Immunohistochemical Investigation of Bovine Viral Diarrhea Virus (BVDV) in Cattle in Erzurum Region

Yıl 2019, Cilt: 14 Sayı: 2, 170 - 175, 25.10.2019

Gökşad Cemil Kotan Mustafa Özkaraca

Öz

Breed, sex, weight, etc. immunohistochemical examinations of the ileum specimens taken from 100 cattle breeding animals that had been cut without discrimination were subjected to microscopic, and immunohistochemical examinations. Bovine Viral Diarrhea Virus viral antigen was detected in 27% (27 samples) of immunohistochemical analysis of specimens without any pathological findings macroscopically. BVD viral antigens were detected in lamina propria in all of the samples identified as positive. BVDV immunopositivity was found intracytoplasmically in the section near the villus of the lamina propria and in the inflammatory cell infiltrations between the crypts and the peyer plaques. BVDV immunopositivity was determined in lymphoid cells in Peyer plaques in 21 samples, in lamina epithelialis in 19 samples and in crypt epithelium in 14 samples. As a conclusion, an epidemiological study has not been conducted for the immunohistochemical diagnosis of Bovine Viral Diarrhea Virus in Erzurum and its region. In this study, BVDV immunopositivity was found in 27% of cattle in Erzurum and its region and it was determined that it was an important agent for cattle breeding.

Anahtar Kelimeler

BVDV, Cattle, Ileum, Immunohistochemistry

Erzurum Yöresi Sığırlarında Bovine Viral Diarrhea Virus (BVDV)’un Varlığının İmmunohistokimyasal Yöntemle Araştırılması

Öz

Bu çalışmada Erzurum ve yöresindeki sığırlarda Bovine Viral Diarrhea Virus ile enfekte sığırların immunohistokimyasal olarak teşhisine yönelik epidemiyolojik bir çalışma yapılması amaçlanmıştır. Irk, cinsiyet, ağırlık vb. ayrımı yapılmadan kesimi gerçekleştirilen 100 adet sığır’dan alınan ileum örnekleri immunohistokimyasal incelemeye tabi tutuldu. Makroskobik olarak herhangi bir patolojik bulgu göstermeyen örneklerin immunohistokimyasal incelemelerinde %27 oranında Bovine Viral Diarrhea viral antijeni tespit edildi. Pozitif olarak tespit edilen örneklerin tamamında lamina propria’da BVDV viral antijenleri tespit edildi. Belirlenen immunpozitiflikler lamina propria’nın villuslara yakın kısmında ve kriptler ile peyer plakları arasındaki yangısal hücre infiltrasyonlarında intrasitoplazmik olarak bulunmaktaydı. Ayrıca 21 örnekte peyer plaklarındaki lenfoid hücrelerde, 19 örnekte lamina epitelyalis’te, 14 örnekte ise kript epitellerinde Bovine Viral Diarrhea Virus immunpozitifliği belirlendi. Sonuç olarak; Bovine Viral Diarrhea Virus’un immunohistokimyasal olarak teşhisine yönelik Erzurum ve yöresinde epidemiyolojik bir çalışma yapılmamıştır. Bu çalışma ile Erzurum ve yöresinde sığırlarda %27 oranında Bovine Viral Diarrhea Virus immunpozitifliği bulunmuş ve sığır yetiştiriciliği açısından önemli bir etken olduğu belirlenmiştir.

