• [17] Kırca, A., Bilişli, A., Demirel, N. N., Turhan, H., Arslan, E. 2007. Çanakkale florasındaki bazı tıbbi ve aromatik bitkilerin antioksidan ve antimikrobiyal aktiviteleri. TÜBİTAK Proje No: 104O292.
• [18] Luna, C., Seffino, L. G., Arias, C., Taleisnik, E. 2000. Oxidative stres indicators as selection tools for salt tolerance in chlorisgayana. Plant Breeding, 119, 341-345.
• [19] Lutts, S., Kinet, J. M., Bouharmont, J. 1996. NaCl-ınduced senesence in leaves of rice (Oryza sativa L.) cultivars differing in salinity resistance. Annals of Botany, 78, 389-398.
• [20] Bates, L. S., Waldren, R. P., Teare, I. D. 1973. Rapid determination of free proline for water- stres studies. Plant and Soil, 39, 205-207.
• [21] Fuleki, T., Francis, F. J. 1968. Quantitative methods for anthocyanins. II. determination of total anthocyaninand degradation ındex for cranberry juice. Journal of Food Science, 33, 78-83.
• [22] Cemeroğlu B. 2007. Gıda analizleri. Gıda Teknolojisi Derneği Yayınları, No:34, 535s, Ankara.
• [23] Alasalvar, C., Bolling, B. W. 2015. Review of nut phytochemicals, fat-soluble bioactives, antioxidant components and health effects. British Journal of Nutrition, 113(S2), 68-78.
• [24] Wrolstad R. E. 1976. Color and pigment analysis in fruit products. Oregon Agricultural Experiment Station Bulletin, No:264, 17 s.
• [25] Çakmak, I., Marschner, H. 1992. Magnesium Defficiency and Highlight Intensity Enhance Activities of Superoxide Dismutase, Ascorbate Peroxidase and Glutathione Reductase in BeanLeaves, Plant Physiol., 98, 1222-1226.
• [26] Çakmak, I. 1994. Activity of ascorbate-dependent H2O2-scaveninig enzymes and leaf shlorosisare enhanced in magnesium and potassium-deficient leaves but not in phosphorus-deficient leaves. Journal of Experimental Botany, 45, 1259-1266.
• [27] Mittova, V., Tal, M., Volokitta, M., Guy, M. 2002. Salt stres ınducesup-regulation of an efficient chloroplast antioxidant system in the salt-tolerant wild tomato species Lycopersicon pennellii but not in the cultivated species. Physiologia Pantarum, 115, 393-400.
• [28] Mittova, V., Guy, M., Tal, M., Volokita, M. 2004. Salinity up-regulates the antioxidative system in root mitochondria and Peroxisomes of the wild salt-tolerant tomato species Lycopersicon pennellii. Journal of Experimental Botany, 55, 1105- 1113.
• [29] Mittova, V., Volokita, M., Guy, M., Tal, M. 2000. Activities of SOD and the ascorbate-glutathione cycle enzymes in subcellular compartments in leaves and roots of the cultivated tomato and ıts wild salt-tolerant relative Lycopersicon pennelli. Physiologia Plantarum, 110, 42–51. [30] Jaleel, C. A., Gopi R., Manıvannah, P., Panneerselvam, R. 2007. Antioxidative potentials as a protective mechanism in Catharanthus rosaus (L.) G. Don. plants under salinity stress. Turkish Journal of Botany, 31, 248-251.
• [31] Doğan, M. 2011. Antioxidative and proline potentials as a protective mechanism in soybean plants under salinity stres. Journal of Biotechnology, 10(32), 5972-5978.
• [32] Torun, H., Ayaz, F. A. 2019. Tuz stresi koşullarında salisilik asidin zamana bağlı uygulamasının arpa (Hordeum vulgare L.) köklerinin antioksidan savunma sistemleri üzerine etkileri. Eskişehir Teknik Üniversitesi Bilim ve Teknoloji Dergisi Yaşam Bilimleri ve Biyoteknoloji, 8(1), 69 – 84.
• [33] Kendall, E. J., Mckersie, B. D. 1989. Free radical and freezing injuryto cell membranes of winter what. Plant Physiology, 76, 86-94.