Detection of Cryptosporidiosis in Diarrhoeic Neonatal Calves in Nevşehir District by Real Time PCR and Nested PCR Techniques

Yıl 2012, Cilt: 9 Sayı: 2, 79 - 87, 01.06.2012

A.t. Şimşek A. İnci A. Yıldırım A. Çiloğlu Z. Bişkin - Ö.düzlü

Öz

-

Anahtar Kelimeler

-

Nevşehir Yöresindeki Yeni Doğan İshalli Buzağılarda Cryptosporidiosis’in Real Time PCR ve Nested PCR Yöntemleri ile Saptanması

Öz

Bu çalışma, Nevşehir yöresindeki ishalli buzağılarda cryptosporidiosis’in real time PCR ve nested PCR teknikleri ile saptanması amacıyla yapılmıştır. Bu amaçla 2010-2011 yılları arasında Nevşehir’in farklı ilçe ve köylerinden 150 ishalli buzağıdan dışkı örneği tekniğine uygun olarak toplanmıştır. Toplanan örneklerden genomik DNA ekstraksiyonu yapılmıştır. Elde edilen genomik DNA’lar Cryptosporidium soy spesifik 18S rRNA parsiyel gen bölgesini amplifiye eden JVAF, JVAR primerleri ve JVAP TaqMan probuyla, C. parvum spesifik JVAGF, JVAGR primerleri ve JVAGP2 probu ile real time PCR analizine tabii tutulmuşlardır. Nested PCR analizlerinde de Cryptosporidium türlerinin 18S rRNA gen bölgesini amplifiye eden spesifik primerler kullanılmıştır. Real time PCR analizleri sonucu 23’ü (%15.3) C. parvum, 8‘i (%5.3) ise Cryptosporidium spp. olmak üzere toplam 31 (%20.7) örnekte cryptosporidiosis pozitifliği saptanmıştır. Örneklerin nested PCR analizleri sonucunda ise 29’u (%19.3) Cryptosporidium spp. pozitif bulunmuştur. Real time PCR tekniği altın standart test kabul edilerek nested PCR tekniğinin duyarlılığı %93.5 ve özgüllüğü ise %100 olarak belirlenmiş, iki teknik arasında %95.8 uyum saptanmıştır. Cryptosporidiosis’in en yüksek %23.2 ile 1-2 aylık buzağılarda belirlenmiş bunu sırasıyla %19.3 ve %16.7 ile 0-1 ve 2-3 aylık buzağılar izlemiştir. Enfeksiyonun erkek buzağılarda %21.5, dişilerde ise %19.7, Holştayn, Simental ve Montofon ırkında sırasıyla %32.6, %25 ve %11.1 yaygın olduğu görülmüştür. Bu çalışma Türkiye’de sığırlarda cryptosporidiosis’in real time PCR tekniği ile araştırıldığı ilk çalışmadır. Çalışmada Türkiye’de ilk kez Cryptosporidium soy ve C. parvum pozitifliği eşzamanlı olarak ortaya konmuştur