Anahtar Kelimeler

BVDV, İleum, İmmunohistokimya, Sığır

Kaynakça

• 1. Lindenbach BD., Rice C., 2001. Flaviviridae: the viruses and their replication. Fields Virol, 1, 991-1041. 2. Olafson P., MacCallum A., Fox FH., 1946. An apparently new transmissible disease of cattle. The Cornell Veter, 36, 205-213. 3. Moennig V., Houe H., Lindberg A., 2005. BVD control in Europe: current status and perspectives. Anim Health Res Rev, 6, 63-74. 4. Straub OC., 1975. Infectious bovine rhinotracheitis virus. History and recent developments. Dev Biol Stand, 28, 530-533. 5. Ohmann HB., 1983. Pathogenesis of bovine viral diarrhoea-mucosal disease: distribution and significance of BVDV antigen in diseased calves. Res Vet Sci, 34, 5-10. 6. Harkness J., Sands J., Richards M., 1978. Serological studies of mucosal disease virus in England and Wales. Res Vet Sci, 24, 98-103. 7. Odeon AC., Kelling CL., Marshall DJ., Estela ES., Dubovi EJ., Donis RO., 1999. Experimental infection of calves with bovine viral diarrhea virus genotype II (NY-93). J Vet Diagn Invest, 11, 221-228. 8. Drager C., Schröder C., König P., Tegtmeyer B., Beer M., Blome S., 2016. Efficacy of Suvaxyn CSF Marker (CP7_E2alf) in the presence of pre-existing antibodies against Bovine viral diarrhea virus type 1. Vaccine, 34, 4666-4671. 9. Zhang X., Diraviyam T., Li X., Yao B., Antonysamy M., 2016. Preparation of chicken IgY against recombinant E2 protein of bovine viral diarrhea virus (BVDV) and development of ELISA and ICA for BVDV detection. Biosci Biotechnol Biochem, 80, 2467-2472. 10. Villalba M., Fredericksen F., Otth C., Olavarria V. 2016. Transcriptomic analysis of responses to cytopathic bovine viral diarrhea virus-1 (BVDV-1) infection in MDBK cells. Mol Immunol, 71, 192-202. 11. Hertig C., Pauli U., Zanoni R., Peterhans E.,1991. Detection of bovine viral diarrhea (BVD) virus using the polymerase chain reaction. Vet Microbiol, 26, 65-76. 12. Araujo Pereira D., Brigolin Peron J., de Souza Almeida HM., Gasparini Baraldi T., Honorato Gatto IR., Coelho Kasmanas T., Pituco EM., Montassier HJ., de Oliveira LG3. 2018. Experimental inoculation of gilts with bovine viral diarrhea virus 2 (BVDV-2) does not induce transplacental infection. Vet Microbiol, 225, 25-30. 13. Hyera J., Liess B., Frey H., 1987. A direct neutralizing peroxidase‐linked antibody assay for detection and titration of antibodies to bovine viral diarrhoea virus. Zentralbl Veterinarmed B, 34, 227-239. 14. Karaoglu T., 1998. Sahadanizole edilen bovine viral diarrhea virus (BVDV) izolatlarının immunplak test ile biyotipik tayini. Ankara Üniv Vet Fak Derg, 45, 323-332. 15. Çabalar M., Karaoğlu M., 1999. Sığırlarda BVD virus enfeksiyonuna karşı antikor varlığının araştırılmasında notralizasyon immunperoksidaz (NPLA) ve serum notralizasyon (SN) testlerinin karşılaştırılması. Ankara Üniv Vet Fak Derg, 46, 249-255. 16. Yıldırım Y., Burgu İ., 2005. Kuzeydoğu Anadolu Bölgesindeki sığırlarda mavidil (BT), IBR, PI-3, EBL ve BVD enfeksiyonlarının seroprevalansı. Ankara Üniv Vet Fak Derg, 52, 113-117. 17. Tan MT., Karaoğlu MT., Erol N., Yildirim Y., 2006. Serological and virological investigations of bovine viral diarrhoea virus (BVDV) infection in dairy cattle herds in Aydın province. Turkish J Vet Anim Sci, 30, 299-304. 18. Yazici Z., Okur G., Albayrak H., 2007. Serological profile of some viral infections in unvaccinated cattle in Turkey. Med Weter, 63, 187-189. 19. Nural E., Sibel G., Abuzer A., 2014. Afyonkarahisar İlinde bovine viral diarrhea virus enfeksiyonunun serolojik olarak araştırılması. Kocatepe Vet J, 7, 17-21. 