İntraartiküler propolis ekstraktının erişkin sıçanlarda deneysel osteoartrit tedavisinde etkinliği

Yıl 2017, Cilt: 44 Sayı: 4, 325 - 332, 05.12.2017

Gökçen Kerimoğlu Mehmet Emre Baki Kübra Akbulut Çakıroğlu

https://doi.org/10.5798/dicletip.362306

Cited By: 1

Öz

Amaç: Eklem kıkırdağının kendini tamir edebilme yeteneği oldukça sınırlıdır. Dejeneratif osteoartrit (OA), eklemde özellikle eklem kıkırdağı ve subkondral kemikte ilerleyici dejenerasyonla karakterizedir. Bazı sitokinler, matriks metalloproteinazlarının (MMP) ve kondrosit kaynaklı katabolik maddelerin salınımını artırarak kıkırdak harabiyetini hızlandırırlar. Bal arıları tarafından üretilen propolis sitokinler ve MMP üzerinde etkiye sahiptir. Bu çalışma; intraartiküler propolis uygulanmasının deneysel osteoartrit üzerine etkilerini araştırmayı amaçlamaktadır.
Yöntemler: Çalışmada kullanılan 21 adet Spraque Dawley cinsi dişi sıçan sadece artrotomi yapılan (A), artrotomi ve intraartiküler propolis uygulanan (P) ve artrotomi ve intraartiküler serum fizyolojik uygulanan (SF) olmak üzere üç gruba ayrıldı. P grubuna artrotomi sonrası 3. haftadan itibaren toplam üç hafta, haftada bir kez olacak şekilde 0.5 mg/ml konsantrasyondaki propolisten 0.1 ml intraartiküler verildi. SF grubuna ise P grubuyla aynı zamanlarda serum fizyolojik verildi. 6. hafta sonunda bütün sıçanlar servikal dislokasyon yoluyla sakrifiye edildi ve alınan diz eklemleri Safranin O-Fast Green ile boyanarak Mankin Skorlamasına göre histolojik olarak değerlendirildi.
Bulgular: Yapılan histolojik skorlamada gruplardaki ortalama skorlar;A grubunda 0.57; SF grubunda 10.1 ve P grubunda ise 5.57 puan olarak hesaplanmıştır. A grubunda; eklem yüzeyi kıkırdak yapısının, boyanmasının ve hücrelerinin genel olarak normal olduğu görüldü. SF grubunda, kıkırdak yüzeyinde yarıklar; hücrelerinde ve matriks boyanmasında ciddi bozukluk mevcut olduğu gözlendi. P grubunda ise boyanmada azalma ve hücrelerde gruplaşmalar görülse de eklem yüzeyi SF grubuna göre daha düzgündü.
Sonuç: İntraartikülerpropolisekstraktı uygulamasının deneysel OA oluşumunu azaltıcı etkisi olabilir.

