Afyonkarahisar Yöresi Koyun Akciğer Kılkurdu Türlerinin Moleküler Karakterizasyonu

Yıl 2017, Cilt: 12 Sayı: 3, 283 - 288, 20.12.2017

Mustafa Köse Metin Erdoğan Kürşat Kartal

https://doi.org/10.17094/ataunivbd.297876

Cited By: 1

Öz

Bu araştırma, Afyonkarahisar yöresinde koyunlarda
akciğer kılkurdu enfeksiyonlarının moleküler epidemiyolojisi ve akciğer
kılkurdu türlerinin moleküler karakterizasyonunu ortaya koymak amacıyla
yapılmıştır. Bu amaçla 5 farklı lokalitede akciğer kılkurtları ile doğal
enfekte 10 sürüden akciğer kılkurdu birinci dönem larvalarını izole etmek için
dışkı örnekleri toplandı. Baermann-Wetzel yöntemi ile separe edilen akciğer
kılkurdu 1. dönem larvalarının spin kolon yöntemiyle ticari kit (Thermo)
kullanılarak DNA’ları çıkarıldı. PCR’da akciğer kıl kurtlarının 28S rRNA
bölgelerine ait primerler (Dictyocaulus
filaria: F-gctacaaaatcgcatacgaacg, R-actccttagcggttaccga; Cystocaulus ocreatus:
F-cggtttgtttagcatgtccaaagtc, R-tctctgacttcgtcctgc; Muellerius capillaris: F-aaaggcccaacgctgaa, R-cctctgacttcgtcctgc)
FastPCR programı ile dizayn edilerek kullanıldı. Toplam 7 izolattan elde edilen
DNA PCR ürünlerinin 28S rRNA gen bölgelerinin DNA dizileme analizi yapıldı. Bir
ve 2. izolatlardan elde edilen 952 bp uzunluğundaki dizilerinin %100 D. filaria, 4, 5 ve 6. izolatlardan elde
edilen768 bp uzunluğundaki dizilerinin %100 C.
ocreatus, 7. izolattan elde edilen 780 bp uzunluğundaki dizinin %100 M. capillaris ve 3. izolattan elde
edilen 780 bp uzunluğundaki dizinin ise %99 ihtimalle M. capillaris olduğu görülmüştür. İzolat 7'nin 702. bazının
heterozigot yapıda olması ve izolat 3'te 117 ve 718. bazlarında mutasyon olması
bir alt tür olabileceğini düşündürmüştür. Bir sürüde rastlanılan Neostrongylus linearis larvasından DNA
elde edilememiş, Sürülerde Protostrongylus
rufescens larvasına rastlanmamıştır.

Anahtar Kelimeler

28S RNA, Akciğer kıl kurtları, Koyun, Moleküler karakterizasyon

Molecular Characterization of Lungworm Species of Sheep in Afyonkarahisar Region

Öz

The present study was conducted
to investigate molecular epidemiology of lungworm infections and molecular
characterization of lungworm species of sheep in Afyonkarahisar region. Fecal
samples were gathered from 10 flocks in 5 different localization to isolate
first stage larvae of lungworm. First stage larvae of lungworms were seperated
with Baermann-Wetzel method and DNAs were extracted with spin-column method by
using commercial kit (Thermo). Primers belonged to 28S rRNA region of lungworms
(Dictyocaulus filaria:
F-gctacaaaatcgcatacgaacg, R-actccttagcggttaccga; Cystocaulus ocreatus: F-cggtttgtttagcatgtccaaagtc,
R-tctctgacttcgtcctgc; Muellerius
capillaris: F-aaaggcccaacgctgaa, R-cctctgacttcgtcctgc) were used with the
design of FastPCR software in PCR. DNA sequence analysis was perfomed on PCR
products of 28S rRNA gene regions obtained from seven isolates. 952 bp length
sequences of first and second isolates were D.
filaria with the probability of 100%; 768 bp length sequences of 4th, 5th
and 6th isolates were C. ocreatus
with the probability of 100%; 780 bp length sequence of 7th isolate was M. capillaris with the probability of
100% and 780 bp length sequence of 3rd isolate was M. capillaris with the probability of 99%. Heterozygote structure
of base number 702 of 7th isolate and presence of mutations in base numbers 117
and 718 of 3rd isolate suggest probability of a subspecies. DNA of Neostrongylus linearis larvae which was
detected in one flock could not be obtained. Protostrongylus rufescens larvae was not found in flocks.

Anahtar Kelimeler

28S rRNA, Lungworm, Molecular characterization, Sheep

Kaynakça

• 1. Levine ND., 1968. Nematode Parasites of Domestic Animals and Man, Burgess Publishing Company, Minneapolis.
• 2. Anderson RC., 1978. Keys to the genera of the superfamily Metastrongyloidea, no. 5. In CIH keys to the nematode parasites of vertebrates,R. C. Anderson, A. G. Chabaud, and S. Willmott (eds.). Commonwealth Agricultural Bureaux, Farnham Royal, U.K.
• 3. Soulsby EJL., 1986. Helminths, Arthropods and Protozoa of Domesticated Animals. 7 th Ed, Bailliere Tindall, London.
• 4. Schnieder T., 2000. Helminthosen der Wiederkäuer. pp.192-295. In: Rommel, M., Eckert, J., Kutzer, E., Körting, W., Schnieder, T. (Eds), Veterinärmedizinische Parasitologie. 5. Auflage. Parey Buchverlag, Berlin.
• 5. Urguhart GM., Armour J., Duncan JL., Dunn AM., Jennings FW., 2002. Veterinary Parasitology, Second Edition, Blackwell, London.
• 6. Yıldırım A., İça A., 2005: Kayseri Yöresinde Koyunlarda Akciğer Kılkurdu Enfeksiyonlarının Prevalansı. Erciyes Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, 2(2), 73-78.
• 7. Yıldız K., 2006. Prevalence of Lungworm Infection in Sheep and Cattlein the Kırıkkale province. Türkiye Parazitoloji Dergisi, 30(3), 190-193.
• 8. Epe C., Samson-Himmelstjerna GV., Schnieder T., 1997. Differences in a ribosomal DNA sequence of lungworm species (Nematoda: Dictyocaulidae) from fallow deer, cattle, sheep and donkeys. Research In Veterinary Science, 62, 17-21.
• 9. Carreno RA., Nadler SA., 2003. Phylogenetic analysis of the Metastrongyloidea (Nematoda: Strongylida) inferred from ribosomal RNA gene sequences. Journal of Parasitology, 89(5), 965-973.
• 10. Höglund J., Morrison DA., Divina BP., Wilhelmsson E., Mattsson JG., 2003. Phylogeny of Dictyocaulus (lungworms) from eight species of ruminants based on analyses of ribosomal RNA data. Parasitology, 127, 179-187.