Gas Bubble Disease in Broodstocks and Larvae in a Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss)

Yıl 2020, Cilt: 5 Sayı: 3, 304 - 308, 30.09.2020

Muhammed Arabacı Boran Karataş Mustafa Akkuş

https://doi.org/10.35229/jaes.737359

Cited By: 1

Öz

In this study, the cause of the death in rainbow trout broodstocks and larvae were investigated in a rainbow trout hatchery (Van). Necropsy was done in broodstocks and larvae. The causative agents and symptoms were evaluated. Dissolved O2, CO2 and NH3, NO2 and NO3 concentrations in water were determined in order to evaluate the environmental factors of the disease. In addition, water temperature, pH and total hardness were also determined from other quality water criterias.
At skin and gill, eye edges, fins of broodstock were seen embolus. Around the yolk sac of the larvae were determined the gas bubbles. It was also observed that larvae could not consume the yolk sac, and larval posture was reverse at water surface. The dissolved O2 saturation at the inlet of the pools were measured as 165±2,51% and at the out ofbroodstock pool was 147±4,16%. The morbidity of the disease in the broodstocks were 25%, the mortality rate was 10%, and the morbidity and mortality rate was 5% in the larvae. According to the findings the disease is not an infectious disease but a non-contagious, environmental gas bubble disease.
As a result, the supersaturation of dissolved oxygen in water caused the gas bubble disease in broodstocks and larvae. For the solution of gas bubble disease, it may be recommended to the use of saturation column at the water inlets or aeration of water at the inlets of pools.

Anahtar Kelimeler

Broodstock, gas bubble disease, larva, rainbow trout

Gökkuşağı Alabalığı Anaç ve Larvalarda Görülen Gaz Kabarcığı Hastalığı

Öz

Bu çalışmada bir gökkuşağı alabalığı kuluçkahanesinde (Van) anaç ve larvalarda görülen ölümlerin nedeni araştırılmıştır. Gökkuşağı alabalığı anaç ve larvalarında nekropsi yapılarak hastalığa neden olan etken ve semptomlar değerlendirilmiştir. Hastalığın çevresel etkenlerini değerlendirmek amacıyla sudaki çözünmüş O2, CO2, NH3, NO2 ve NO3 konsantrasyonları belirlenmiştir. Ayrıca diğer su kalite kriterlerinden su sıcaklığı, pH ve total sertlik belirlenmiştir.
Anaçların deri, solungaç, göz kenarları ve yüzgeç ışınları üzerinde emboli olduğu, larvaların besin kesesinin etrafında gaz kabarcığı oluştuğu ve besin keselerini tüketemeyerek, su yüzeyinde ters yüzdükleri görülmüştür. Sudaki çözünmüş O2 saturasyonu havuz girişlerinde %165±2,51, anaç havuz çıkışında %147±4,16 olarak belirlenmiştir. Hastalığın anaçlardaki morbiditesi %25, mortalite oranının %10 olduğu, larvalarda ise morbidite ve mortalite oranının%5 olduğu görülmüştür. Elde edilen bulgular ile hastalığın enfeksiyoz bir hastalık olmayıp non-kontagiyoz çevresel kökenli gaz kabarcığı hastalığı olduğu belirlenmiştir.
Sonuç olarak anaç ve larvalarda gaz kabarcığı hastalığına sudaki aşırı çözünmüş oksijen doygunluğu sebep olmuştur. Gaz kabarcığı hastalığı ile karşılaşan yetiştiricilere su girişlerinde saturasyon kolonu kullanılması veya giriş suyunun havalandırılması önerilebilir.

Anahtar Kelimeler

Anaç, gaz kabarcığı hastalığı, gökkuşağı alabalığı, larva

Kaynakça

• Arabacı, M. (2007). Gökkuşağı Alabalığı Yetiştiriciliği, Van, 112s.
• Arabacı, M., Önalan, Ş., Yıldırım, S., Karataş, B., Yüce, T., (2014). An ignored environmental problem; the problems stemming from cement used in the constructions of aquatic buildings and their effects on fishes. Journal of International Environmental Application and Science, 9 (5), 634-638.
• Atay, D. (1989). Populasyon Dinamiği. Ankara Ünv. Zir. Fak. Yay. No: 1154, A.Ü. Basımevi, Ankara, 306 s.
• Balta, F. & Dengiz Balta, Z. (2020). Juvenil gökkuşağı alabalıklarında (Oncorhynchus mykiss) görülen gaz kabarcığı hastalığı ve tedavisi. Anadolu Çev. ve Hay. Dergisi, 5(1), 100-105.
• Cornacchia, J. W. & Colt, J. E. (1984). The effects of dissolved gas supersaturation on larval striped bass, Morone saxatilis (Walbaum). Journal of Fish Diseases, 7(1), 15-27.
• Dennison, B. A., & Marchyshyn, M. J. (1973). A device for alleviating supersaturation of gases in hatchery water supplies. The Progressive Fish-Culturist, 35(1), 55-58.
• Egemen, Ö. (2006). Su Kalitesi. Ege Üniversitesi Su Ürünleri Fakültesi Yayın No:14, (VI. Baskı). Ege Üniversitesi Basımevi Bornova-İzmir 150s.
• Espmark, Å. M., Hjelde, K., & Baeverfjord, G. (2010). Development of gas bubble disease in juvenile Atlantic salmon exposed to water supersaturated with oxygen. Aquaculture, 306(1-4), 198-204.
• HACH, (2006). DR/5000 Spectrophotometer Procedures Manual. Germany 115p.
• Lemarie, G., Hosfeld, C. D., Breuil, G., & Fivelstad, S., (2011). Effects of hyperoxic water conditions under different total gas pressures in European sea bass (Dicentrarchus labrax). Aquaculture 318,191–198.
• Machova, J., Faina, R., Randak, T., Valentova, O., Steinbach, C., Kroupova, H. K., & Svobodova, Z. (2017). Fish death caused by gas bubble disease: a case report. Veterinární Medicína, 62(4), 231-237.
• Midilli, S., Çoban, D., Güler, M. & Küçük, S. (2019). Kültür koşullarında Nil Tilapyası ve Melez Kırmızı Tilapya (Cichlidae, Oreochromis spp.)’da görülen gaz kabarcığı hastalığı. Su Ürünleri Dergisi, 36(3), 285-291.
• Ross, P. M., Pande, A., Jones, J. B., Cope, J., & Flowers, G. (2018). First detection of gas bubble disease and Rickettsia-like organisms in Paphies ventricosa, a New Zealand surf clam. J. Fish Dis, 41, 187-190.
• Weiland, L. K., Mesa, M. G., & Maule, A. G. (1999). Influence of infection with Renibacterium salmoninarum on susceptibility of juvenile spring chinook salmon to gas bubble trauma. Journal of Aquatic Animal Health, 11(2), 123-129.
• Weitkamp, D. E., & Katz, M. (1980). A review of dissolved gas supersaturation literature. Transactions of the American Fisheries Society, 109(6), 659-702.
• Yuan, Y., Wang, Y., Zhou, C., An, R. & Li, K. (2018). Tolerance of Prenant’s Schizothoracin Schizothorax prenanti to total dissolved gas supersaturated water at varying temperature. North American Journal of Aquaculture 80, 107-115.