Mix Infection in the Cultured Black Sea Trout (Salmo trutta labrax)

Öz

This study was carried out for the investigation of the mortalities observed in Black Sea trout (Salmo trutta labrax) reared in a fish farm in Marmara Region, detection of pathological changes in tissues caused by agents and also for determination of proper treatment against isolated pathogens. For this purpose, six moribund Black Sea trout (400-500 g) were examined by using bacteriological, parasitological and histopathological methods. Externally, affected fish showed darkening of skin, deep skin lesions with exposure of muscle around the caudal fin as well as adipose and caudal fin erosions also the lesions down into the skeletal muscles around the caudal fin; internally pale liver, hyperemia around the gastrointestinal tract. Both external and internal parasites were not found on the affected fish samples. Bacterial inoculations were made from the visceral organs such as liver, spleen and kidney. Depending on the morphologic, physiologic and biochemical properties, bacterial isolates recovered from the fish samples were identified as Pseudomonas fluorescens and Staphylococcus sp. It was also determined that these isolates are the most sensitive to flumequine. Histopathologically, hemorrhages between the pyloric ceca; sloughing of the epitelial cells of mucosa to the lumen; degeneration of the parenchyma epithelial cells of the kidney tubules, periglomerular oedema and depletion of the haemopoietic tissue; degeneration of the liver parenchyma cells; depletion of red pulp and melanomacrophages center in the spleen and also necrosis in the gill filaments were observed. In this study, Pseudomonas fluorescens and Staphylococcus sp. were isolated and identified from cultured Black Sea trout for the first time as a disease agents as well as detailed pathological changes caused by these pathogenic bacteria in tissues.

Anahtar Kelimeler

• Flumequine,histopathology,Black Sea trout,Pseudomonas fluorescens,Staphylococcus sp.

Kültürü Yapılan Karadeniz Alabalıklarında (Salmo trutta labrax) Karma Enfeksiyon

Öz

Bu çalışma, Marmara Bölgesi’ ndeki bir işletmede kültürü yapılan Karadeniz alabalıklarında (Salmo trutta labrax) görülen ölümlerin nedenini belirlemek, etkenin dokularda meydana getirdiği patolojik değişikliklerin tespiti yanı sıra etkene karşı uygun olan tedaviyi belirlemek amacı ile yürütülmüştür. Bu amaçla altı adet hasta Karadeniz alabalığı (400-500 g) bakteriyolojik, parazitolojik ve histopatolojik metotlar kullanılarak incelenmiştir. Hasta alabalıklarda iç bakıda sırt bölgesinde renkte koyulaşma, adipoz yüzgeç ve kuyruk yüzgeçlerinde erime yanı sıra kaudal yüzgeç etrafında kaslara kadar inen derin deri lezyonları; dış bakıda ise splenomegali, karaciğerde solgunluk, sindirim kanalı etrafındaki damarlarda hiperemi gibi klinik bulgular tespit edilmiştir. İncelenen hasta balıklarda herhangi bir parazitin varlığına rastlanılmamıştır. Hasta balıkların karaciğer, böbrek ve dalak gibi iç organlarından Tryptic Soy Agar (TSA) besiyerine yapılan ekimlerin inkübasyonu sonucunda besiyerinde üreyen bakterilerin morfolojik, fizyolojik ve biyokimyasal özellikleri incelendiğinde izole edilen bakteriler Pseudomonas fluorescens ve Staphylococcus sp. olarak identifiye edilmiş ayrıca izole edilen bu bakterilerin en çok flumekuine karşı duyarlı olduğu tespit edilmiştir. Histopatolojik olarak, pilorik sekalar arasında hemoraji, bağırsak lümenini örten epitel hücrelerinde nekroz ve lümene dökülme, böbrek tübülerinin parankim epitelyum hücrelerinde dejenerasyon, periglomerular ödem, hemapoietik dokuda boşalma, karaciğerin parankim hücrelerinde dejenerasyon ve nekroz, dalak dokusunda kırmızı pulpada boşalma ve melanomakrofaj odakları yanı sıra solungaç filamentlerinde nekroz gözlenmiştir. Bu çalışma ile kültür çalışmaları yapılan hasta Karadeniz alabalıklarında ilk kez hastalık etkeni olarak Pseudomonas fluorescens ve Staphylococcus sp. izole ve identifiye edilmiş ayrıca bu patojen bakterilerin dokularda meydana getirdiği patolojik değişiklikler detaylı bir şekilde verilmiştir.  