Anahtar Kelimeler

Propolis, osteoartrit

Kaynakça

• 1. Buckwalter JA, Mankin HJ, Grodzinsky AJ. Articular cartilage and osteoarthritis. Instr Course Lect. 2005;54:465-80.
• 2. Teeple E, Jay GD, Elsaid KA, Fleming BC. Animal models of osteoarthritis: Challenges of model selection and anaylsis. AAPS J. 2013;15:438-46.
• 3. Bove SE, Leamont KD, Brooker RM et al. Surgically induced osteoarthritis in the rat results in the development of both osteoarthritis-like joint pain and secondary hyperalgesia. Osteoarthritis Cartilage. 2006;14:1041-8.
• 4. Buckwalter JA, Mankin HJ. Articular cartilage. J Bone Joint Surg Am. 1997;79:612-32.
• 5. Lorenz H, Richter W. Osteoarthritis: Cellular and molecular changes in degenerating cartilage. Prog Histochem Cytochem. 2006;40:135-63.
• 6. Ma CH, Lv Q, Yu YX et al. Protective effects of tumor necrosis factor-α blockade by adalimumab on articular cartilage and subchondral bone in a rat model of osteoarthritis. Braz J Med Biol Res. 2015;48:863-70.
• 7. Zhang D, Huang B, Xiong C, Yue Z. Pinocembrin inhibits matrix metalloproteinase expression in chondrocytes. IUBMB Life. 2015;67:36-41.
• 8. Pasternak B, Aspenberg P. Metalloproteinases and their inhibitors-diagnostic and therapeutic opportunities in orthopedics. ActaOrthop. 2009;80:693-703.
• 9. Oner M, Kafadar I, Guney A et al. Effect of intraarticular propolis in an experimental septic arthritis model. J Pediatr Orthop B. 2011;20:8-13.
• 10. Khalil ML. Biological activity of bee propolis in health and disease. Asian Pac J Cancer Prev. 2006;7:22-31.
• 11. Hu F, Hepburn HR, Li Y, Chen M, Radloff SE, Daya S. Effects of ethanol and water extracts of propolis (bee glue) on acute inflammatory animal models. J Ethnopharmacol. 2005;100:276-283.
• 12. Soromou LW, Jiang L, WeiM et al. Protection of mice against lipopolysaccharide-induced endotoxic shock by pinocembrin is correlated with regulation of cytokine secretion. J Immunotoxicol. 2014;11:56-61.
• 13. Gao M, Zhu SY, Tan CB, Xu B, Zhang WC, Du GH. Pinocembrin protects the neurovascular unit by reducing inflammation and extracellular proteolysis in MCAO rats. J Asian Nat Prod Res. 2010;12:407-18.
• 14. Bendele AM. Animal model of osteoarthritis. J Musculoskelet Neuronal Interact. 2001;1:363-76.
• 15. Janusz MJ, Bendele AM, Brown KK, Taiwo YO, Hsieh L, Heitmeyer SA. Induction of osteoarthritis in the rat by surgical tear of the meniscus: Inhibition of joint damage by a matrixmetalloproteinase inhibitor. Osteoarthritis Cartilage. 2002;10:785-791.
• 16. Pearson RG, Kurien T, Shu KSS, Scammell BE. Histopathology grading systems for characterisation of human knee osteoarthritis-reproducibility, variability, reliability, correlation, andvalidty. Osteoarthritis Cartilage. 2011;19:324-31.
• 17. Fernandes JC, Martel-Pelletier J, Pelletier JP. The role of cytokines in osteoarthritis pathophysiology. Biorheology. 2002;39:237-46.
• 18. Kapoor M, Martel-Pelletier J, Lajeunesse D, Pelletier JP, Fahmi H. Role of proinflammatory cytokines in the pathophysiology of osteoarthritis. Nat Rev Rheumatol. 2011;7:33-42.
• 19. Wojdasiewicz P, Poniatowski LA, Szukiewicz D. The role of inflammatory and anti-inflammatory cytokines in the pathogenesis osteoarthritis. Mediators Inflamm. 2014;2014:561459.
• 20. Liu Y, Peng H, Meng Z, Wei M. Correlation of IL-17 level in synovia and severity of knee osteoarthritis. Med Sci Monit. 2015;21:1732-6.
• 21. Bramono DS, Richmond JC, Weitzel PP, Kaplan DL, Altman GH. Matrix metalloproteinases and their clinical applications in orthopaedics. Clin Orthop Relat Res. 2004;428:272-85.
• 22. Cardile V, Panico A, Gentile B, Borrelli F, Russo A. Effect of propolis on human cartilage and chondrocytes. Life Sci. 2003;73:1027-35.
• 23. Cipolletta C, Jouzeau JY, Geqout-Pottie P et al. Modulation of IL-1-induced cartilage injury by NO synthase inhibitors: a comparative study with rat chondrocytes and cartilage entities. Br J Pharmacol. 1998;124:1719-27.
• 24. Lyons-Giordano B, Pratta MA, Galbraith W, Davis GL, Arner EC. Interleukin-1 differentially modulates chondrocyte expression of cyclooxygenase-2 and phospholipase A2. Exp Cell Res. 1993;206:58-62.
• 25. Armutcu F, Akyol S, Ustunsoy S, Turan FF. Therapeutic potential of caffeic acid phenethyl ester and its anti-inflammatory and immunomodulatory effects (Review). Exp Ther Med. 2015;9:1582-8.
• 26. Marquez N, Sancho R, Macho A, Calzado MA, Fiebich BL, Munoz E. Caffeic acid phenethyl ester inhibits T-cell activation by targeting both nuclear factor of activated T cells and NF-kappa B transcription factors. J Pharmacol Exp Ther. 2004;308:993-1001.
• 27. Park EH, Kahng JH. Suppressive effects of propolis in rat adjuvant arthritis. Arch Pharm Res. 1999;22:554-558.
• 28. Zheng W, Tao Z,Cai L, et al. Chrysin Attenuates IL-1β-Induced Expression of Inflammatory Mediators by Suppressing NF-κB in Human Osteoarthritis Chondrocytes. Inflammation. 2017;40:1143-54.
• 29. Viuda-Martos M, Ruiz-Navajas Y, Fernández-López J, Pérez-Alvarez JA. Functional properties of honey, propolis, and royal jelly. J Food Sci. 2008;73:R117-24.
• 30. Khalil ML. Biological activity of bee propolis in health and disease. Asian Pac J Cancer Prev.2006;7:22-31.