Anahtar Kelimeler

Buzağı, Cryptosporidium spp., ishal, nested PCR, real time PCR

Kaynakça

• Arslan MÖ, Erdoğan HM, Tanrıverdi S. Neonatal buzağılarda epidemiyolojisi. 13. Ulusal Parazitoloji Kongre- si, Program ve Özet Kitabı, SB6-01, Konya ; s. 186. cryptosporidiosis’in Arslan MÖ, Gıcık Y, Erdoğan HM, Sarı B. Prevalence of Cryptosporidium spp. oocysts in diarrhoeic calves in Kars province Turkey. Turk J Vet Anim Sci. 2001; 25: 161-64.
• Burgu A. Türkiye’de buzağılarda Cryptosporidium’ların bulunuşu ile ilgili ilk çalış- malar. Ankara Üniv Vet Fak Derg 1984; 31(3): 85.
• Calderaro A, Montecchini S, Gorrini C, Dettori G, Chezzi C. Similar diagnostic performances of antigen detection and nucleic acid detection of Cryptosporidium spp. in a low-prevalence setting. Diagn Microbiol Infect Dis 2011; 70 (1):72-7.
• Castro-Hermida JA, Gonzales-Losada YA, Ares-Mazas E. Prevalence of and risk factors involved in the spread of neonatal bovine cryptosporidiosis in Galicia (NW Spain). Vet Parasitol 2002; 106: 1-10.
• Çeliksöz A, Çelik S. Cumhuriyet Üniversitesi Hastanesi’nde gastroenteritli ve malnütrisyonlu hastalarda Cryptosporidium spp. araştırması. T Parazitol Derg 2003; 27: 85-8.
• Çitil M, Arslan MÖ, Güneş V, Erdoğan HM. Neonatal buzağı ishallerinde Cryptosporidium ve Eimeria enfeksiyonlarının rolü. Kafkas Üniv Vet Fak Derg 2004; 10(1): 59-64.
• Değerli S, Çeliksöz A, Kalkan K, Özçelik S. Prevalence of Cryptosporidium spp. and Giardia spp. in cows and calves in Sivas. Turk J Vet Anim Sci 2005; 29: 995-9.
• Dirim Erdoğan D, Dağci H, Turgay N, Akarca US, Alkan MZ. The molecular diagnosis of cryptosporidiosis in fresh and formalin preserved fecal samples. Turkiye Parazitol Derg 2009; 33(2): 120-4. Fayer R, Santı´n M, Trout JM:
• Cryptosporidium ryanaen sp. (Apicomplexa: Cryptosporidiidae) in cattle (Bos taurus). Vet Parasitol 2008; 156: 191-8.
• Fayer R. Cryptosporidium: a water-borne zoonotic parasite. Vet Parasitol 2004; 126: 37 56.
• Göz Y, Gül A, Aydn A. Hakkari yöresinde sığırlarda Cryptosporidium sp.'nin yaygınlığı. YYU Veteriner Fakültesi Dergisi 2007; 18 (2): 40.
• Gül A, Çiçek M, Kılınç Ö. Prevalence of Eimeria spp., Cryptosporidium spp. and Giardia spp. in calves in the Van Province. T Parazitol Derg 2008; 32(3): 202-4.
• Hadfield SJ, Robinson G, Elwin K, Chalmers RM. Cryptosporidium spp. in human clinical samples by use of real-time PCR J Clin Microbiol 2011; 49(3): 918-24. of
• Jothikumar N, da Silva AJ, Moura I, gical findings and treatment with Lasalocid- NA. Dtsch Tierarztl Wochenschr 2005; 112
• Qvarnstrom Y, Hill VR. Detection and differentiation of Cryptosporidium hominis and Cryptosporidium parvum by dual TaqMan assays. J Med Microbiol 2008; 57(Pt ):1099-105.
• Lalkhen AG, McCluskey A. Clinical tests: sensitivity and specificity. Critical Care & Pain ; 8(6): 221-3 Maldonado-Camargo S, Atwill ER, Saltijeral-Oaxaca JA, Herrera-Alonso LC. Prevalence of and risk factors forshedding of Cryptosporidium parvum in Holştayn Freisian dairycalves in central Mexico. Prev Vet Med ; 36: 95-107. Ondrácková Z, Kvác M, Sak B, Kvetonová D, Prevalence Rost characterization of Cryptosporidium spp. in dairy cattle in South Bohemia, the Czech Republic. Vet Parasitol 2009; 165(1-2): 141- and molecular
• Özer E, Erdoğmuş SZ, Köroğlu E. Elazığ yöresinde buzağı ve kuzularda bulunan Cryptosporidium’un yayılışı üzerinde araştır- malar. Turk J Vet Anim Sci 1990; 14: 439-45.
• Özlem MB, Eren H, Kaya O. Aydın yöresi buzağılarda Cryptosporidium’ların varlığının araştırılması. Bornova Vet Kont Araş Enst Derg 1997; 22: 15-22.
• Paul S, Chandra D, Tewari AK, Banerjee PS, Ray DD, Boral R, Rao JR. Comparative evaluation and economic assessment of coprological diagnostic methods and PCR for detection of Cryptosporidium spp. in bovines. Vet Parasitol 2009; 164(2-4): 291-5.
• Ramirez NE, Ward LA, Sreevatsan S. Review of the biology and epidemiology of cryptosporidiosis in humans and animals. Microbes and Infection 2004; 6: 773-85.
• Ryan U, Xiao L, Read C, Zhou L, Lal AA, Pavlasek I. Identification of novel Cryptosporidium genotypes from the Czech Republic. Appl Environ Microbiol 2003; 69 (7): 4302-7.
• Sahal M, Karaer Z, Yasa Duru S, Cizmeci S, (6): 203-8. Sakarya Y, Kar S, Tanyuksel M. Detection of Cryptosporidium spp. in humans and calves through Nested PCR and carbol fuchsin staining methods in Ankara, Turkey. Kafkas Univ Vet Fak Derg 2010; 16 (6): 977-80.
• Santı´n M, Trout JM. Livestock. In: Fayer R, Xiao L. Cryptosporidium Cryptosporidiosis. Boca Raton FL, CRC Press 2007; 451- 83. and Sari B, Aktaş MS, Arslan MO. The prevalen- ce of Cryptosporidium spp. in calves in Erzu- rum province. T Parazitol Derg 2008; 32(2): 9.
• Sari B, Arslan MO, Gicik Y, Kara M, Taşçi GT. The prevalence of Cryptosporidium species in diarrhoeic lambs in Kars province and potential risk factors. Trop Anim Health Prod 2009; 41(5): 819-26.
• Sevinç F, Irmak K, Sevinç M. The prevalence of Cryptosporidium parvum infection in the diarrhoiec and nondiarrhoeic calves. Revue Med Vet 2003; 154(5): 357-61.
• Sungur T, Kar S, Güven E, Aktaş M, Karaer Z, Vatansever Cryptosporidium spp. in feces with nested PCR and carbol fuchsin staining method. T Parazitol Derg 2008; 32(4): 305-8. of
• Tanrıverdi S, Arslan MÖ, Akiyoshi DE, Tzipori S, Widmer G. Identification of genotypically mixed Cryptosporidium parvum populations in humans and calves. Mol Biochem Parasitol ; 130(1): 13-22. Tanrıverdi S, Markovics A, Arslan MÖ, İtik A, Shkap V, Widmer G. Emergence of distinct genotypes of Cryptosporidium parvum in structured host populations. Appl Enviro Microbiol 2006; 72(4): 2507-13.
• Thompson RCA, Olson ME, Zhu G, Enomoto S, Cryptosporidium and Cryptosporidiosis. Adv Parasitol 2005; 59: 77-158. Hijjawi NS.
• Xiao L, Feng Y: Zoonotic cryptosporidiosis. FEMS Immunol. Med Microbiol 2008; 52: 309 23. Xiao L. Molecular epidemiology of cryptospoidiosis: an update. Exp Parasitol ; 124: 80-9.