Anahtar Kelimeler

• Flumekuin,histopatoloji,Karadeniz alabalığı,Pseudomonas fluorescens,Staphylococcus sp.

Kaynakça

1. 1. Ahne W, Popp W, Hoffmann R. Pseudomonas fluorescens as a pathogen of tench (Tinca tinca). B Eur Assoc Fish Pat 1982; 4: 56-7.
2. 2. Akaylı T, Timur G. Yavru alabalıklarda (Oncorhynchus mykiss) pseudomonad septisemisi üzerinde bir çalışma. İÜ Vet Fak Derg 2004; 30(1): 121-31.
3. 3. Akaylı T, Çiğdem Ü, Başaran B. Kültür balıklarında Staphylococcus cohnii subsp. cohnii enfeksiyonu. Turk J Aqu Sci 2011; 26(2): 1-12.
4. 4. Akaylı T, Çiğdem Ü, Çanak Ö, Sönmez E, Erk MH. Micrococcus luteus’un bazı Gram pozitif balık patojenlerine karşı etkisinin araştırılması. Kocatepe Vet Derg, 2016; 9(2): 74-9.
5. 5. Aksungur M, Yılmaz C, Tabak İ, Aksungur N, Mısır, DS. Karadeniz alabalığı (Salmo trutta labrax, Pallas, 1811)’nın kültür şartlarına adaptasyonu. FÜ Fen ve Müh Bil Derg 2005; 17(2): 349-59.
6. 6. Allen DA, Austin B, Colwell, RR. Numerical taxonomy of bacterial isolates associated with a freshwater fishery. J Gen Microbiol 1983; 129: 2043-62.
7. 7. Austin B, Austin DA. Bacterial Fish Pathogens Disease in Farmed and Wild Fish, Fifth Edition. London: Springer, 2012; pp. 349-51.
8. 8. Austin B, Al-Zahrani AMJ. The effect of antimicrobial compounds on the gastrointestinal microflora of rainbow trout Salmo gairdneri richardson. J Fish Biol 1988; 33:1-14.

