Bazı Yonca Çeşitlerinde Farklı Temel Besin Ortamlarının Somatik Embriyogenesis Üzerine Etkisi

Yıl 2020, Cilt: 36 Sayı: 3, 345 - 349, 31.12.2020

Nilgün Ekinci Satı Uzun

Öz

Farklı
yonca çeşitlerinin somatik embriyogenesis ile bitki rejenerasyonuna tepkilerini
belirlemek amacıyla yürütülen çalışmada Prosementi, Gea, Savaş, Ömerbey, OS66,
Artemis ve Classe yonca çeşitleri kullanılmıştır. Çeşitlere ait fidelerden elde
edilen kotiledon ve yaprak eksplantları 4 mg/L 2,4-D, 0.5 mg/L kinetin, 2 g/L
prolin ve 30 g/L sukroz içeren, 8 g/L agar ile katılaştırılan dört farklı (MS,
B5, SH ve N6) temel besin ortamında kültüre alınmıştır. Araştırma 3 tekerrürlü
ve her tekerrürde 10 eksplant olacak şekilde tesadüf parsellerinde faktöriyel
deneme desenine göre yürütülmüştür. Araştırma sonucunda petri başına kallus
ağırlığı, petri başına somatik embriyo ve bitkicik sayıları sırasıyla
0.253-6.700 g, 0-19.667 adet ve 0-6.667 adet arasında değişim göstermiştir.
Yaprak eksplantında en fazla petri başına somatik embriyo ve bitkicik sayısı
Ömerbey yonca çeşidinde SH temel besin ortamında elde edilirken, Kotiledon
eksplantında ise en yüksek petri başına somatik embriyo sayısı OS 66 çeşidinde
N6 besin ortamında elde edilmiş olup, hiç bitkicik gelişimi belirlenmemiştir. 

Anahtar Kelimeler

Medicago sativa, Somatik embriyogenesis, sürgün rejenerasyonu, temel besin ortamı

Teşekkür

Bu çalışma Yüksek Ziraat Mühendisi Nilgün Ekinci’nin Yüksek Lisans Tezinden hazırlanmıştır.

Kaynakça

• [1] Elçi, Ş., 2005. Baklagil ve Buğdaygil Yem Bitkileri. T.C. Tarım ve Köy İşleri Bakanlığı, Ankara, 486 s.
• [2] Serin, Y., Tan, M., 2001. Baklagil Yem Bitkileri. Atatürk Üniversitesi Ziraat Fakültesi Ofset Tesisi, Erzurum, 177 s.
• [3] Babaoğlu, M., Yorgancılar, M., Akbudak, A.A., 2001. Doku Kültürü: Temel Laboratuvar Teknikleri, 1-35. In: Bitki Biyoteknolojisi- Doku Kültürü ve Uygulamaları (Eds: M. Babaoğlu, E. Gürel, S. Özcan). Selçuk Üniversitesi Vakfı
• [4] Moltrasio, R., Robredo, C. G., Gómez, M. C., Paleo, A. H. D., Díaz, D. G., Rios, R. D., Franzone, P. M. 2004. Alfalfa (Medicago sativa) somatic embryogenesis: genetic control and introduction of favourable alleles into elite Argentinean germplasm. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 77(2), 119-124.
• [5] Saunders, J.W. ve Bingham, E.T., 1972. Production of alfalfa plants from callus tissue. crop science, 12: 804-808.
• [6] Barbulova, A. Alantcheva, A., Zhiponova, M., Vlahoca, M., Atassanov A., 2002. Estabishment of embryogenic potantial of economically important Bulgarian alfalfa cultivars (Medicago sativa L.). Biotechnology and Biotechnological Equipment, 16(1), 55-63.
• [7] Lai, F., Bryan D, McKersie. 1994. Regulation of storage protein synthesis by nitrogen and sulfur nutrients in alfalfa (Medicago sativa L.) somatic embryos. Plant science, 103, 209-221.
• [8] Erişen, S. 2005. Yonca (Medicago sativa L.)’da somatik embriyogenesis aracılığıyla bitki rejenerasyonu, Tarım Bilimleri Dergisi ,11(3),311-315
• [9] Ninkovic, S., Miljus-Djukic, J., Neskovic, M., 1995. Genetic transformation of alfalfa somatic embryos and their clonal propagation through repetitive somatic embryogenesis. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 42 (3), 255-260.
• [10] Meijer, E.G.M., Brown, D.C.W., 1987. Role of exogenous reduced nitrogen and sucrose in rapid high frequency somatic embryogenesis in Medicago sativa. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 10,11-19.
• [11] Atanassov, A., Brown, D.C., 1984. Plant regeneration from suspension culture and mesophyll protoplasts of Medicago sativa L. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 3(2),149-162.
• [12] Sangra, A., Shahin, L., & Dhir, S. K. (2019). Long-Term Maintainable Somatic Embryogenesis System in Alfalfa (Medicago sativa) Using Leaf Explants: Embryogenic Sustainability Approach. Plants, 8(8), 278.
• [13] Murashige, T., Skoog, F. 1962. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiologia plantarum, 15(3), 473-497.
• [14] Gamborg, O. L., Miller, R., Ojima, K. 1968. Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells. Experimental Cell Research, 50(1), 151-158.
• [15] Schenk, R. U., Hildebrandt, A. C. 1972. Medium and techniques for induction and growth of monocotyledonous and dicotyledonous plant cell cultures. Canadian Journal of Botany, 50(1), 199-204.
• [16] Chu, C. C., Wang, C. C., Sun, C. S., Hsu, C., Yin, K. C., Chu, C. Y., Bi, F. Y. 1975. Establishment of an efficient medium for anther culture ofrice through comparative experiments on the nitrogen. Sci. Scinica, 18659-668.
• [17] Brown, D.C.W, Atanassov, A., 1985. Role of genetic background in somatic embryogenesis in Medicago. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 4,111-122.
• [18] Chen, T.H.H., Marowitch, J., 1987.Screening of Medicago falcata germplasm for in vitro rejeneration. Journal Plant Physiology, 128, 271-277.
• [19] Nolan, K.E., Rose, R.J., Gorts, J.R., 1989. Regeneration of Medicago trunculata from tissue culture: ıncreased somatic embryogenensis using explants from regenerated plants. Plant Cell Reports, 8, 278-281.
• [20] Takamizo, T., Suginobu, K., Ohsugi, R., 1991. Somatic embriyogenesis in a recalcitrant cultivar of alfalfa (Medicago sativa L.) in an improved medium. Bulletin of the Na tional Grassland Research Institure (Japan), 44, 15-22.,
• [21] Saha, P., Bandyopadhyay, S., Raychaudhuri, S.S., 2011. Formulation of nutrient medium for in vitro somatic embryo induction in Plantago ovata Forsk. Biological Trace Element Research, 140(2), 225-243.