Gisela 6 ve SL 64 Anaçlarının İn vitro Koşullarda Çoğalma Performanslarının Belirlenmesi

Yıl 2020, , 308 - 316, 15.12.2020

Erol Aydın , Belgin Turunç Tarık Yarılgaç

https://doi.org/10.38001/ijlsb.754996

Öz

Bu çalışmada Gisela 6 ve SL 64 anaçlarının in vitro koşullarda çoğaltılabilme performansları araştırılmıştır. Eksplant kaynağı olarak sürgün ucu, besi ortamı olarak ise MS besi ortamı ile farklı hormon doz kombinasyonları kullanılmıştır eksplantlar başlangıç aşamasında 0.5 mgl^-1 BAP +0.1 mgl^-1 GA3 + 0.1 mgl^-1 IBA içeren MS besi ortamına dikilerek kültüre alınmıştır.
Sürgün çoğaltma aşamasında farklı BAP (0, 0.5 ve 1 mgl^-1) dozlarının etkisini belirlemek için çalışma yapılmıştır. BAP dozunun artması ile sürgün sayısının arttığı belirlenirken, en fazla sürgün sayısı Gisela 6 anacında 0.5 mgl^-1 BAP dozunda SL 64 anacında ise 1 mgl^-1 BAP dozunda gerçekleşmiştir.
Köklendirme ortamında ½ MS besi ortamında farklı IBA (0, 0.5, 1, 2 mgl^-1) dozlarının köklenme oranına etkisi incelenmiştir. Gisela 6 ve SL 64 anaçlarında IBA dozunun artması ile köklenme oranının arttığı ve en yüksek köklenme oranı 2 mgl^-1 IBA dozundan elde edilmiştir.

Anahtar Kelimeler

MS, kiraz anacı, Gisela 6, SL 64

Proje Numarası

BBNB/10/10 numaralı proje

Kaynakça

• [1]. Webster, A.D. and N. E. Looney, Cherries. 1996, CAB International Press. 513 p. UK.
• [2]. Özyigit, S., 0900 Ziraat ve dölleyicileri ile bazı klonal anaçlarının uyuşma durumları. Eğirdir Bahçe Kültürü Araştırma Enstitüsü Eylül Dergisi, 2003.
• [3]. Aka Kaçar, Y., et al., In vitro besin ortamında kullanılan değişik katılaştırıcı maddelerin ve farklı pH düzeylerinin bazı kiraz (Prunus avium L.) anaçlarının çoğaltılması üzerine etkileri. I. Sert Çekirdekli Meyveler Sempozyumu, 2001. 25-28 Eylül, Yalova.
• [4]. Borkowska, B. and J, Szczerba, Influence of different carbon sources on invertase activity and growth of sour cherry (Prunus cerasus L.) shoot cultures. J. of Exp. Botany, 1991. 240 (42): p. 911 - 915.
• [5]. Morini, S. and P. Sciutti-Fortuna, In vitro growth response of Prunus cerasifera shoots as influenced by different light-dark cycles and sucrose concentrations. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 1992. 28 (3): p. 245 - 248.
• [6]. Fidancı, A., M. Burak, and B. Erenoğlu, Bazı klonal kiraz ve vişne anaçlarının in vitro’da hızlı çoğaltım tekniklerinin belirlenmesi (I. Aşama). I. Sert Çekirdekli Meyveler Sempozyumu, 2001. P. 25-28 Eylül, 181-186, Yalova.
• [7]. Güçlü, F., F. Koyuncu, and B. Şan, The in vitro micropropagation of some clonal cherry rootstocks. Journal of Natural & Applied Sciences, 2010. P. 14.
• [8]. Yıldırım, H., Hacıhaliloğlu kayısı (Prunus armeniaca L.) çeşidinin in vitro çoğaltımı. Doktora Tezi, Dicle Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü Biyoloji Anabilim Dalı, 2006. Diyarbakır.
• [9]. Sülüşoğlu, M., Kiraz-vişne anaçlarının in vitro çoğaltımı. Doktora Tezi, Ankara Üniversitesi, Fen Bilimleri Enstitüsü, Bahçe Bitkileri Anabilim Dalı, 2002. Ankara.
• [10]. Hepaksoy, S., Bazı kiraz anaçlarının mikroçoğaltımı üzerinde araştırmalar I. Gelişme ve çoğalma. Ege Üniversitesi Ziraat Fakültesi Dergisi, 2004. 41(3), 11-22.
• [11]. Fidancı, A., et al., Determination of ın vitro propagation techniques for some clonal cherry rootstocks, 2008. Proc. 5th IS on Cherry. Eds.: A.Eris et al.Acta Hort. 795, ISHS, 409. [18]. Ruíz Anchondo T.J, et al., Effect of the gelling agent and alternative substrates on micropropagation of peach rootstock GF 677 (Prunus amygdalus × P. persica). XXVIII international horticultural congress on science and horticulture for people,2010. 923, p. 209–212.
• [19]. Sülüşoğlu, M. and M. Çelik, SL-64 (Prunus mahaleb) ve F 12/1 (Prunus avium) anaçlarının mikro üretiminde temel besin ortamının ve hormonlarının sürgün proliferasyonu ve kalitesi üzerine etkileri. Türkiye IV. Ulusal Bahçe Bitkileri Kongresi, 2003. Cilt I: 111-114.
• [20]. Silva, A.L., et al., In vitro establishment and multiplication of prunus rootstock. Revista Brasileira de Fruticultura, 2003. 25 (2): 297-300.
• [21]. Xilogiannis, C., A. Xilogiannis, and E. Mpalas,. Micropropagation of two cherry rootstocks and their behavior in the nursery and the orchard. 5th on Cherry. A.Eriş et al., Editors. 2008, Acta Hort.p. 795.
• [22]. Büyükdemirci, H., The effects of medium ingredients on shoot propagation and rooting of cherry rootstocks in vitro. Acta Horticulturae, 2008. 795:419-422.
• [23]. Tang, H., et al. Plant regeneration from leaves of sweet and sour cherry cultivars. Scientia Horticulturae, 2002. 93, 235-244.
• [24]. Sülüşoğlu, M. and M. Çelik., SL 64 (P. mahaleb) ve F 12/1 (P. avium) anaçlarının mikro sürgünlerinin köklendirilmesi ve adaptasyonu üzerine araştırmalar. Türkiye IV. Ulusal Bahçe Bitkileri Kongresi, 2003. 08-12 Eylül, Antalya.
• [25]. Doric, D., et al., Use of in vitro propagation of Oblacinska sour cherry in rootstock breeding. Turkish Journal of Biology, 2015. 39(4), 575-581.