9. 9. Aydın S, Gültepe N, Çiltaş A. Çanakkale ilindeki bir gökkuşağı alabalığı (Oncorhynchus mykiss Walbaum) işletmesinde Pseudomonas sp. enfeksiyonu. AÜ Ziraat Fak Derg 2010; 36(1): 39-43.
10. 10. Barry AL, Thornsberry C. Susceptibility tests: diffusion test procedures, Lennette EH, Balows A, Hausler WJ, Shadamy HJ, eds. Manual of Clinical Microbiology. Fourth Edition. Washington: American Society of Microbiology, 1985; pp. 978-87.
11. 11. Buller NB. Bacteria from fish and other aquatic animals: A practical dentification manual. UK: CABI Publishing, 2004; pp. 149-54.
12. 12. Bullock GL Characteristics and pathogenicity of a capsulated Pseudomonas isolated from gold fish. App Microbiol 1965; 13: 89-92.
13. 13. Bullock AM. Laboratory Methods in Fish Pathology. Roberts RJ ed. London: Bailliere Tindall, 1978; pp. 235-67.
14. 14. Csaba G , Prigli M, Bekesi L, Kovacs E, Gayer E, Bajmocy F. Septicaemia in silver carp (Hypophthalmichthys molitrix,) and bighead (Aristichthys nobilis) caused by Pseudomonas fluorescens. In: Fish, Pathogens and Environment in European Polyculture (Olah J, Molnar K, Jeney S , eds.) Mueller F (Fisheries Research Institute, Szarvas), 1981; pp. 111-23.
15. 15. Culling CFA. Handbook of histopatological tecniques (Including museum tecnique). Second education, Butterworth and Co. (Publisher) Ltd, 1963; pp. 25-97.
16. 16. Darak O, Barde RD. Pseudomonas fluorescens associated with bacterial disease in Catla catla in Marathwada region of Maharashtra. Inter J Adv Biotech Res 2015: 6(2), 189-95.
17. 17. Erbaş Hİ, Başçınar N, Sonay FH, Civelek RO. Farklı büyüklükteki Karadeniz alabalığı (Salmo trutta labrax Pallas, 1811) damızlıklarının büyüme performansına yemleme sıklığının etkisi. BİBAD 2013; 6: 67-71.
18. 18. Kılıç A, Şeker E, Özcan M, İspir Ü. Bacterial flora of rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss) in farms in Elazığ region. Sc Eng J FU 2007; 19(2): 129-32.
19. 19. Markovic M, Radojicic M, Cosic S, Levnaic D. Massive death of silver carp (Hypophthalmichthys molitrix Val.) and bid head (Aristichthys nobilis Rich.) caused by Pseudomonas fluorescens bacteria. Vet Glasnik 1996; 50: 761-5.
20. 20. Metin S, Kubilay A, Onuk EE, Didinen BI, Yildirim P. First isolation of Staphylococcus warneri from cultured rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) broodstock in Turkey. Bull Euro Assoc Fish Pathol 2014; 34: 165-74.
21. 21. Meyer FP, Collar JD. Description and treatment of Pseudomonas infection in white catfish. Appl Microbiol 1964; 12: 201-3.
22. 22. Miyazaki T, Kubota S, Miyashita T. A histopathological study of Pseudomonas fluorescens infection in tilapia. Fish Path 1984: 19(3), 161-6.
23. 23. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Performance standards for antimicrobial susceptibiliety testing. Approved standard. NCCLS document M100-S5. 1993; pp. 104-7.
24. 24. Roberts RJ. Fish Pathology. Fourth edition. UK: Wiley-Blackwell, 2012; pp. 367-368.
25. 25. Sakai M, Atsuta S, Kobayashi M. Pseudomonas fluorescens isolated from the diseased rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. K Arc Experiment Med 1989; 62: 157-62.
26. 26. Savas H, Altinok I, Cakmak E, Firidin S. Isolation of Renibacterium salmoninarum from cultured Black sea salmon (Salmo trutta labrax): first report in Turkey. B Eur Assoc Fish Pat 2006; 26(6): 238-44.
27. 27. Serezli R, Güzel Ş, Kocabaş M. Fecundity and egg size of three salmonid species (Oncorhyncus mykiss, Salmo labrax, Salvelinus fontinalis) cultured at the same farm condition in North-Eastern, Turkey. J Anim Vet Adv 2010; 9: 576-80.
28. 28. Timur, G, Timur M. Balık Hastalıkları, İstanbul Üniversitesi Su Ürünleri Fakültesi, İstanbul, 2003; pp. 350-421.
29. 29. Timur, G, Akayli T. First study of Stapylococcosis in farmed rainbow trout fry in Turkey, International Symposium of Fsheries and Zoology, 23-26 October 2003; pp. 67-79.
30. 30. Turgay E, Steinum SK, Candan A. Kültürü yapılan gökkuşağı alabalıklarında (Oncorhynchus mykiss) Staphylococcus hominis subsp. hominis enfeksiyonu. T J Aqu Scie 2015; 30(1): 11-22.
31. 31. Türe M, Haliloğlu Hİ, Altuntaş, C, Boran, H, Kutlu, İ. Comparison of Experimental Susceptibility of Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss), Turbot (Psetta maxima), Black Sea Trout (Salmo trutta labrax) and Sea Bass (Dicentrarchus labrax) to Lactococcus garvieae. J Fish Aquat Sc 2014; 14(2): 507-13.
32. 32. Türkiye İstatistik Kurumu (TUİK), 2018, http://www.tuik.gov.tr/PreHaberBultenleri.do?id=10863 Erişim tarihi: 21.01.2018.