20. Şişman E., Akkan HA., 2011. Muğla İli ve çevresinde sığırcılık işletmelerinde bovine viral diyare virus (BVDV) infeksiyonunun serolojik olarak araştırılması. Sağlık Bilimleri Enstitüsü, Yüksek Lisans Tezi, Yüzüncü Yıl Üniversitesi. 21. Kayacan G., Yapıcı O., 2008. Konya ve çevresinde bulunan süt sığırcılığı işletmelerindeki hayvanlara ait kan ve süt serumlarında bovine viral diarrhea virus (BVDV)'una karşı oluşan antikorların elisa ile araştırılması. Sağlık Bilimleri Enstitüsü, Yüksek Lisans Tezi, Selçuk Üniversitesi. 22. Strong R., La Rocca SA., Paton D., Bensaude E., Sandvik T., Davis L., Turner J., Drew T., Raue R., Vangeel I., Steinbach F. 2015. Viral dose and immunosuppression modulate the progression of acute BVDV-1 infection in calves: Evidence of long term persistence after intra-nasal infection. PLoS One, 8, e0124689. 23. Ridpath JF., Bayles DO., Neill JD., Falkenberg SM., Bauermann FV., Holler L., Braun LJ., Young DB., Kane SE., Chase CC., 2015. Comparison of the breadth and complexity of bovine viral diarrhea (BVDV) populations circulating in 34 persistently infected cattle generated in one outbreak. Virology, 485, 297-304. 24. Brodersen B., White A., Smith D., 1998. In Immunohistochemical test on skin biopsies as a method for detection of cattle persistently infected with bovine viral diarrhea virus, American Association of Bovine Practitioners. Conference (USA), 25. Thür B., Zlinszky K., Ehrensperger F., 1996. Immunohistochemical detection of bovine viral diarrhea virus in skin biopsies: a reliable and fast diagnostic tool. Zentralbl Veterinarmed B, 43, 163-166. 26. Bianchi MV., Konradt G., de Souza SO., Bassuino DM., Silveira S., Mosena AC., Canal CW., Pavarini SP., Driemeier D. 2017. Natural outbreak of BVDV-1d-induced mucosal disease lacking intestinal lesions. Vet Pathol, 54, 242-248. 27. Hilbe M., Stalder H., Peterhans E., Haessig M., Nussbaumer M., Egli C., Schelp C., Zlinszky K., Ehrensperger F., 2007. Comparison of five diagnostic methods for detecting bovine viral diarrhea virus infection in calves. J Vet Diagn Invest, 19, 28-34. 28. Houe H., Lindberg A., Moennig V., 2006. Test strategies in bovine viral diarrhea virus control and eradication campaigns in Europe. J Vet Diagn Invest, 18, 427-436. 29. Luzzago C., Frigerio M., Tolari F., Mazzei M., Salvadori C., Del Piero F., Arispici M., 2006. Indirect immunohistochemistry on skin biopsy for the detection of persistently infected cattle with bovine viral diarrhoea virus in Italian dairy herds. New Microbiol, 29, 127-131. 30. Baszler T., Evermann J., Kaylor P., Byington T., Dilbeck P., 1995. Diagnosis of naturally occurring bovine viral diarrhea virus infections in ruminants using monoclonal antibody-based immunohistochemistry. Vet Pathol, 32, 609-618. 31. Liebler-Tenorio EM., Ridpath JF., Neill JD., 2004. Distribution of viral antigen and tissue lesions in persistent and acute infection with the homologous strain of noncytopathic bovine viral diarrhea virus. J Vet Diagn Invest, 16, 388-396. 32. Wilhelmsen C., Bolin S., Ridpath J., Cheville N., Kluge J., 1990. Experimental primary postnatal bovine viral diarrhea viral infections in six-month-old calves. Vet Pathol, 27, 235-243. 33. Shin T., Acland H., 2001. Tissue distribution of bovine viral diarrhea virus antigens in persistently infected cattle. J Vet Sci, 2, 81-84. 34. Ellis JA., West KH., Cortese VS., Myers SL., Carman S., Martin KM., Haines DM., 1998. Lesions and distribution of viral antigen following an experimental infection of young seronegative calves with virulent bovine virus diarrhea virus-type II. Can J Vet Res, 62, 161-169.